Effect of dietary Rhodotorula mucilaginosa on growth performance, digestive and immune enzymes activities of juvenile Nile tilapia (Oreochromis niloticus)
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摘要:
为了研究海洋红酵母(Rhodotorula mucilaginosa)对尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)幼鱼生长性能、消化酶及免疫酶活性的影响，配制6组饲料，分别为对照组、添加1 g · kg-1、2 g · kg-1、3 g · kg-1、4 g ·kg-1和5 g · kg-1的海洋红酵母组，投喂初始均质量为(5.22±0.01)g的尼罗罗非鱼，实验56 d。结果显示，与对照组相比，2 g · kg-1和4 g · kg-1组的饲料系数显著降低(P＜0.05)，1 g · kg-1、3 g · kg-1和5 g · kg-1组则没有显著性差异(P>0.05)。5 g · kg-1组鱼体粗蛋白含量显著低于1 g · kg-1和2 g · kg-1组(P＜0.05)，1 g ·kg-1、3 g · kg-1和5 g · kg-1组鱼体粗灰分含量显著低于对照组(P＜0.05)。与对照组相比，1 g · kg-1组胃蛋白酶活性显著升高(P＜0.05)，3 g · kg-1、4 g · kg-1和5 g · kg-1组胃蛋白酶活性显著降低(P＜0.05)。2 g ·kg-1和3 g · kg-1组前肠和中肠淀粉酶和脂肪酶，以及肝脏溶菌酶和一氧化氮合酶活性均显著高于对照组(P＜0.05)。根据尼罗罗非鱼幼鱼的消化酶和免疫酶活性等指标综合分析得出，海洋红酵母在罗非鱼饲料中的建议添加量为2~3 g · kg-1。
Abstract:A growth trial was conducted to investigate the effect of dietary Rhodotorula mucilaginosa on the growth performance, digestive and immune enzymes activities of juvenile Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Six diets were formulated by adding different levels of R.mucilaginosa to basal diet (control): 1 g · kg-1, 2 g · kg-1, 3 g · kg-1, 4 g · kg-1 and 5 g · kg-1, respectively. The results show that compared with the control, the FCR of the fish in 2 g · kg-1 and 4 g · kg-1 groups decreased significantly (P < 0.05). The body crude protein of the fish in 5 g · kg-1 group was significantly lower than those in 1 g · kg-1 and 2 g · kg-1 groups (P < 0.05). The body crude ash of the fish in 1 g · kg-1, 3 g · kg-1, 5 g · kg-1 groups were significantly lower than that in control group (P < 0.05). Compared with the control, the pepsin activity of the fish in 1 g · kg-1 Group increased significantly (P < 0.05), but the pepsin activities of the fish in 3 g · kg-1, 4 g · kg-1 and 5 g · kg-1 groups decreased significantly (P < 0.05). The amylase activities in stomach, liver, foregut and midgut in 2 g · kg-1 group were higher than those in control group significantly (P < 0.05). The lipase activities in foregut, midgut and hindgut in 2 g · kg-1 and 3 g · kg-1 groups than those in control group significantly (P < 0.05). Compared with the control, the hepatic lysozyme and nitric oxide synthase activities of the fish in 2 g · kg-1 and 3 g · kg-1 groups increased significantly (P < 0.05).In conclusion, the optimal dietary R.mucilaginosa level in juvenile tilapia feed could be 2~3 g · kg-1.
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海蜇(Rhopilema esculentum)是中国传统渔业生产的主要大型经济水母，因其独特的营养成分、特殊的口感及较高的药用价值而深受广大消费者的青睐。医学研究表明，海蜇可以治疗高血压、支气管炎、淋巴结核、哮喘、矽肺等疾病[1-2]。近年来，海蜇产品也渐为西方国家所接受，美国Auburn大学的研究小组报道，海蜇的胶原质对实验鼠抗原引起的关节炎有一定的抑制作用[3-7]。在中国，海蜇是重要的水产加工制品之一，而明矾是其加工过程中不可或缺的脱水剂，同时在鱼糜制品、即食鱼皮等产品加工过程中也偶有添加，主要起到护色、抗氧化和凝固等作用。明矾遇水呈酸性，而蛋白质的等电点皆偏酸性，蛋白质在等电点时颗粒之间静电斥力最小，溶解度也小，使海蜇保持凝固状态而具有一定的厚度，从而增加了海蜇产品的弹性。明矾的加入在一定程度上可以明显提高产品的品质，但会引起Al的残留，加入过多的明矾会造成Al残留量偏高。而Al在人体内不断累积会引起神经系统的病变，干扰人的思维、意识和记忆功能，严重者可能痴呆。1988年世界卫生组织正式确定Al为食品污染物，并对其使用及残留状况加以严格控制，提出Al的PTWI值(每人每周每千克体质量摄入量)为7 mg · kg-1[10]。目前，中国只对面制品及部分水产品中Al(明矾)的允许限量作了规定，面制品的卫生标准为100 mg · kg-1，水产行业标准中《盐渍海蜇皮和盐渍海蜇头》规定明矾在海蜇中的质量分数为不得大于2.2%[11]。
目前，Al的常用测定方法有乙二胺四乙酸(EDTA)滴定法[12]、铬天青S-分光光度法[13]、原子吸收分光光度法(atomic absorption spectrometry，AAS)[14]、电感耦合等离子体发射光谱法(inductively coupled plasma optical emission spectrometer，ICP-OES)和电感耦合等离子体质谱法(inductively coupled plasma mass spectrometry，ICP-MS)。随着仪器分析测定金属元素含量技术的长足进步，如原子吸收光谱法、原子荧光法以及电感耦合等离子体质谱等的报道较多[15]。在中国，适于检测海蜇中明矾，并具有法律意义的方法有《SC/T 3210-2001盐渍海蜇皮和盐渍海蜇头》，另外，通用的金属检测方法有原子吸收分光光度法、ICP-OES法、ICP-MS法等。这些方法的前处理、检测原理和检测的灵敏度各不相同，检测的结果差异较大，让海蜇产品生产厂家无所适从，令消费者迷惑。然而，这些方法之间的差异比较仍未见有报道，因此，有必要仔细对比这些方法的优缺点，为生产厂家、消费者和执法部门提供参考依据。
1. 材料与方法
1.1 材料与试剂
市售即食海蜇。
明矾、高氯酸、EDTA、氢氧化钠、铝标准贮备液、金属铝、氨水、盐酸、乙酸钠、冰乙酸、六次甲基四胺、二甲酚橙、氧化锌、铬天青S、溴化十六烷基三甲胺、抗坏血酸、浓硝酸和高纯氩气等均为国产分析纯，Al标准为国家标准样品GSB 04-1713-2004，标准值为1 000 μg · mL-1。实验用水在原子吸收光谱法中为去离子水，其他为蒸馏水。
1.2 仪器设备
Varian240Z原子吸收光谱仪(东南化学仪器有限公司出品)；AKKU-DRIVEⓇ TITRATION 20/50mL电子滴定仪(德国Hirschmann)；SPECTRONICⓇ GENESYSTM5分光光度计(Thermo Electron & Fisher Scientific；Thermo Fisher Scientific)；Ney VULCANTM 3-550A程控高温炉(Vulcan，USA)；CEM MARS微波消解仪(CEM)；Millipore超纯水系统(密理博中国有限公司出品)。
1.3 方法
水煮滴定法(boiled-titration method，BTM)，参考水产行业标准SC/T 3210-2001《盐渍海蜇皮和盐渍海蜇头》的方法。
酸煮滴定法(acid boiled-titration method，ABTM)，参考EDTA滴定的方法[15]。用5.0 mL高氯酸溶液(0.6 mol · L-1)代替样品滤液进行空白试验。每个处理做3个平行。
比色法(colorimetric method，CM)，参考GB 5009.182-2003的方法，样品处理方法略有改动。称取粉碎均匀的试样1.0~2.0 g于瓷坩埚中，用玻璃棒捻碎，然后用电炉炭化。炭化后移入550 ℃马弗炉中灰化3 h成白色灰烬，冷却后加入浓度为1 : 1的盐酸1 mL，蒸馏水2 mL，加热至沸，冷却后过滤，滤液用容量瓶定容至100 mL。比色操作与GB 5009.182-2003的方法相同，于640 nm波长处测其吸光度，绘制标准曲线比较定量。
原子吸收光谱法，参考张志胜等人原子吸收的方法[14]，方法略有改动。
1.4 数据统计方法
所得数据采用ANOVA和Duncan氏多重比较分析法进行统计分析，显著性水平设置为P < 0.05。
2. 结果分析
2.1 前处理方法的比较
4种方法前处理的现象详见表 1。水煮滴定法采用煮沸的方法释放海蜇中的Al离子，在酸性条件下Al离子与乙二胺四乙酸二钠反应形成稳定的络合物，用锌标准溶液滴定多余的EDTA溶液，计算样品中明矾的质量分数。试验过程中发现，水煮时提取液剧烈沸腾，出现大量泡沫，煮沸6 min后，液体呈白色半透明混浊。过滤后残渣明显，仍存较多的固形物，造成提取不完全。酸煮滴定法原理与水煮滴定法基本一致，主要采用高氯酸代替水溶液进行煮沸。煮沸时出现的泡沫明显少于水煮处理样品，处理完毕后液体呈暗黄色混浊，过滤快速，残渣不明显，表明海蜇已被完全溶解。比色法主要原理是Al离子在缓冲液体系里与络天青S及有机表面活性剂，如溴化十六烷基三甲基铵(CTAB)，十六烷基三甲基溴化铵(CPB)和聚乙二醇辛基苯基醚(OP)等，反应可形成蓝色的多元络合物，于特定波长处吸光值与Al离子质量分数成正比，可计算出Al质量分数。GB 5009.182-2003中采用湿法消化耗时长耗酸多，且消解液中残留的高氯酸对铬天青S显色影响很大，显色不稳定，影响定量。而该研究采用马福炉灰化的方法处理样品，改善了显色的稳定性。原子吸收光谱法则是利用原子吸收光度计针对元素特征，金属原子在气态时可以吸收一定波长的光辐射，使原子中外层的电子从基态跃迁到激发态的现象而建立的，而吸收辐射的强度可作为定量的依据。该法主要适用样品中微量及痕量组分分析，但海蜇中人为添加的明矾质量分数较高，采用原子吸收法测定时需要高倍数的稀释增加了操作的误差，影响了测量的准确性。
表 1 4种方法的前处理现象差异Table 1. Different pretreatment phenomena of 4 methods方法
methods样品处理量/g
sample weight前处理用时/min time 实验现象
experimental phenomena水煮滴定法BTM 10 6 煮沸后液体白色混浊，残渣明显，过滤速度慢。 酸煮滴定法ABTM 10 6 煮沸后液体浅黄色混浊，残渣较少，过滤速度快。 比色法CM 1 180 灰化后有少量黑色残留物，比色过程必须于30 min内完成。 原子吸收光谱法AASM 0.5 15 强酸煮沸或微波消解处理，消解完全，无可见颗粒。 2.2 检测结果比较
从表 2结果分析得出，水煮样品滤液的Al质量分数为223.06 mg · kg-1，用原子吸收光谱法验证水煮样品滤液及残渣中Al质量分数，测得滤液质量分数分别为262.36和323.68 mg · kg-1。可见还有相当大的一部分Al残留在滤渣中，水煮滴定法未能有效提取样品的Al，导致残渣中的Al未被测出。酸煮滴定法测得的Al质量分数与原子吸收光谱法测得的结果相近，但也明显高于水煮滴定法所测结果。马福炉-铬天青S分光光度法所测的Al质量分数为410.50 mg · kg-1。用原子吸收光谱法样品处理时必须将酸液赶尽，否则会影响试验结果，产生干扰，该法灵敏度较高，但仪器较昂贵。从比较得出，水煮滴定法所得结果误差较大，而酸煮滴定法和原子吸收光谱法的误差较少，可信度较高。
表 2 4种方法的测定结果比较Table 2. Result comparison of 4 determination methods方法
methodsw(Al)
/mg·kg-1w (明矾)/%
alum content水煮滴定法BTM 223.06±9.33a 0.42±0.017a 酸煮滴定法ABTM 470.03±8.54c 0.86±0.015c 比色法CM 410.50±19.30b 0.76±0.034b 原子吸收光谱法AASM 473.80±4.01c 0.85±0.007c 注：表中的值为平均值±SD(n=3)；同一列中具不同字母标记的数值表示差异显著(P＜0.05)。后表同此。
Note: Values (expressed as Mean±SD, n=3) with different letters in the same column are significantly different from one other (P＜0.055).The same case in the following table.2.3 检测方法的准确度和精密度
通过加标回收试验验证此方法的准确性。采用酸煮滴定法和水煮滴定法，在10 g海蜇样品中分别加入质量浓度为100 μg · mL-1Al标准液1、2、3、4和5 mL，相当于明矾加标量的0.18%、0.36%、0.54%、0.71%和0.89%。而比色法中海蜇样品处理量1.0 g，原子吸收光谱法的样品处理量为0.5 g，经单位转化后加标量与酸煮滴定法及水煮滴定法一致。由表 3比较数据分析得出，水煮滴定法的测定结果与其他3种方法存在差异明显，但其回收率与其他方法无明显差异，分析其原因可能是加标后，Al离子与海蜇结合较少，用水即可提取出来，而海蜇本身的含Al量未能检测出来。酸煮滴定法、比色法和原子吸收光谱法回收率在103.81%~107.60%，平均回收率为104.70%，符合分析要求。
表 3 4种方法的加标回收比较Table 3. Comparison of recovery of 4 determination methods加标量/mg·kg-1
added0 100 200 300 400 500 平均回收率/%
average recovery水煮滴定法BTM 223.06±9.33a 334.60±6.07a 455.42±6.47a 561.64±3.72a 675.83±3.01a 801.97±2.33a 102.51±2.61 酸煮滴定法ABTM 470.03±8.54c 582.89±8.77c 707.70±6.45c 805.95±6.88d 867.03±5.48c 973.25±5.79b 107.60±2.64 比色法CM 410.50±19.30b 527.36±4.67b 639.80±3.29b 747.19±3.71b 852.35±2.79b 965.47±3.07b 104.89±0.99 原子吸收光谱法AASM 473.80±4.01c 617.10±12.14d 684.70±7.40c 784.40±2.94c 923.60±4.38d 1001.60±2.90c 103.81±2.70 2.4 检测方法的检测限比较
根据检测限定义确定4种方法的检测限[16]。各方法的检测限比较见表 4。经比较得出水煮滴定法的检测限约为50 mg · kg-1，折合约0.1%的明矾量，酸煮滴定法的检测限比其低44%，约为0.05%的明矾。原子吸收光谱法和比色法的检测限较低，酸煮滴定法的检测限可以满足限量标准的要求，水煮滴定法的检测限最高。
表 4 4种方法的检测限Table 4. Comparison of determination limit of 4 determination methods方法
methodsw(Al)
/mg·kg-1w (明矾)/%
alum content水煮滴定法BTM 50.00 0.09 酸煮滴定法ABTM 28.00 0.05 比色法CM 5.00 0.01 原子吸收光谱法AASM 10.00 0.02 3. 讨论
3.1 方法的可操作性
酸煮滴定法和水煮滴定法样品处理方法原理一致，比较简便和容易操作，从试验现象可以看到，酸煮滴定法样品处理得比较完全，而水煮滴定法的样品处理后仍然有大量残渣，从而引起精确度降低，其检测结果数值明显低于其他3种方法。酸煮滴定法的数据稳定性好，试验重现性好。另外将比色法中样品处理的方法改为马福炉灰化法，从而避免Cl离子会对比色试验的干扰，定量更加精确，但样品处理时间太长，操作步骤也较多。原子吸收光谱法的样品处理为微波消解法，处理比较简便及完全，但因原子吸收光谱法适用于微量及痕量组分分析，对于高浓度样品检测准确性反而欠佳。
3.2 各种方法的优缺点
经过上述试验分析比较得出，4种检测方法产生检测结果的差异主要是各种前处理方法对Al元素的提取回收效率差异引起的。采用水煮提取时，海蜇组织没有被有效地分解，检测发现其处理残渣仍可检测出Al含量，但在加标回收率试验中，水煮法亦可达到较高的回收率，表明该法只将游离的Al离子提取出来，而与海蜇组织结合的Al离子则没有被很好地提取出来，导致检测结果偏小。酸煮法处理在强酸性条件下可将海蜇组织有效分解，然后采用较为成熟的滴定法，可稳定检测出海蜇中的含Al量。比色法和原子吸收分光光度法所采用的都是完全消化的处理方法，更能有效提取Al离子，所检测的结果与酸煮滴定法基本一致。ICP-OES法和ICP-MS法虽然操作简便，灵敏度和准确度高，但所使用的仪器价格昂贵，一般的质检机构都不具备。另外，由于Al是高温元素，原子吸收光谱法中原子化温度较高，测定干扰大，对石墨管的要求也较高，容易产生记忆效应。
3.3 方法的准确性分析
有学者认为如果海蜇本身含Al量很高，外加的无机Al只占其中的小部分，采用完全消化的方法检测出的是全部Al元素的含量，这样会引起对海蜇产业不公正的判断。此试验检测过未经加工的新海蜇中Al元素含量，结果发现其中Al元素含量极少(μg)，与外加的Al元素(mg)相差较大，可见海蜇产品中的Al元素来源主要为加工过程添加产生。因此，采用完全消化的方法处理样品，检出海蜇产品中的Al离子，可作为海蜇产品后期加工添加明矾量的评价指标。综上所述，酸煮滴定法操作简便、耗时短、准确、重现性更好、花费少、样品处理完全，结果精确度符合检测精度要求等，适用于生产工厂和检测机构日常检测任务。
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图 1 饲料中添加不同水平的海洋红酵母对罗非鱼胃蛋白酶活性的影响
Figure 1. Effect of dietary R.mucilaginosa on pepsin activity of Nile tilapia
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图 2 饲料中添加不同水平的海洋红酵母对罗非鱼蛋白酶活性的影响
Figure 2. Effect of dietary R.mucilaginosa on protease activity of Nile tilapia
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图 3 饲料中添加不同水平的海洋红酵母对罗非鱼淀粉酶活性的影响
Figure 3. Effect of dietary R.mucilaginosa on amylase activity of Nile tilapia
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图 4 饲料中添加不同水平的海洋红酵母对罗非鱼脂肪酶活性的影响
Figure 4. Effect of dietary R.mucilaginosa on lipase activity of Nile tilapia
表 1 罗非鱼基础饲料配方和营养成分(干物质)
Table 1 Formulation and proximate composition of experimental diets of Nile tilapia (dry matter)
% 原料
ingredient饲料成分组成
dietary composition鱼粉fishmeal 8 大豆粕soybean meal 30 花生粕peanut meal 15 次粉wheat flour 30 玉米淀粉corn starch 8 鱼油fish oil 5 维生素预混料1 vitamin mixture 1 矿物质预混料2 mineral mixture 1.5 氯化胆碱(50%) choline choride(50%) 1 卵磷脂lecithin 0.5 营养成分nutrient levels 干物质dry matter 88.9 粗蛋白crude protein 31.6 粗脂肪crude lipid 6.9 灰分ash 7.6 注：1. 多维(g · kg-1)：VD3 0.1；VE 80；VK3 15；烟酸121；核黄素22；VB6 10；VB1 10；VB12 10；泛酸钙10；生物素0.06；叶酸0.82；肌醇450；微晶纤维素9 271.02；2. 多矿(g · kg-1)：FeSO4 · 6H2O 85；MgSO4 · 7H2O 500；NaH2PO4 4 000；NaCl 1 740；CuSO4 · 5H2O 3.4；ZnSO4 · H2O 30；CoCl2 ·6H2O 40；MnSO4 · H2O 7；沸石粉3 337.1
Note：1. Vitamin premix (g · kg-1)：VD3 0.1；VE 80；VK3 15；VB3 121；VB2 22；VB6 10；VB1 10；VB12 10；Calcium pantothenate 10；Biotin 0.06；Folic acid 0.82；Inositol 450；Cellulose 9 271.02；2. Mineral premix (g · kg-1): FeSO4 ·6H2O 85；MgSO4 · 7H2O 500；NaH2PO4 4 000；NaCl 1 740；CuSO4 · 5H2O 3.4；ZnSO4 · H2O 30；CoCl2 · 6H2O 40；MnSO4 · H2O 7；Zeolite 3 337.1
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表 2 饲料中添加不同水平的海洋红酵母对罗非鱼生长的影响
Table 2 Effect of dietary R.mucilaginosa on growth performance of Nile tilapia
指标
indicator海洋红酵母添加量level of R.mucilaginosa 对照组control 1 g·kg-1 2 g·kg-1 3 g·kg-1 4 g·kg-1 5 g·kg-1 初始平均质量/g initial mean weight 5.23±0.03 5.18±0.02 5.26±0.04 5.23±0.04 5.23±0.07 5.21±0.05 终末平均质量/g final mean weight 62.02±0.25 63.58±0.59 63.85±0.93 62.87±0.03 63.20±0.97 63.20±0.55 特定生长率/%·d-1 specific growth rate 4.76±0.02 4.79±0.02 4.80±0.04 4.80±0.02 4.78±0.01 4.77±0.02 增重率/% weight gain 1 086±11 1 128±16 1 114±28 1 112±13 1 101±9 1 108±32 饲料系数feed conversion ratio 0.98±0.00c 0.99±0.01c 0.94±0.02ab 0.96±0.00bc 0.93±0.01a 0.97±0.01bc 肝体比/% hepatosomatic index 1.74±0.08ab 1.82±0.11b 1.64±0.07ab 1.70±0.09ab 1.51±0.07a 1.67±0.0.08ab 注：同一行数值不同上标字母表示差异显著(P＜0.05)。
Note：Values in the same column with different letter are significantly different from each other (P＜0.05).
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表 3 饲料中添加不同水平的海洋红酵母对罗非鱼体成分的影响
Table 3 Effect of dietary R.mucilaginosa on body composition of Nile tilapia
% 海洋红酵母添加量
level of R.mucilaginosa水分
moisture粗蛋白
crude protein粗脂肪
crude fat灰分
ash对照组control 56.86±4.32 52.69±0.77ab 34.23±3.11 13.45±0.16c 1 g·kg-1 55.82±2.35 54.27±0.96b 34.22±2.06 12.30±0.14a 2 g·kg-1 55.07±2.82 54.41±0.72b 32.30±2.51 13.05±0.13bc 3 g·kg-1 59.47±2.31 53.09±0.23ab 30.16±3.45 12.32±0.23a 4 g·kg-1 55.74±1.95 53.37±0.31ab 31.30±5.70 12.94±0.23bc 5 g·kg-1 58.16±2.31 52.05±0.26a 30.94±4.15 12.50±0.16ab 注：同一列数值不同上标字母表示差异显著(P＜0.05)，后表同此。
Note：Values in the same column with different letter are significantly different from each other (P＜0.05).The same case in the following table.
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表 4 饲料中添加不同水平的海洋红酵母对罗非鱼肝脏免疫酶活性的影响
Table 4 Effect of dietary R.mucilaginosa on hepatic lysozyme and nitric oxide synthase activities of Nile tilapia
U · mL-1 海洋红酵母添加量
level of R.mucilaginosa溶菌酶
LYZ一氧化氮合酶
NOS对照组control 0.62±0.08a 0.62±0.08a 1 g·kg-1 1.22±0.15a 1.16±0.21a 2 g·kg-1 99.03±2.96c 105.20±3.21c 3 g·kg-1 82.28±4.50b 88.24±6.50b 4 g·kg-1 6.84±0.16a 6.58±0.09a 5 g·kg-1 2.71±0.23a 2.71±0.23a
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[1] 尹安伟, 路怀灯. 海洋红酵母作为水产饲料添加剂的开发应用研究[J]. 科学养鱼, 2010(5): 64-65. https://www.doc88.com/p-7788767393359.html [2] 孙锡凤, 蒋万春. 红酵母在动物生产中的应用研究进展[J]. 饲料研究, 2014(15): 1-5, 14. [3] YANG K, YANG Y Y, LI Z J, et al. Analysis on nutrition components in Rhodotorula mucilaginosa[J]. 广东农业科学, 2014, 41(5): 146-154. doi: 10.3969/j.issn.1004-874X.2014.05.037
[4] 张瑞玲, 牛思佳, 张红娟, 等. 红鱼粉饲料中添加海洋红酵母对大菱鲆生长性能的影响[J]. 水产科学, 2014, 33(10): 616-620. doi: 10.3969/j.issn.1003-1111.2014.10.004 [5] 张瑞玲, 牛思佳, 杨振才, 等. 饲料中海洋红酵母不同添加量对大菱鲆摄食生长的影响[J]. 河北师范大学学报(自然科学版), 2013, 37(6): 618-621. https://www.doc88.com/p-8176034801314.html [6] 徐德荣, 赵晓明. 海洋酵母培育中国对虾、太平洋牡蛎幼体的生产试验报告[J]. 水产科学, 1994, 13(6): 33-34. https://cstj.cqvip.com/Qikan/Article/Detail?id=1483681&from=Qikan_Article_Detail [7] 夏冬梅, 杨铿, 李卓佳, 等. 海洋红酵母对凡纳滨对虾生长及免疫的影响[J]. 广东农业科学, 2013, 40(14): 133-137. doi: 10.3969/j.issn.1004-874X.2013.14.042 [8] 王海英, 王广军, 谢骏, 等. 我国罗非鱼养殖概况及其市场分析[J]. 水产研究, 2014(1): 22-28. https://www.hanspub.org/journal/PaperInformation?paperID=13312 [9] 赖凯昭, 吕逸欢, 梁明振, 等. 饵料中添加益生菌对奥尼罗非鱼生长性能和肠道蛋白酶活性的影响[J]. 南方农业学报, 2012, 43(11): 1769-1774. doi: 10.3969/j:issn.2095-1191.2012.11.1769 [10] 李爱娟, 何伯峰, 李光, 等. 海洋红醇母在水产养殖中的应用[J]. 齐鲁渔业, 2007, 24(12): 62. https://www.nstl.gov.cn/paper_detail.html?id=cbf9b569508a4f5713bbd61af1a34dcb [11] 荣玲. 海洋红酵母对哺乳母猪采食量的影响[J]. 江西畜牧兽医杂志, 2011(4): 13, 19. doi: 10.3969/j.issn.1004-2342.2011.04.006 [12] 陈昌福, 姚鹃, 肖雪生, 等. 海洋1号红酵母饲养日本对虾幼虾的效果[J]. 淡水渔业, 2004, 34(6): 55-57. doi: 10.3969/j.issn.1000-6907.2004.06.020 [13] YANG S P, WU Z H, JIAN J C, et al. Effect of marine red yeast Rhodosporidium paludigenum on growth and antioxidant competence of Litopenaeus vannamei[J]. Aquaculture, 2010, 309(1/2/3/4): 62-65. doi: 10.1016/j.aquaculture.2010.09.032
[14] 黄金凤, 赵志刚, 罗亮, 等. 水温和饲料蛋白质水平对松浦镜鲤幼鱼肠道消化酶活性的影响[J]. 动物营养学报, 2013, 25(3): 651-660. doi: 10.3969/j.issn.1006-267x.2013.03.025 [15] 高攀, 蒋明, 文华, 等. 不同蛋白能量比饲料对草鱼幼鱼消化酶活性的影响[J]. 淡水渔业, 2009, 39(6): 54-58. doi: 10.3969/j.issn.1000-6907.2009.06.009 [16] 黎军胜, 李建林, 吴婷婷. 饲料成分与环境温度对奥尼罗非鱼消化酶活性的影响[J]. 中国水产科学, 2004, 11(6): 585-588. doi: 10.3321/j.issn:1005-8737.2004.06.018 [17] 田宏杰, 庄平, 高露姣. 生态因子对鱼类消化酶活力影响的研究进展[J]. 海洋渔业, 2006, 28(2): 158-162. doi: 10.3969/j.issn.1004-2490.2006.02.013 [18] 杨世平, 吴灶和, 简纪常. 饲料中添加沼泽生红冬孢酵母对凡纳滨对虾消化酶及肠道微生物的影响[J]. 水产科学, 2011, 30(7): 391-394. doi: 10.3969/j.issn.1003-1111.2011.07.005 [19] 裴凌鹏, 董福慧, 惠伯棣, 等. 虾青素改善H2O2对成骨细胞损伤的影响[J]. 中国中医基础医学杂志, 2007, 13(8): 585-587. doi: 10.3969/j.issn.1006-3250.2007.08.013 [20] 朱明军, 吴振强, 梁世中. 高产虾青素红发夫酵母选育研究进展[J]. 氨基酸和生物资源, 2000, 22(3): 9-13. http://swzytsg.whu.edu.cn/ch/reader/view_abstract.aspx?journal_id=swzy&file_no=200003003&html_url=200003003 [21] CHIU K H, LIU W S. Dietary administration of the extract of Rhodobacter sphaeroides WL-APD911 enhances the growth performance and innate immune responses of seawater red tilapia (Oreochromis mossambicus×Oreochromis niloticus)[J]. Aquaculture, 2014, 418/419 : 32-38. doi: 10.1016/j.aquaculture.2013.10.007
[22] HUNG S W, TU C Y, WANG W S. In vivo effects of adding singular or combined anti-oxidative vitamins and/or minerals to diets on the immune system of tilapia (Oreochromis hybrids) peripheral blood monocyte-derived, anterior kidney-derived, and spleen-derived macrophages[J]. Vet Immunol Immunopathol, 2007, 115(1/2): 87-99. doi: 10.1016/j.vetimm.2006.09.004
[23] 许国焕, 吴月嫦, 何四旺, 等. 微生物多糖对罗非鱼生长及非特异免疫功能的影响[J]. 水利渔业, 2004, 24(1): 52-53, 67. https://www.nstl.gov.cn/paper_detail.html?id=3a09a6fee6bf872485bf2405cab30479 [24] SHIAU S Y. Nutrient requirements of Penaeid shrimps[J]. Aquaculture, 1998, 164(1/2/3/4): 77-93. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0044848698001781
[25] ABU-ELALA N, MARZOUK M, MOUSTAFA M. Use of different Saccharomyces cerevisiae biotic forms as immune-modulator and growth promoter for Oreochromis niloticus challenged with some fish pathogens[J]. Int J Vet Sci Med, 2013, 1(1): 21-29. doi: 10.1016/j.ijvsm.2013.05.001
[26] GULLIAN M, THOMPSON F, RODRIGUEZ J. Selection of probiotic bacteria and study of their immunostimulatory effect in Penaeus vannamei[J]. Aquaculture, 2004, 233(1/2/3/4): 1-14. doi: 10.1016/j.aquaculture.2003.09.013
[27] RENGPIPAT S, RUKPRATANPORN S, PIYATIRATITIVORAKUL S A. Immunity enhancement in black tiger shrimp (Penaeus monodon) by a probiont bacterium (Bacillus S11)[J]. Aquaculture, 2000, 191(4): 271-288. doi: 10.1016/S0044-8486(00)00440-3
[28] 陈超然, 陈萱, 陈昌福, 等. 酵母β-葡聚糖对受免异育银鲫免疫应答的增强作用[J]. 华中农业大学学报, 2003, 22(4): 380-384. http://hnxbl.cnjournals.net/hznydxzr/article/abstract/20030489?st=article_issue [29] 李富东, 叶继丹, 王琨, 等. 长时间连续投喂β-葡聚糖对鲤生长性能及非特异性免疫功能的影响[J]. 动物营养学报, 2009, 21(4): 499-505. https://www.zhangqiaokeyan.com/academic-journal-cn_chinese-journal-animal-nutrition_thesis/0201260756645.html -
期刊类型引用(9)
1. 李慧, 王红玲, 陈建文. 2015～2017年日照市市售即食海蜇中铝含量检测. 预防医学论坛. 2017(09): 712-713+716 . 
百度学术
2. 李学渊, 陈建文, 张凤梅, 徐恒戬. 成品海蜇的铝残留问题与解决思路. 食品安全质量检测学报. 2016(03): 1247-1251 . 百度学术
3. 郭睿, 郑明静, 林瑜, 罗联忠, 曾绍校. 盐渍海蜇脱铝工艺的优化及其对海蜇品质的影响. 食品工业科技. 2016(05): 273-276 . 百度学术
4. 罗联钰. 即食海蜇工业化生产工艺的初步研究. 食品科技. 2016(01): 89-93 . 百度学术
5. 吴则业, 岑剑伟, 杨贤庆, 魏涯, 周婉君, 赵永强. N_2O-C_2H_2火焰原子吸收光谱法检测海蜇中铝含量. 食品与发酵工业. 2015(02): 184-188 . 百度学术
6. 吴则业, 杨贤庆, 岑剑伟, 魏涯, 赵永强, 黄卉, 周婉君. 海蜇产品中铝含量3种测定方法的比较. 食品与发酵工业. 2015(03): 204-208 . 百度学术
7. 白艳艳, 谷伟丽, 马元庆, 孙珊, 魏潇, 张秀珍. 海蜇中铝测定前处理方法及检测方法比较. 食品安全质量检测学报. 2014(04): 1197-1203 . 百度学术
8. 吴则业, 杨贤庆, 岑剑伟, 郝淑贤, 魏涯, 黄卉. 海蜇中铝残留检测方法及其安全性的研究进展. 食品工业科技. 2014(11): 376-380 . 百度学术
9. 陈建文, 李慧, 王红玲. 日照市2011～2012年市售食品中铝含量的调查分析. 食品安全质量检测学报. 2013(02): 540-543 . 百度学术
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