Quality change of grass carp (Ctenopharyngodon idellus) muscle during crisping process
-
摘要:
为了研究草鱼(Ctenopharyngodon idellus)脆化过程中肌肉品质变化对脆肉鲩(C.idellus C.et V)脆性形成规律的影响，在草鱼脆化过程中定期采样，比较研究了肌肉基本化学成分、质构特性、鱼肉蛋白质组成、肌肉氨基酸组成及营养价值评价等的变化规律。结果显示，脆肉鲩的水分、粗脂肪质量分数均显著低于普通草鱼(P < 0.05)，粗蛋白、粗灰分质量分数比普通草鱼高；与普通草鱼相比，脆化后肌肉的肌原纤维蛋白、肌浆蛋白和基质蛋白质量分数分别增加了10.88%、15.41%和80.53%；脆肉鲩的硬度、咀嚼性、弹性和粘着性显著高于普通草鱼(P < 0.05)；脆肉鲩肌肉的氨基酸总量(TAA)、必需氨基酸(EAA)总量、鲜味氨基酸(UAA)总量最高分别为203.5 g·L-1、85.6 g·L-1和79.1 g·L-1，均显著高于普通草鱼(P < 0.05)。研究表明在草鱼脆化过程中，肌肉品质指标均有不同程度的变化，且这些变化是导致脆肉鲩脆性改变的重要因素。
Abstract:To study the influence of quality change of muscle of grass carp (Ctenopharyngodon idellus) on brittleness mechanism of crisp grass carp (C.idellus C.et V) during crisping process, we acquired samples periodically and compared differences in general chemical components, TPA value, muscle protein components, amino acid components and nutritional evaluation. The results show that moisture and fat contents of crisp grass carp were significantly lower than those of grass carp (P < 0.05), while the contents of protein and ash in the former were higher than those in the latter. Besides, the contents of myofibrillar protein, sarcoplasmic protein and stromal protein of crisp grass carp increased by 10.88%, 15.41% and 80.53%, respectively, compared with those of grass carp. Hardness, chewiness, springiness and adhesiveness of crisp grass carp were significantly higher than those of grass carp (P < 0.05). Furthermore, the maximum contents of TAA, total EAA and total UAA of crisp grass carp were 203.5 g·L-1, 85.6 g·L-1 and 79.1 g·L-1, respectively, which were significantly higher than those of grass carp (P < 0.05). The study indicates that the above indices of both crisp grass carp and grass carp experienced changes at different degrees during crisping process, which was important for affecting the changes of brittleness.
-
Keywords:
- crisp grass carp /
- muscle quality /
- grass carp /
- TPA /
- protein composition
-
硬骨鱼类的生长主要受生长轴，即生长激素(GH)/胰岛素样生长因子(IGF)的调控，GH为脑垂体分泌的单链肽类激素，通过生长激素受体(GHR)刺激肝脏等组织分泌IGF，进而发生生物学效应。GH居于生长轴的中心位置，在鱼类的个体生长中起关键性作用[1]。研究表明鱼类垂体GH基因的转录和转译水平受性别[2-5]、季节和生理状态[4-7]及外界理化因子[8-10]等因素的影响，且研究结果显示在一定条件下垂体GH基因转录或转译水平高的鱼类其生长速度也快。因此，GH成为研究鱼类生长性能的重要指标。
高密度养殖是提高单位面积产量、实现更大经济效益的有效手段，但不可避免地影响养殖对象的生长速度和健康。而革胡子鲶(Clarias gariepinus)比其他养殖鱼类对高密度养殖的适应性强[11-16]。天津市德仁农业发展有限公司设施化养殖的革胡子鲶，在高密度下仍然能够快速生长(最高产量可达400 kg · m-3水体)，推测与其内在的生长调控因子有关。文章通过分析不同养殖密度下革胡子鲶幼鱼的日增质量和垂体GH基因mRNA的表达水平，初步探讨革胡子鲶幼鱼在不同养殖密度下生长差异和生长差异的内在原因，以期为深入探究革胡子鲶的生长调节以及高密度养殖快速生长的机理奠定基础。
1. 材料与方法
1.1 试验材料
试验用鱼为天津市德仁农业发展有限公司从福建漳州购进约1.5 g的革胡子鲶饲养而成，选取大小规格相近的幼鱼为试验对象，平均体质量为10~12 g。
1.2 养殖试验
试验分组及饲养管理同DAI等[17]。即试验用革胡子鲶幼鱼取回后在天津农学院天津市水产生态及养殖重点实验室于水族箱(70 cm×50 cm×50 cm)中暂养2周后，选取发育良好、体质健康的个体[平均体质量为(30.71±0.89)g]用于该试验。试验鱼随机分为35 kg · m-3、65 kg · m-3、95 kg ·m-3和125 kg · m-3 4个密度组，每组3个重复，饲养于水族箱(70 cm×50 cm×50 cm)中，实际水体积为120 L。模拟天津市德仁农业发展有限公司水泥池饲养革胡子鲶幼鱼的实际养殖条件，每日10: 00和18: 00各换水一次，每次换水量为水体积的3/4；养殖水温保持在(27±1)℃。按体质量的2%每天8: 00和16: 00各投喂一次，所用饲料为天津市天祥水产有限公司生产的鲶鱼膨化配合饲料(粗蛋白35%、粗脂肪5%、粗纤维10%、灰分10%)。养殖试验为期60 d，试验期间水体积保持不变，每30 d取样一次。每天观察并记录鱼的摄食及死亡情况。
1.3 相关指标分析方法
1.3.1 革胡子鲶生长的测定
分别于第30和第60天各分析一次。分析时停饲24 h，并以200 mg · L-1的MS-222麻醉，以水族箱为单位称量鱼体的总质量，同时计数鱼体数量，根据下列公式计算鱼的均质量和日增质量：
鱼的均质量=试验结束时每箱鱼总质量(g)/鱼的数量(尾)
日增质量=[试验结束时鱼的均质量(g · 尾-1)-试验开始时鱼的均质量(g · 尾-1)]/养殖天数
1.3.2 GH基因mRNA表达的半定量分析
养殖第30和第60天时，每个养殖密度各取经MS-222麻醉的鱼18尾(每个水族箱取鱼6尾)，解剖取出垂体后立即放入液氮中，之后于-80 ℃保存备用。以β-肌动蛋白基因作为内参基因分析垂体GH基因mRNA的相对表达量。试验中以个体为单位，根据王晓梅等[18]报道的方法进行垂体总RNA的提取、cDNA第一条链的合成、GH基因ORF区段和β-肌动蛋白基因片段的扩增以及GH基因mRNA相对表达量分析。
1.3.3 数据统计分析
试验数据以“平均值±标准差”(X+SD)表示，数据采用SPSS 11.5统计软件进行单因素方差分析(One-Way ANOVA)，LSD法多重比较各组间数值的差异显著性(P＜0.05)。
2. 结果
2.1 生长分析
根据革胡子鲶在不同密度养殖30 d和60 d后体质量(表 1)计算鱼体在0~30 d以及30~60 d 2个养殖期的日增质量。结果表明，试验期间随着养殖密度的增大出现日增质量降低的趋势(图 1)，统计分析结果显示，在0~30 d的养殖期间，35 kg ·m-3和65 kg · m-3密度组的日增质量差异不显著(P＞0.05)，95 kg · m-3和125 kg · m-3密度组的日增质量差异也不显著(P＞0.05)；但35 kg · m-3和65 kg · m-3密度组的日增质量显著高于95 kg · m-3和125 kg · m-3密度组(P＜0.05)；养殖30~60 d期间，35 kg · m-3和65 kg · m-3密度组的日增质量显著高于125 kg · m-3密度组(P＜0.05)，而其余各密度组间的日增质量差异均不显著(P＞0.05)。
表 1 养殖密度对革胡子鲶体质量的影响Table 1. Effect of stocking density on body weight of juvenile C.gariepinus指标index 养殖密度/ kg·m-3 stocking density 35 65 95 125 初始体质量/g initial body weight 31.01±0.47 29.77±0.32 30.82±1.17 31.22±0.90 第30天体质量/g body weight on 30th day 64.75±1.21a 60.79±0.43ab 57.40±3.38bc 55.38±2.83c 第60天体质重/g body weight on 60th day 100.94±3.42a 96.64±3.84a 90.70±1.19b 82.87±2.71c 死亡率/% mortality 3.69±0.76a 3.68±1.13a 5.13±0.36b 5.40±0.43b 注：部分数据引自文献[17]。同一行肩标字母相同或无肩标字母者表示差异不显著(P＞0.05)，肩标字母不同者表示差异显著(P＜0.05)
Note：Some data in this table are taken from Reference [17].Values with the same letters or no letter within the same row are not significantly different (P＞0.05)；whereas those with different letters are significantly different (P＜0.05).![]()
图 1 不同养殖密度革胡子鲶日增质量同一线上肩标字母不同者为差异显著(P＜0.05)，肩标字母相同者为差异不显著(P＞0.05)Figure 1. Daily weight gain of C.gariepinus reared at different stocking densitiesValues with different superscripts on the same lines are significantly different (P < 0.05), while those with the same superscripts are not significantly different (P > 0.05).2.2 GH基因mRNA表达的半定量RT-PCR分析
2.2.1 总RNA分离结果
经1%琼脂糖凝胶电泳检测表明提取的革胡子鲶脑垂体总RNA完整性较好(图 2显示了4个RNA样本的电泳结果)。用核酸蛋白测定仪(德国Eppendorf公司出品，BioPhotometer型)测定出每个RNA样本光密度比(OD260/OD280)为1.80~2.00，表明总RNA纯度较好，RNA样本可以用于后续的试验。
![]()
图 2 革胡子鲶4个个体脑垂体总RNA电泳结果Figure 2. Electrophoretic patterns of total RNA extracts from pituitary of four individuals of C.gariepinus2.2.2 PCR扩增产物电泳检测结果
图 3-a和图 3-b分别为养殖第30和第60天时革胡子鲶部分个体GH和β-actin基因片段扩增后的电泳检测结果。
![]()
图 3 养殖第30天(a)和第60天时(b)革胡子鲶个体GH和β-actin基因片段PCR产物电泳图泳道1~3、4~6、7~8和9~12分别为养殖密度35 kg · m-3、65 kg · m-3、95 kg · m-3和125 kg · m-3的各3个体GH和β-actin基因片段RCR产物电泳图，泳道M为DNA标准分子量(BBI公司)Figure 3. Electrophoretic patterns of PCR products of GH and β-actin gene fragments of individuals on 30th (a) and 60th day nursing(b)Lanes 1~3, 4~6, 7~8 and 9~12 are electrophoretic patterns of PCR products of GH and β-actin gene fragments separately on three individuals at stocking densities of 35 kg · m-3, 65 kg · m-3, 95 kg · m-3 and 125 kg · m-3, respectively; Lane M is DNA Marker (BBI Company)2.2.3 GH mRNA表达半定量PCR分析的数据统计
利用GeneTools软件分析革胡子鲶个体GH(目标基因)和β-actin(内参基因)基因片段扩增后的电泳图谱，GH与β-actin基因片段扩增产物的信号强度比即为GH基因的相对表达量。
图 4为养殖第30和第60天时不同养殖密度下革胡子鲶GH基因mRNA平均相对表达量的统计分析结果。养殖第30天时，各养殖密度间革胡子鲶GH基因mRNA相对表达量差异均不显著(P＞0.05)；养殖第60天时，革胡子鲶GH基因mRNA相对表达量在35 kg · m-3和65 kg · m-3密度组间差异不显著(P＞0.05)，95 kg · m-3和125 kg · m-3密度组间差异也不显著(P＞0.05)，但35 kg · m-3和65 kg · m-3密度组GH基因mRNA的相对表达量显著高于95 kg · m-3和125 kg · m-3密度组(P＜0.05)。
![]()
图 4 不同养殖密度革胡子鲶GH基因mRNA的相对表达量标有不同字母者为差异显著(P＜0.05)，无字母或字母相同者为差异不显著(P＞0.05)Figure 4. Relative expression of GH mRNA in pituitary of C.gariepinus reared at different densitiesDifferent letters above the bar indicate significant difference (P < 0.05);while the same letters or no letter above the bar indicate no significant difference (P > 0.05)3. 讨论
鱼体的生长状况是水产养殖中备受关注的重要经济性状，而GH与鱼类的生长密切相关，在鱼类的个体生长及生长调节中起关键性作用。马细兰等[2]指出垂体GH基因在转录水平上反映GH的合成速度，是反映动物生长速度的有效指标，生长快速的鱼其垂体GH mRNA表达量高；并且应用半定量RT-PCR法分析得出尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)雄鱼垂体GH mRNA表达水平明显高于雌鱼，认为这可能是尼罗罗非鱼雄鱼生长快于雌鱼的主要内在原因之一。性成熟的金钱鱼(Scatophagus argus)雌鱼生长快于雄鱼，其生长差异与垂体GH mRNA的水平也呈显著的正相关[3]。同样，生长快速的雌性黄鲈(Perca flavescens)垂体GH mRNA水平显著高于雄鱼，并且在生长快速的春季显著高于秋季[4]。性成熟的鲤(Cyprinus carpio)垂体GH mRNA表达也呈现出季节性的周期变化，生长较快的季节(水温18~20 ℃)垂体GH mRNA表达比生长相对较慢的季节(水温8~10 ℃)高3倍[6]。鲇形目鳠科的大鳍鳠(Mystus macropterus)脑垂体GH的含量分别在3月和8月出现峰值，与该鱼春季和秋季的快速生长一致[7]。该目鲇科的野生鲇(Silurus asotus)垂体GH的含量在3月和7月各出现一个高峰值，研究者认为这可能与野生鲇春季和产卵后生长加快有关；并且雌性鲇鱼垂体GH的周年含量显著高于雄鱼，与雌鱼生长速度显著快于雄鱼的现象相符合[5]。SHIN等[8]研究发现光的波长可影响观赏性鱼类——克氏双带锯齿盖鱼(Amphiprion clarkii)的生长速度和垂体GH mRNA水平、生长速率与垂体GH mRNA的水平呈正相关。李云等[9]研究显示饲料中添加一定量的半胱胺盐酸盐(1 mg · g-1饲料)可显著提高斜带石斑鱼(Epinephelus coioides)的体质量增长率和垂体GH的转录水平。马细兰等[10]发现促黄体素释放激素类似物(LHRH-A)可显著上调尼罗罗非鱼生长轴相关基因(GH、GHR和IGF)的表达，从而促进鱼类的生长。上述研究说明鱼体的生长速度与垂体GH基因的转录水平呈正相关。
由于脑垂体合成GH后经过血液运送至靶器官，再通过GHR和IGF的介导进而达到促进鱼体生长的作用，因此鱼类的生长速度并不能完全通过GH水平来体现，还与GHR和IGF的水平有关。如银大麻哈鱼(Oncorhynchus kisutch)在禁食3周后，比正常投喂组肝脏GHR mRNA水平低，提示长时间禁食可引起肝脏GHR基因表达的下降[19]。SAERA-VILA等[20]报道金鲷(Sparus aurata)肝脏和脂肪组织GHRⅠ基因表达最丰富，但禁食后可引起GHRⅠmRNA水平的下降。斑点叉尾(Ictalurus punctatus)在投喂外源皮质醇或者禁食4周后，与对照组相比，肝脏GHR mRNA的丰度以及血清中IGF的浓度均显著下降，且肝脏GHR mRNA的丰度和血清中IGF的浓度呈正相关；投喂外源皮质醇后鱼的生长显著下降，禁食组鱼的体质量减少[21]。华益民和林浩然[22]报道鲤饥饿32 d导致生长受阻，肝组织IGF-ⅠmRNA表达水平下降；再投喂后，其生长和肝组织IGF-ⅠmRNA丰度都逐渐恢复，表现出鲤的生长状况与肝组织IGF-ⅠmRNA水平的同步变化。尼罗罗非鱼饥饿28 d内血清GH含量反倒显著升高，而血清IGF含量和肝胰脏IGF mRNA表达丰度显著下降，饥饿后再投喂，第14天时血清GH含量显著升高，继续投喂7 d血清GH含量又表现出显著下降，但仍与饥饿第7天时的GH水平相当，而血清IGF含量和肝胰脏IGF mRNA表达丰度在第21天恢复投喂过程中显著升高，并恢复到饥饿前水平[23]。鲮(Cirrhinus molitorella)在投喂不同蛋白水平的饲料时，在8周的养殖期内其特定生长率与肝组织IGF mRNA的表达量呈极显著的正相关[24]。但强俊等[25]在分析温度和饲料蛋白水平对吉富品系尼罗罗非鱼幼鱼生长的影响时则发现血清GH水平与鱼的特定生长率相关性较低。黄国强等[26]研究也发现褐牙鲆(Paralichthys olivaceus)幼鱼在低温胁迫10 d导致的生长减缓能在恢复至最适生长温度的30 d内获得完全补偿生长，但血浆GH和IGF水平与生长率不存在明显的相关性。
该研究通过分析不同养殖密度下革胡子鲶幼鱼的生长以及垂体GH基因的表达，探讨养殖密度对二者的影响以及二者的相关性。该研究的数据统计分析结果显示，0~30 d养殖期内，35 kg · m-3和65 kg · m-3密度组间的日增质量以及95 kg · m-3和125 kg · m-3密度组间的日增质量差异均不显著，但前2个密度组的日增质量显著高于后2个密度组(图 1)。但养殖第30天时各密度组间GH基因mRNA的相对表达量并未受养殖密度的影响，即各密度组间的GH基因的相对表达量差异不显著(图 4)。30~60 d养殖期内，35 kg · m-3和65 kg · m-3密度组间的日增质量与95 kg · m-3密度组差异不显著，但显著高于125 kg · m-3密度组(图 1)。而养殖第60天时，GH mRNA表达量的分析结果显示35 kg · m-3和65 kg · m-3密度组显著高于95 kg · m-3和125 kg · m-3密度组(图 4)。上述结果表明在该研究中革胡子鲶幼鱼的日增质量与垂体GH基因mRNA相对表达量不存在紧密的相关性。结合前人的研究结果，在该研究中笔者推测，仅就生长轴GH-GHR-IGF而言，革胡子鲶在较短的养殖时间内(30 d)，养殖密度增大时，由于空间不足、摄食不均等原因可能影响鱼体生存状态和营养水平，而导致GH下游的生长调控因子，如GHR和IGF的合成与分泌减少，最终使鱼体的日增质量降低。但是随着养殖时间的延长(60 d)，养殖密度增大到一定程度时则会影响处于生长轴中心位置的因子——GH mRNA表达的下降，进而GH的合成与分泌减少，这可能成为影响鱼体生长速度的主要内在因素。对于GH-GHR-IGF这一生长轴在革胡子鲶生长中的调节作用以及三者的相互补偿关系仍需进一步深入探究。
-
表 1 不同脆化周期的鱼肉基本营养成分
Table 1 Nutrition composition of grass carp muscle in different crisping periods
% 项目
item水分
moisture粗脂肪
crude fat粗灰分
crude ash粗蛋白
crude protein普通草鱼 grass carp 79.34±0.94a 2.53±0.77a 0.94±0.02c 14.12±0.79d 脆化时间/d
crisping time30 77.13±0.64b 1.57±0.50b 1.08±0.06c 20.24±0.28c 50 76.30±0.08bc 1.22±0.08bc 1.01±0.07c 20.46±0.21c 70 75.77±0.16c 0.99±0.02bc 1.05±0.11c 21.13±0.07b 90 73.40±0.34d 0.77±0.10c 1.28±0.06b 22.71±0.19a 120 72.21±1.22d 0.70±0.11c 1.49±0.17a 21.17±0.21b 注：同一列右上角字母不同表示差异性显著(P < 0.05)，下表同此
Note：Values with different letters at top right corner in the same column are significantly different (P < 0.05)；the same case in the following tables.
下载: 导出CSV
表 2 不同脆化周期的肌肉蛋白质成分占粗蛋白的质量分数
Table 2 Proportion of protein components to crude protein in grass carp muscle in different crisping periods
% 项目
item肌浆蛋白
sarcoplasmic protein肌原纤维蛋白
myofibrillar protein基质蛋白
stromal protein碱溶性蛋白
alkali-soluble protein普通草鱼 grass carp 14.79±0.53d 50.63±0.28c 2.26±0.41b 20.61±0.25a 脆化时间/d
crisping time30 15.58±0.30bc 51.97±0.93c 2.46±0.42b 18.18±0.80b 50 15.38±0.26cd 53.39±0.95b 2.88±0.37b 17.56±0.32b 70 16.04±0.23b 53.49±0.56b 2.77±0.48b 17.06±0.81b 90 16.77±0.47a 55.77±1.03a 3.72±0.18a 12.45±0.48c 120 17.07±0.10a 56.14±0.54a 4.08±0.06a 11.06±0.87d
下载: 导出CSV
表 3 不同脆化周期的肌肉TPA指标值(n=18)
Table 3 TPA values of grass carp muscle in different crisping periods
项目
item硬度/g
hardness咀嚼性/gmm
chewiness弹性/mm
springiness粘着性/gs
adhesiveness普通草鱼 grass carp 381.67±40.52e 128.85±15.71d 1.35±0.47d -90.58±11.14d 脆化时间/d
crisping time30 592.67±57.86de 257.91±34.82d 2.75±0.21c -110.98±5.88cd 50 714.50±77.62cd 603.61±86.99c 3.32±0.51c -131.65±34.29c 70 831.67±88.75c 817.86±37.64b 3.63±0.52bc -173.14±41.53b 90 1 307.17±282.33b 873.54±67.78b 4.58±1.42ab -204.97±32.08ab 120 2 019.67±308.41a 1 394.28±241.91a 5.43±1.55a -207.34±25.83a
下载: 导出CSV
表 4 不同脆化周期的肌肉氨基酸质量分数(湿质量)
Table 4 Amino acid contents in grass carp muscle in different crisping periods (wet weight)
g·L-1 氨基酸
amino acid草鱼
grass carp脆化时间/d crisping time 30 50 70 90 120 天冬氨酸** Asp 19.5±0.10 21.3±0.40 21.9±0.11 17.3±0.11 22.2±0.10 21.5±0.20 苏氨酸* Thr 8.3±0.11 9.0±0.30 8.9±0.11 7.3±0.10 8.7±0.12 8.5±0.12 丝氨酸 Ser 7.3±0.10 7.8±0.10 6.4±0.12 5.4±0.10 6.3±0.14 6.7±0.13 谷氨酸** Glu 28.7±0.11 31.5±0.60 31.4±0.10 26.0±0.22 32.4±0.15 31.1±0.21 脯氨酸 Pro 5.9±0.12 5.2±0.21 7.5±0.41 5.5±0.40 6.0±0.12 6.3±0.13 甘氨酸** Gly 10.8±0.11 9.4±0.13 12.4±0.11 8.4±0.10 10.4±0.10 10.4±0.11 丙氨酸** Ala 12.1±0.20 12.4±0.34 13.5±0.14 10.3±0.21 12.9±0.20 12.5±0.21 缬氨酸** Val 9.9±0.11 10.8±0.25 11.8±0.13 9.3±0.11 12.2±0.30 11.3±0.20 蛋氨酸* Met 5.7±0.31 6.2±0.11 6.3±0.20 5.1±0.12 6.4±0.13 6.1±0.11 异亮氨酸* Lle 8.7±0.21 9.6±0.40 10.3±0.22 8.2±0.14 10.7±0.32 10.0±0.12 亮氨酸* Leu 15.1±0.22 16.4±0.34 16.8±0.22 13.7±0.45 17.4±0.21 16.2±0.32 酪氨酸 Tyr 6.3±0.15 6.8±0.10 6.9±0.10 5.7±0.10 7.2±0.00 6.9±0.01 苯丙氨酸* Phe 8.3±0.20 8.5±0.31 9.2±0.11 7.2±0.00 9.4±0.10 8.9±0.14 赖氨酸* Lys 18.4±0.13 20.7±0.42 20.7±0.14 16.7±0.02 21.0±0.01 20.2±0.01 组氨酸 His 5.3±0.11 6.3±0.10 6.7±0.50 4.9±0.21 7.0±0.50 6.1±0.10 精氨酸 Arg 11.8±0.22 12.3±0.13 13.2±0.10 10.2±0.13 12.8±0.14 11.7±0.15 TAA 181.5±1.10c 194.0±2.28b 203.5±0.70a 161.0±1.14d 202.5±0.70a 194.0±1.40b EAA总量 total EAA 74.2±0.41d 81.0±1.40c 83.8±0.40b 67.3±0.55e 85.6±0.50a 81.0±0.71c NEAA总量 total NEAA 107.3±0.60 113.0±1.44 119.7±0.15 93.7±0.96 116.9±0.22 113.0±0.77 UAA总量 total UAA 71.0±0.48c 74.5±1.12b 79.1±0.15a 61.7±0.46d 77.9±0.70a 75.3±0.45b EAA/TAA/% 40.88 41.75 41.18 41.80 42.27 41.75 EAA/NEAA/% 69.15 71.68 70.01 71.82 73.22 71.68 UAA/TAA/% 39.12 38.40 38.87 38.32 38.47 38.81 注：*.必需氨基酸；* *.鲜味氨基酸；TAA.氨基酸总量；EAA.必需氨基酸；NEAA.非必需氨基酸；UAA.鲜味氨基酸
Note: *. essential amino acids; * *. umami amino acids；TAA. total amino acids；EAA. essential amino acids；NEAA. non-essential amino acids；UAA. umami amino acids
下载: 导出CSV
表 5 不同脆化周期的肌肉蛋白必需氨基酸组成
Table 5 Composition of essential amino acids of muscle protein in different crisping periods
mg·g-1 项目
item苏氨酸
Thr缬氨酸
Val蛋氨酸
Met异亮氨酸
Lle亮氨酸
Leu赖氨酸
Lys苯丙氨酸+酪氮酸
Phe+Tyr普通草鱼 grass carp 58.78 70.11 40.37 61.61 106.94 130.31 103.40 脆化时间/d
crisping time30 44.47 53.36 30.63 47.43 81.03 102.27 75.59 50 43.50 57.67 30.79 50.34 82.11 101.17 78.69 70 34.55 44.01 24.14 38.81 64.84 79.03 61.05 90 38.31 53.72 28.18 47.12 76.62 92.47 73.10 120 40.15 53.38 28.81 47.24 76.52 95.42 74.63 鸡蛋蛋白模式 egg protein pattern 52 68 50 50 92 56 91 FAO/WHO模式 FAO/WHO pattern 40 50 35 40 70 55 60
下载: 导出CSV
表 6 不同脆化周期的肌肉蛋白必需氨基酸评分
Table 6 AAS for muscle protein in different crisping periods
项目
item苏氨酸
Thr缬氨酸
Val蛋氨酸
Met异亮氨酸
Lle亮氨酸
Leu赖氨酸
Lys苯丙氨酸+酪氮酸
Phe+Tyr普通草鱼 grass carp 1.470 1.402** 1.153* 1.540 1.528 2.369 1.723 脆化时间/d
crisping time30 1.112 1.067** 0.875* 1.186 1.158 1.859 1.260 50 1.088** 1.153 0.880* 1.259 1.173 1.839 1.312 70 0.864** 0.880 0.690* 0.970 0.926 1.437 1.018 90 0.958** 1.074 0.805* 1.178 1.095 1.681 1.218 120 1.004** 1.068 0.823* 1.181 1.093 1.735 1.244 注：*. 第一限制性氨基酸；* *. 第二限制性氨基酸，下表同此
Note: *. the first limiting amino acids；* *. the second limiting amino acids；the same case in the following table.
下载: 导出CSV
表 7 不同脆化周期的肌肉蛋白必需氨基酸指数和化学评分
Table 7 EAAI and CS for muscle protein in different crisping periods
项目
item苏氨酸
Thr缬氨酸
Val蛋氨酸
Met异亮氨酸
Lle亮氨酸
Leu赖氨酸
Lys苯丙氨酸+酪氮酸
Phe+Tyr必需氨基酸指数
EAAI普通草鱼 grass carp 1.130 1.031** 0.807* 1.232 1.162 2.327 1.136 119.88 脆化时间/d
crisping time30 0.855 0.785** 0.613* 0.949 0.881 1.826 0.831 91.13 50 0.837** 0.848 0.616* 1.007 0.893 1.807 0.865 93.28 70 0.664 0.647** 0.483* 0.776 0.705 1.411 0.671 72.71 90 0.737** 0.790 0.564* 0.942 0.833 1.643 0.803 85.72 120 0.772** 0.785 0.576* 0.945 0.832 1.704 0.820 87.20
下载: 导出CSV
-
[1] 刘邦辉, 王广军, 郁二蒙, 等. 投喂蚕豆和普通配合饲料草鱼肌肉营养成分比较分析及营养评价[J]. 南方水产科学, 2011, 7(6): 58-65. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2011.06.010 [2] 甘承露. 脆肉鲩肌肉特性及其贮藏稳定性的研究[D]. 武汉: 华中农业大学, 2010. 10.7666/d.y1799776 [3] 伦峰, 冷向军, 李小勤, 等. 投饲蚕豆对草鱼生长和肉质影响的初步研究[J]. 淡水渔业, 2008, 38(3): 73-76. doi: 10.3969/j.issn.1000-6907.2008.03.014 [4] 李宝山, 冷向军, 李小勤, 等. 投饲蚕豆对草鱼生长和肌肉品质的影响[J]. 中国水产科学, 2008, 15(6): 1042-1049. doi: 10.3321/j.issn:1005-8737.2008.06.019 [5] LIN W L, ZENG Q X, ZHU Z W. Different changes in mastication between crisp grass carp (Ctenopharyngodon idellus C. et V) and grass carp (Ctenopharyngodon idellus) after heating: the relationship between texture and ultrastructure in muscle tissue [J]. Food Res Int, 2009, 42(2): 271-278. doi: 10.1016/j.foodres.2008.11.005
[6] 关磊, 朱瑞俊, 李小勤, 等. 普通草鱼与脆化草鱼的肌肉特性比较[J]. 上海海洋大学学报, 2011, 20(5): 748-753. https://d.wanfangdata.com.cn/periodical/shscdxxb201105016 [7] 朱志伟, 李汴生, 阮征, 等. 脆肉鲩鱼肉与普通鲩鱼鱼肉理化特性比较研究[J]. 现代食品科技, 2007, 24(2): 109-112. doi: 10.3969/j.issn.1673-9078.2008.02.003 [8] 蔡完其. 养鱼饲料学[M]. 北京: 中国农业出版社, 1980: 114-115. [9] HASHIMOTO K, WATABE S, KONO M, et al. Muscle protein composition of sardine and mackerel[J]. Bull Jpn Soc Sci Fish, 1979, 45(11): 1435-1441. doi: 10.2331/suisan.45.1435
[10] GRIGORAKIS K, ALEXIS M N. Effects of fasting on the meat quality and fat deposition of commercial-size farmed gilthead sea bream (Sparus aurata, L. ) fed different dietary regimes [J]. Aquac Nutr, 2005, 11(5): 341-344. doi: 10.1111/j.1365-2095.2005.00351.x
[11] 李来好, 叶鸽, 郝淑贤, 等. 2种养殖模式罗非鱼肉品质的比较[J]. 南方水产科学, 2013, 9(5): 1-6. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2013.05.001 [12] 胡芬, 李小定, 熊善柏, 等. 5种淡水鱼肉的质构特性及与营养成分的相关性分析[J]. 食品科学, 2011, 32(11): 69-73. https://wenku.baidu.com/view/9e2f45d36194dd88d0d233d4b14e852459fb3964?fr=xueshu&_wkts_=1731942415196 [13] 李文倩, 李小勤, 冷向军, 等. 鳜鱼肌肉品质评价的初步研究[J]. 食品工业科技, 2010, 31(9): 113-117. https://d.wanfangdata.com.cn/periodical/spgykj201009032 [14] KUANG X M, ZHANG H, CHEN B. Comparison on the content of the nutrient composition in grass crap′s muscle and the glucose-6-phosphoclehyolrogenase in its erythrocytes from the beginning to the end of making grass carp′s meat crisp to the taste[J]. J Hainan Univ, 2004, 22(3): 258-261. https://www.semanticscholar.org/paper/Comparison-on-the-Content-of-the-Nutrient-inGrass-Yin-ji/3a758573edb0b831d01f36a0a833db9e7e0b2fff
[15] 林婉玲, 关熔, 曾庆孝, 等. 影响脆肉鲩鱼背肌质构特性的因素[J]. 华南理工大学学报: 自然科学版, 2009, 37(4): 134-138. doi: 10.3321/j.issn:1000-565X.2009.04.027 [16] LIN W L, ZENG Q X, ZHU Z W, et al. Relation between protein characteristics and TPA texture characteristics of crisp grass carp (Ctenopharyngodon idellus C. et V) and grass carp (Ctenopharyngodon idellus)[J]. J Texture Stud, 2012, 43(1): 1-11. doi: 10.1111/j.1745-4603.2011.00311.x
[17] PERIAGO M J, AYALA M D, LOPÉZ-ALBORS O, et al. Muscle cellularity and flesh quality of wild and farmed sea bass, Dicentrarchus labrax L. [J]. Aquaculture, 2005, 249(1): 175-188. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0044848605001328
[18] GODIKSEN H, MORZEL M, HYLDIG G, et al. Contribution of cathepsins B, L and D to muscle protein profiles correlated with texture in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)[J]. Food Chem, 2009, 113(4): 889-896. doi: 10.1016/j.foodchem.2008.08.012
[19] 江伟, 刘毅. 营养与食品卫生学[M]. 北京: 中国医科大学, 中国协和医科大学联合出版社, 1992: 36. https://xueshu.baidu.com/usercenter/paper/show?paperid=97006f59ec317d4deae3a5c0d32e0cfa&site=xueshu_se [20] 赖春华, 李军生, 廖永聪, 等. 黄沙鳖与中华鳖肌肉氨基酸的分析及评价[J]. 食品工业科技, 2011, 32, (5): 373-378. https://d.wanfangdata.com.cn/periodical/spgykj201105112 [21] 何建瑜, 赵荣涛, 刘慧慧. 舟山海域厚壳贻贝软体部分营养成分分析与评价[J]. 南方水产科学, 2012, 8(4): 37-42. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2012.04.006 [22] 戴梓茹, 钟秋平, 林美芳, 等. 金鲳鱼营养成分分析与评价[J]. 食品工业科技, 2013, 34(1): 347-350. https://www.cqvip.com/QK/92916X/20131/44509740.html [23] 黎祖福, 付倩倩, 张以顺. 鞍带石斑鱼肌肉营养成分及氨基酸质量分数分析[J]. 南方水产, 2008, 4(5): 61-64. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2008.05.010 [24] 舒琥, 周莹, 肖丹, 等. 野生三斑石斑鱼肌肉营养成分与品质的评价[J]. 安徽农业科学, 2011, 39(21): 12902-12905. doi: 10.3969/j.issn.0517-6611.2011.21.096 -
期刊类型引用(15)
1. 周志希，唐汇娟，柯志新，刘甲星，周伟华. 基于形态学和高通量测序的春季南澳海域浮游植物群落特征及其与环境因子关系. 热带海洋学报. 2025(01): 53-65 . 
百度学术
2. 柳原，柯志新，李开枝，谭烨辉，梁竣策，周伟华. 人类活动和沿岸流影响下的粤东近海浮游动物群落特征. 热带海洋学报. 2024(04): 98-111 . 百度学术
3. 薛宇，于浩林，周广军，赵伟，唐衍力. 渤海小竹山岛海洋牧场区营养盐分布特征及增养殖适宜性探究. 渔业科学进展. 2023(01): 1-12 . 百度学术
4. 黎素菊，洪捷娴，陈树鹏. 柘林湾养殖区氮、磷季节分布特征及富营养化评价. 江西水产科技. 2022(04): 45-47+51 . 百度学术
5. 匡翠萍，王丹，赵钒，刘会欣，朱磊. 金梦海湾及其邻近海域水环境因子时空分布特征. 同济大学学报(自然科学版). 2021(06): 880-890 . 百度学术
6. 任玉正，柯志新，谭烨辉，李开枝. 广东省南澳岛东部海域浮游动物群落结构及其影响因素. 热带海洋学报. 2020(02): 65-76 . 百度学术
7. 杨文超，黄道建，陈继鑫，陈晓燕，王宇珊. 大亚湾海域2009—2015年氮、磷营养盐时空分布及富营养化评价. 南方水产科学. 2020(02): 54-61 . 本站查看
8. 陈丹婷，柯志新，谭烨辉，刘甲星. 汕头南澳—东山海域营养盐季节分布特征及其对浮游植物生长的潜在性限制. 生态科学. 2020(04): 41-50 . 百度学术
9. 马欢，秦传新，陈丕茂，林会洁，段丁毓. 柘林湾海洋牧场生态系统服务价值评估. 南方水产科学. 2019(01): 10-19 . 本站查看
10. 王言丰，胡启伟，余景，陈丕茂，舒黎明. 粤东柘林湾海洋牧场渔业资源增殖效果评估. 南方水产科学. 2019(02): 12-19 . 本站查看
11. 徐淑敏，齐占会，史荣君，刘永，韩婷婷，黄洪辉. 水产养殖对亚热带海湾氮磷营养盐时空分布的影响——以深澳湾为例. 南方水产科学. 2019(04): 29-38 . 本站查看
12. 王文杰，陈丕茂，袁华荣，冯雪，张露，龙鑫玲，陈文静，李丹丹. 粤东柘林湾甲壳类群落结构季节变化分析. 南方水产科学. 2018(03): 29-39 . 本站查看
13. 佟飞，秦传新，余景，陈丕茂. 粤东柘林湾溜牛人工鱼礁建设选址生态基础评价. 南方水产科学. 2016(06): 25-32 . 本站查看
14. 舒黎明，陈丕茂，秦传新，黎小国，周艳波，冯雪，于杰，袁华荣，李国迎. 柘林湾-南澳岛潮间带冬夏两季大型底栖动物种类组成及优势种. 生态学杂志. 2016(02): 423-430 . 百度学术
15. 舒黎明，陈丕茂，黎小国，秦传新，于杰，周艳波，袁华荣. 柘林湾附近海域大型底栖动物物种多样性. 中国水产科学. 2015(03): 501-516 . 百度学术
其他类型引用(5)
计量
- 文章访问数:
- HTML全文浏览量:
- PDF下载量:
- 被引次数: 20
粤公网安备 44010502001741号
