鲸类体内持久性有机氯残留研究的进展

刘会, 甘居利, 贾晓平

刘会, 甘居利, 贾晓平. 鲸类体内持久性有机氯残留研究的进展[J]. 南方水产科学, 2008, 4(5): 74-80.
引用本文: 刘会, 甘居利, 贾晓平. 鲸类体内持久性有机氯残留研究的进展[J]. 南方水产科学, 2008, 4(5): 74-80.
LIU Hui, GAN Juli, JIA Xiaoping. Progress and status of research on persistent organochlorine compounds in cetaceans[J]. South China Fisheries Science, 2008, 4(5): 74-80.
Citation: LIU Hui, GAN Juli, JIA Xiaoping. Progress and status of research on persistent organochlorine compounds in cetaceans[J]. South China Fisheries Science, 2008, 4(5): 74-80.

鲸类体内持久性有机氯残留研究的进展

基金项目: 

中央级公益性科研院所基本科研业务费专项资金项目(中国水产科学研究院南海水产研究所) 2007ZD04

广东省科技兴海重大项目 A200099E01

详细信息
    作者简介:

    刘会(1983-),女,硕士研究生,从事海洋生物有机氯污染研究。E-mail: hliu2008.happy@163.com

    通讯作者:

    贾晓平,E-mail: jiaxiaoping53@163.com

  • 中图分类号: X835

Progress and status of research on persistent organochlorine compounds in cetaceans

  • 摘要:

    文章综述了20世纪70年代以来有关鲸类体内持久性有机氯(persistent organochlorines,POs)的研究进展和概况,包括鲸类体内POs残留水平的分析方法;POs进入鲸体内的方式及消除途径;鲸类体内POs的残留水平;POs对鲸的有害影响;鲸类体内POs污染的毒性评价。通过分析表明,POs对海洋生态系统的影响还将持续很长时间,中国应进一步研究近岸海域哺乳动物POs的长期污染效应,进而更深入地研究其环境行为、归宿和影响效应。

    Abstract:

    The progress and status of research on persistent organochlorines (POs) in cetaceans since 1970s were reviewed in this paper. The review focused on the following five aspects: the analysis methods for residue levels of POs in cetaceans, the ways of POs getting into and eliminating from cetacean body, the residue levels of POs in cetaceans, the harmful effect of POs on cetaceans, and assessment of the pollution levels of POs in cetaceans. The authors point out that the effects of POs on marine ecosystem will continue for a long time, and the long-term effect of POs on marine mammals in the coastal waters should be further studied.

  • 鱼类外周血细胞是机体细胞免疫和体液免疫的重要组成部分,是快速诊断疾病的有效指标,因而,研究鱼类外周血细胞形态、数量和分布非常重要,也是研究免疫功能的基础。目前,包括鱼类在内的非哺乳类脊椎动物的血液学研究开展十分广泛,已有许多学者先后对草鱼(Ctenopharyngodon idellus)[1]、鲷(Acanthopagrus australis)[2]、鳜(Siniperca chuatsi)[3]和南方鲇(Silurus meridionalis)[4]等血细胞进行过显微结构研究,有的还深入到了亚显微水平和组织化学水平。军曹鱼(Rachycentron canadum)亦称海鲡,属于鲈形目、军曹鱼科、军曹鱼属,生长在热带、亚热带海洋水域,为暖水性鱼类,近年来已经成为南方主要的名优海水养殖品种,是目前海水网箱养殖中生长速度最快,个体最大,最有推广前景的鱼类[5]。本文以军曹鱼外周血液为材料,利用光镜技术研究了其血细胞的种类和形态,将加深对军曹鱼血液有形成分的理解。

    军曹鱼取自南海水产研究所三亚热带研究开发中心实验基地,人工池养,鱼龄为出膜后第60天,健康无病,共20尾。从心脏采血,利用其中10尾的血液做血红蛋白含量的测定、红细胞计数、白细胞计数,按照陈其才等[6]缩编的生理学试验提供的血液指标测定的方法进行;另外10尾的血液做血细胞涂片,将血液直接在洁净载玻片上涂片,晾干后,按常规Wright氏和Giemsa-Wrigh氏复染法染色,用Leica显微镜在油镜下观察、测量细胞大小(长径×短径),取测量的平均值。每尾鱼选2张血涂片,对其上的200个白细胞进行分类计数。

    军曹鱼稚鱼血红蛋白的测定、红细胞计数、白细胞计数、白细胞分类计数和各类血细胞的大小见表 1表 2表 3

    表  1  军曹鱼稚鱼的部分血液指标(n=10)
    Table  1.  The hematological indices of juvenile cobia
    血液指标
    hematological indices
    平均值±标准差
    means±SD
    血红蛋白/mg·mL-1
    hematolobin
    8.12±0.87
    红细胞数/×109 ind·mL-1
    erythrocyte count
    2.97±0.82
    白细胞数/×106 ind·mL-1
    leucocyte count
    1.39±0.94
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    表  2  红细胞的大小(n=100)
    Table  2.  The sizes of erythrocytes μm
    参数
    parameters
    细胞长径
    long diameter of cell
    细胞短径
    short diameter of cell
    核长径
    long diameter of nuclei
    核短径
    short diameter of nuclei
    红细胞
    erythrocyte
    10.61±0.95 7.90±0.48 5.93±1.07 3.12±0.52
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    表  3  白细胞分类计数(n=2 000)和各类白细胞的大小(n=10)
    Table  3.  Differential leucocytes counts and the sizes of different blood cells
    参数
    parameters
    小淋巴细胞
    small lymphocyte
    大淋巴细胞
    large lymphocyte
    嗜中性粒细胞
    neutrophil
    单核细胞
    monocyte
    血栓细胞
    thrombocyte
      白细胞分类计数
      leucocytes counts
    53.00±8.511 7.59±4.28 4.78±1.372 4.63±4.08
    细胞长径/μm
    long diameter of cell
    5.35±1.041 1.72±1.661 1.42±1.401 1.04±0.98 6.49±1.44
    细胞短径/μm
    short diameter of cell
    5.10±0.271 0.28±1.161 0.93±0.80 9.70±0.71 4.76±0.82
    核长径/μm
    long diameter of nuclei
    4.95±0.91 9.90±0.74 6.32±1.08 8.21±1.63 5.24±1.23
    核短径/μm
    short diameter of nuclei
    4.70±0.84 9.10±0.34 5.41±0.77 6.40±0.94 3.90±0.79
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    血涂片分别用Wright氏和Giemsa-Wrigh氏复染法染色,Wright氏染色剂使胞浆尤其是中性粒细胞的颗粒着色清晰,Giemsa氏染色剂使胞核着色清晰,各类血细胞在2种染色剂下的着色反应一致。军曹鱼稚鱼外周血涂片,在光镜下可区分出红细胞和各种白细胞,椭圆形的红细胞占绝大多数,少数单个或三五成群的白细胞分散于密集的红细胞之间。按Ehrlisk的标准[7]可将外周细胞分为血栓细胞、淋巴细胞、单核细胞、嗜中性白细胞。军曹鱼稚鱼外周血白细胞群的构成特点是以淋巴细胞为主,血栓细胞较多,单核细胞较少,在血涂片上未见嗜酸性粒细胞和嗜碱性粒细胞。

    军曹鱼稚鱼外周血涂片中成熟红细胞呈椭圆形,表面光滑,核卵圆形,位于细胞中央,核内含有致密染色质团块,呈深紫红色,胞质内充满血红蛋白,呈均匀的浅紫红色或浅橘红色,核周与胞质交界处有半透明的薄环。未成熟红细胞形状与成熟的有所差别,细胞呈圆形,其核也较圆,染色相对于成熟红细胞浅,细胞质也浅于成熟的红细胞。幼稚红细胞数量较少,胞体及胞核略大于成熟红细胞(图版Ⅰ-1)。血涂片中偶尔而可见呈分裂状态的红细胞,可见到核分裂的现象(图版Ⅰ-2)。

      图版Ⅰ  1. 未成熟的红细胞瑞氏染色×2 000;2. 即将分裂的红细胞瑞氏-姬姆氏复染色×1 500;3. 成群的血栓细胞瑞氏-姬姆氏复染色×1 500;4. “蝌蚪状”血栓细胞瑞氏染色×2 000;5. 椭圆形的血栓细胞瑞氏染色×2 000;6. 纺锤状血栓细胞瑞氏染色×2 000;7. 有伪足样突的小淋巴细胞瑞氏染色×2 000;8. 缺核小淋巴细胞瑞氏染色×2 000;9. 有微绒毛突起的大淋巴细胞瑞氏-姬姆氏复染色×2 000;10. 核呈马蹄形的单核细胞瑞氏-姬姆氏复染色×1 500;11. 核呈月牙形的单核细胞瑞氏染色×2 000;12. 核呈不规则形单核细胞瑞氏染色×2 000;13. 核呈两分叶的中性粒细胞瑞氏-姬姆氏复染色×2 000;14. 核呈卵圆形的中性粒细胞瑞氏-姬姆氏复染色×2 000;15. 核呈肾形的中性粒细胞瑞氏-姬姆氏复染色×1 500
      图版Ⅰ.  1. immature erythrocyte Wright′s staining×2 000; 2. dividing erythrocyte Wright-Giemsa′s staining×1 500; 3. group of thrombocytes Wright-Giemsa′s staining×1 500; 4. "tadpole shape" thrombocyte Wright′s staining×2 000; 5. "oval shape" thrombocyte Wright′s staining×2 000; 6. "spindle shape" thrombocyte Wright′s staining×2 000; 7. small lymphocyte with pseudopodia Wright′s staining×2 000; 8. small lymphocyte with fragmentary nucleus Wright′s staining×2 000; 9. large lymphocyte with pseudopodia Wright-Giemsa′s staining×2 000; 10. monocyte with "horse′s hoof shape"nucleus Wright-Giemsa′s staining×1 500; 11. monocyte with "crescent shape"nucleus Wright′s staining×2 000; 12. monocyte with deformed nucleus Wright′s staining×2 000; 13. neutrophil with bilobed nucleus Wright-Giemsa′s staining×2 000; 14. neutrophil with round nucleus Wright-Giemsa′s staining×2 000; 15. neutrophil with "kidney shape" nucleus Wright-Giemsa′s staining×1 500

    军曹鱼稚鱼外周血涂片中只能观察到白细胞中的血栓细胞、淋巴细胞、单核细胞和中性粒细胞。

    血栓细胞在血涂片中可见到多种形态,三五成群或更多集合在一起,呈“岛屿”状,圆形或不规则形,核质比大,染色质致密呈深蓝色(图版Ⅰ-3);或是单个或成对存在,胞体卵圆形,一端的胞质向外突起,呈蝌蚪状,胞核占细胞的大部分,突起的胞膜内充满淡红色的胞质(图版Ⅰ-4);或是单个分布,胞体椭圆形或棒状(图版Ⅰ-5);或是单个存在,胞体纺锤形,只在长轴两端有少量胞质,中间处与核膜几乎相切(图版Ⅰ-6)。

    淋巴细胞根据形状大小可分为大淋巴细胞和小淋巴细胞。小淋巴细胞呈圆形或不规则形,有明显的伪足样胞突,核较大,占细胞2/3以上,被染成深蓝紫色,胞质呈弱碱性而被染成浅蓝色,容易与核的染色混淆(图版Ⅰ-7)。有的在胞质较多的一侧有缺刻,中位或偏于一侧,有时与血栓细胞难以区分,特别是当血栓细胞的长径较短时(图版Ⅰ-8)。大淋巴细胞呈圆形,表面有许多微绒毛突起,核很大,紫色的染色质呈粗网状,几乎占满整个胞质(图版Ⅰ-9)。

    单核细胞呈圆形、卵圆形或椭圆形,常有伪足样胞质突起。核呈卵圆形、马蹄形、不规则的多边形,亦有近月牙形等,一般占整个细胞的1/3以上,多偏于一侧,也有位于中央位或略偏于中央位。染色质疏网状,染成紫红色。胞质较丰富,染成淡蓝色,有些略微夹杂浅红色(图版Ⅰ-10~12)。

    中性粒细胞的细胞形态多样,呈圆形、卵圆形、椭圆形,以卵圆形居多,边缘常有波纹状小突起。核较大,形状多样,呈圆形、椭圆形、肾形、哑铃形和分叶状等,胞核常占整个细胞的1/4~1/3,偏于细胞的一侧,常与质膜相切。核染成浅紫红色,胞质丰富,染成浅蓝至浅粉红色,其中充满淡紫红色小颗粒。中性粒细胞与单核细胞有时难以区分,但前者胞体较大,胞核较小,不超过整个细胞的1/3,胞核和胞质染色比单核细胞浅(图版Ⅰ-13~15)。

    对白细胞分类计数发现,淋巴细胞最多,大约占白细胞的总数的53%,其次是血栓细胞,大约占24%,嗜中性粒细胞大约占17%,最少的是单核细胞,仅占5%左右,没有发现嗜酸性和嗜碱性粒细胞,可能是此类细胞含量稀少或由于其本身在制作血涂片时容易被破坏所致。陈刚等[5]对军曹鱼血液指标的测定结果与本文有一些差异,作者所测的红血球与白血球的比值较高,前者所测的血栓细胞在白细胞中所占的比率最高(大约61%),而淋巴细胞(大约17%)与嗜中性粒细胞(大约16%)比率相当,因为本实验用鱼日龄较小,结果上的差异可能与鱼体大小和其生长的环境有关。各类白细胞所占的比例,不同文献报道极不一致[3, 8],主要反映在淋巴细胞和血栓细胞所占的比例上,至于其他的白细胞则因数量较少而所占比例相差不是很明显。造成淋巴细胞和血栓细胞比例相差悬殊的原因可能有以下几个方面,有的学者在计数时把血栓细胞算在淋巴细胞内,因而淋巴细胞比例显著提高并成为最丰富的白细胞[9];淋巴细胞对外界环境变化比较敏感,因而采血时鱼体所处的状态不同,就有可能造成种间或个体间的差异[3]。至于各类细胞的大小,与已报道的基本一致,血栓细胞和小淋巴细胞较小,单核细胞和粒细胞较大。有文献报道鱼类红细胞未进一步分化,所以比白细胞要大[10],但本试验中可以看到大淋巴细胞、单核细胞、嗜中性粒细胞中有些个体大于红细胞。

    鱼类成熟红细胞为椭圆形的中心凸出的细胞,与人类和哺乳类动物红细胞的最大区别是具有一个细胞核。幼稚红细胞呈圆形略大于成熟红细胞,胞质及胞核染色均较成熟红细胞略浅。郭琼林等[11]在草鱼血细胞研究中根据红细胞的发生,发现由原红细胞经幼稚红细胞到成熟红细胞,胞体及胞核均由大变小,形态由圆形变为椭圆形,核固缩浓染,军曹鱼稚鱼外周血中所见到的成熟及幼稚红细胞的形态同草鱼的一致。此外,红细胞直接分裂现象也被观察到,但数量甚少,且个体间有差异,与幼稚红细胞的数目也不成比例,说明红细胞主要由造血器官产生后释放入外周血液,红细胞极少数靠直接分裂产生。

    血栓细胞在功能上与哺乳动物的血小板一样参与凝血过程,可是两者在形态和来源上却迥然不同。哺乳动物血小板无核,系由骨髓的巨核细胞分离出来的细胞质小块,而鱼类血栓细胞形态和淋巴细胞相似,它的来源还没有定论,在造血器官中未能找到血栓细胞发育的证据[12]。军曹鱼血栓细胞形态多样,有纺锤形、圆锥形、椭圆形和棒状形,有学者认为血栓细胞不可能具有吞噬特性,他们通过质膜上的小孔机械摄入胞外物质而与环境进行交流[13]。但BARBER等[14]认为血栓细胞中的小泡和微管与吞噬作用有关,FERGUSON[15]在石鲽(Kareius bicoloratus)鱼血栓细胞中观察到被吞噬的碳颗粒。以上不同的观点说明血栓细胞的功能可能具有种的差异性,现在还没有证据证实军曹鱼的血栓细胞有无吞噬的功能。

    有很多学者将淋巴细胞分为大、小2类分别描述的,但是ELLIS等[13]认为将淋巴细胞分为大小2类是武断的,因为它们代表了同一种细胞的不同功能状态。很多学者也十分赞同将其归为一类进行描述,认为大小淋巴细胞只是体积变化范围较宽而已。通过对军曹鱼稚鱼淋巴细胞形态结构的观察,发现稚鱼淋巴细胞不仅有大小的区别,其形态结构也有明显的差异。大淋巴细胞表面有许多微绒毛突起,而小淋巴细胞表面有明显的伪足样突起;大淋巴细胞核染色稍浅。当处于静息不活跃状态的小淋巴细胞遇到抗原刺激时,将转变成代谢活跃并能进行增殖的大淋巴细胞,此时细胞核增大,染色质变细,胞质增多,重新分裂和分化,进行免疫应答[16],可见不同的形态结构决定了其不同的功能,它们都是免疫细胞的重要组成部分。

    单核细胞存在于所有脊椎动物中,担负着非特异性免疫的重要作用。鱼类单核细胞有较多的胞质突起,胞质中含有较多的液泡和吞噬物,说明它可以进行活跃的变形运动,这在鳜、小点猫鲨(Scyliorhinus canicula)、鲤(Cyprinus carpio)、日本白鲫(Carassius cuvieri)、鲫鱼(C.aumtus)等多种鱼类已得到证实[3, 17-19]。周玉等[20]发现1龄欧洲鳗鲡(Anguilla anguilla)的单核细胞吞噬红细胞现象,证明了单核细胞具有吞噬功能。军曹鱼稚鱼单核细胞胞核形状多样,马蹄状、椭圆状、月牙状等,细胞表面有较多的胞突和胞质中还有较多液泡,说明其有较强的吞噬能力,是非特异性免疫重要组成部分。

    军曹鱼嗜中性粒细胞的核大多数是单叶的,也有二叶的,没有观察到三叶的。中性粒细胞存在于所有硬骨鱼类血液中,能做变形运动,参与机体的炎症反应,大多数出现在炎症的初期,其功能可能是产生细胞因子和补充免疫细胞到达损伤处[21]。还有研究证实,斑点叉尾(Ictalurus punctatus)的嗜中性粒细胞具有吞噬性,可以杀死一些细胞[22]

    外周血细胞中与鱼体免疫联系最大的是淋巴细胞、粒细胞和单核细胞等,淋巴细胞是鱼体内参与特异性反应的免疫细胞,在免疫应答中起介导细胞免疫且调节免疫应答,在体液免疫中产生特异性免疫因子和免疫球蛋白作用[23]。在外周血液中,淋巴细胞较单核细胞和粒细胞发挥作用迟,在接受疫苗免疫的最初阶段,非特异性的单核细胞和粒细胞最先发挥抗菌作用[24],粒细胞和单核细胞一方面可以破坏和降解血液中的病原体,另一方面又会被活化并产生更多的抗病因子。在对兴国红鲤(C. carpio. var. singguonensis)进行柱状噬纤维菌免疫后,外周血中的单核细胞和粒细胞在初期数量会代偿性的增加,从免疫中后期开始由于单核细胞大量解体,使其数量急剧下降[25],单核细胞及粒细胞数目的急剧减少,可能与这2种细胞参与对细菌吞噬作用后解体有关。

  • 表  1   不同海域各种鲸脂中PCBs、DDT和HCH的含量

    Table  1   Concentrations of PCBs, DDT and HCH in blubber of various cetaceans in different waters μg · g-1 w/w

    鲸的总类
    species
    采样地点
    locality
    采样时间
    sample year
    多氯联苯
    PCBs
    滴滴涕
    DDT
    六六六
    HCHs
    文献
    reference
    白鲸Delphinapterus leucas 加拿大圣劳伦斯河口水域 1990 65 67 0.38 [9]
    白鲸D.leucas 加拿大纽芬兰岛海域 1990 1.9 1.3 NA [26]
    白鲸D.leucas 丹麦格陵兰岛海域 1994 5.3 4 NA [26]
    白鲸D.leucas 美国阿拉斯加白令海 1990 4.2 3.1 NA [13]
    白鲸D.leucas 美国阿拉斯加库克海域 1992~1997 1.5 1.4 NA [13]
    柏氏中喙鲸Mesoplodon densirostris 毛里求斯海域 2000 1.4la 2.7a 0.004 [13]
    河口海豚Sotalia guianensis 巴西海岸 1997~1999 34a 52a NA [13]
    侏抹香鲸Kogia sinus 中国台湾海域 2004 0.2 NA NA [10]
    侏抹香鲸K.sinus 南非海域 1994 0.25 NA NA [10]
    伪虎鲸Pseudorca crassidens 中国台湾海域 2004 5.6 NA NA [10]
    瓜头鲸Peponocephala electra 日本海岸 2006 17 22 0.25 [27]
    虎鲸Orcinus orca 日本北海道海域 2005 57 220 5.9 [28]
    飞旋海豚Stenella longirostris 菲律宾棉兰老岛海域 1996 7.7 43 0.24 [9]
    中华白海豚Sousa chinensis 印度孟加拉湾 1992 4.6 55 0.6 [9]
    港湾鼠海豚Phocoena phocoena 里海 1993 16 70 10 [9]
    瓶鼻海豚Tursiops truncatus 地中海 1992 560 190 NA [9]
    北极鲸Balaena mystice 美国阿拉斯加海域 NA NA 0.11 0.44 [9]
    虎鲸O.orca 美国北部的西海岸 1986~1989 22 32 0.71 [9]
    露脊鼠海豚Neophocaenoides 中国香港水域 1993~1997 27 93 0.58 [9]
    小须鲸Balaenoptera acutorostrata 南非海岸 1974 ND ND~0.33 NA [27]
    小须鲸B.acutorostrata 南极海域 1984~1985 0.038 0.11 NA [27]
    小须鲸B.acutorostrata 南极海域 1992~1993 0.13 0.39 NA [27]
    注:NA. 未分析;ND. 未检出;a. 脂重含量Note:NA. not analysed;ND. not detected;a. lipid weight
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    表  2   PCBs、DDT和HCH在鲸类体组织中的含量分布

    Table  2   Concentrations of PCBs, DDT and HCH in body tissues of cetaceans ng · g-1 w/w

    鲸的种类
    species
    采样地点
    locality
    采样时间
    sampling year
    组织
    tissues
    多氯联苯
    PCBs
    滴滴涕
    DDT
    六六六
    HCH
    文献
    references
    白鲸(幼体) Delphinapterus leucas 加拿大圣劳伦斯河 1991 肌肉 NA NA NA [32]
    肾脏 4 134a 2 332a 182a
    肝脏 8 779a 3 467a 237a
    1 679a 702a 211a
    鲸脂 17 563a 2 230a 159a
    虎鲸Orcinus orca 不列颠和爱尔兰海域 1994~2001 肌肉 160 190 < 20 [36]
    肾脏 40 170 10
    肝脏 NA NA NA
    NA NA NA
    鲸脂 78 000 98 600 162
    白鲸D.leucas 加拿大圣劳伦斯河 1988~1989 肌肉 993.5 1 255.4 2.8 [20]
    肾脏 NA NA NA
    肝脏 1 435.7 1 470.6 6.8
    1 387.4 3 064.1 37.3
    鲸脂 59 000 56 000 NA
    白鲸D.leucas 加拿大北部亨德里克森岛 1992 肌肉 56.1 28.2 1 [20]
    肾脏 NA NA NA
    肝脏 132.3 73.6 2.7
    130.5 46 24.9
    鲸脂 NA NA NA
    北极鲸Balaena mystice 美国阿拉斯加北部 1997~1999 肌肉 1.87 1.71 2.74 [37]
    肾脏 12 6.37 7.2
    肝脏 9.1 3.72 9.45
    NA NA NA
    鲸脂 354 377 297
    注:NA. 未分析;ND. 未检测出;a. 脂重含量
    Note:NA. not analysed;ND. not detected;a. lipid weight
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  • [1] 阮栋梁, 张英锋, 张永安, 等. POPs—持久性有机污染物和危害[J]. 渤海大学学报: 自然科学版, 2006, 27(3): 193-198. doi: 10.3969/j.issn.1673-0569.2006.03.001
    [2] 丘耀文, 张干, 郭岭利, 等. 大亚湾海域典型有机氯农药生物积累特征及变化因素研究[J]. 海洋学报, 2007, 29(2): 51-57. doi: 10.3321/j.issn:0253-4193.2007.02.006
    [3]

    HOLDEN A V, MARSDEN K. Organochlorine pesticides in seals and porpoises[J]. Nature, 1967, 216(1): 1 274-1 276. doi: 10.1038/2161274a0

    [4]

    RUUS A, UGLAND K I, ESPELAND O, et al. Influence of trophic position on organochlorine concentrations and compositional patterns in a marine food web[J]. Environ Toxicol Chem, 2003, 22(1): 2 356-2 364. doi: 10.1002/etc.5620211114

    [5]

    PHILLPS D J H. Organochlorine and trace metals in green-lipped mussels Perna viridis from Hong Kong waters: a test of indicator ability[J]. Mar Ecol Prog Ser, 1985, 21: 252-258. doi: 10.1016/0198-0254(85)92995-4

    [6] 方展强, 张润兴, 黄铭洪. 珠江河口区翡翠贻贝中有机氯农药和多氯联苯含量及分布[J]. 环境科学学报, 2001, 21(1): 113-116. doi: 10.3321/j.issn:0253-2468.2001.01.022
    [7]

    NIE X P, LAN C Y, WEI T L, et al. Distribution of polychlorinated biphenyls in the water, sediment and fish from the Pearl River estuary, China[J]. Mar Pollut Bull, 2005, 50(5): 537-546. doi: 10.1016/j.marpolbul.2004.11.046

    [8] 黄健生, 贾晓平, 甘居利. 珠江口印度洋瓶鼻海豚皮脂的多氯联苯研究[J]. 中国环境科学, 2007, 27(4): 461-466. doi: 10.3321/j.issn:1000-6923.2007.04.007
    [9]

    MINH T B, WATANABE M, NAKATA H, et al. Contamination by persistent organochlorines in small cetaceans from Hong Kong coastal waters[J]. Mar Pollut Bull, 1999, 39(1/12): 383-392. doi: 10.1016/S0025-326X(99)00066-1

    [10]

    CHOU C C, CHEN Y N, LI C S. Conger-specific polychlorinated biphenyls in cetaceans from Taiwan waters[J]. Environ Contam Toxicol, 2004, 47: 551-560. doi: 10.1007/s00244-004-3214-y

    [11] 黄健生, 贾晓平, 甘居利. 国外海豚体内多氯联苯的研究进展与概况[J]. 南方水产, 2006, 2(6): 66-71. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2006.06.013
    [12]

    CRAIG L H, XU HUNG YAN, LAM J C W, et al. An assessment of the risks associated with polychlorinated biphenyls found in the stomach contends of stranded Indo-Pacific humpback dolphins (Sousa chinensis) and finless porpoises (Neophocaena phocaenoides) from Hong Kong waters[J]. Chemosphere, 2006, 63(5): 845-852. doi: 10.1016/j.chemosphere.2005.07.059

    [13]

    ANDERSEN G, KOVACS K M, LYDERSEN C, et al. Concentrations and patterns of organochlorine contaminants in white whales (Delphinapterus leucas) from Svalbard, Norway[J]. Sci Total Environ, 2001, 264(3): 267-281. doi: 10.1016/S0048-9697(00)00765-8

    [14]

    BERNHOFT A, SKAARE J U. Levels of selected individual polychlorinated biphenyls in different tissue of harbour seals(Phoca vitulina) from the southern coast of Norway[J]. Environ Pollut, 1994, 86(1): 99-107. doi: 10.1016/0269-7491(94)90011-6

    [15]

    MARSILI L, GAGGI C. Organochlorine compounds in captive bottlenose dolphins (Tursiop turncatus). Biomagnification or bioaccumulation[J]. Chemosphere, 1995, 31(8): 3 919-3 932. doi: 10.1016/0045-6535(95)00263-8

    [16] 惠秀娟. 环境毒理学[M]. 北京: 化学工业出版社, 2003: 65-157. https://xueshu.baidu.com/usercenter/paper/show?paperid=7de5b07bff192464ea447ed5919b81a1&site=xueshu_se
    [17]

    BORRELL A, BLOCH D, DESPORTES G. Age trends and reproductive transfer of organochlorine compounds in long-finned pilot whales from the Faroe Island[J]. Environ Pollut, 1995, 88(3): 283-292. doi: 10.1016/0269-7491(95)93441-2

    [18]

    ADDISON R F, ZINCK M E, ACKMAN R G. Residues of organochlorine pesticides and polychlorinated biphenyls in some commercially produced Canadian marine oils[J]. Fish Res Board Can, 1972, 29(4): 349-355. doi: 10.1139/f72-062

    [19]

    OLESIUK P F, BIGG M A, ELLIS G M. Life history and population dynamics of resident killer whales (Orcinus orca) in the coastal waters of British Columbia and Washington State[R]. [S. l. ]: Report of the International Whaling Commssion Special Isuue, 1990, 12: 209-243. https://xueshu.baidu.com/usercenter/paper/show?paperid=1ec8711d5778ae56c887003edc5cc902&site=xueshu_se

    [20]

    METCALFE C, ETCALFE T, RAY S, et al. Polychlorinated biphenyls and organochlorine compounds in brain, liver and muscle of beluga whales (Delphinapterus leucas) from the Arctic and St. Lawrence estuary[J]. Mar Environ Res, 1999, 47(1): 1-15. doi: 10.1016/S0141-1136(98)00107-X

    [21]

    BELAND P, DEGUISE S, GIRARD C, et al. Toxic compounds and health and reproductive effects in St. Lawrence belugas[J]. J Great Lakes Res, 1993, 19(4): 766-775. doi: 10.1016/S0380-1330(93)71264-2

    [22]

    AONO S, TANABE S, FUJISE Y, et al. Persistent organochlorines in minke whale (Balaenoptera acutorostrata) and their prey species from the Antarctic and the north Pacific[J]. Environ Pollut, 1998, 98(1): 81-89.

    [23]

    DESPORTES G, MOURITSEN R. Preliminary results on the diet of the long-finned pilot whale off the Faroe Island[J]. Rep Int Whaling Comm, 1993, 14(Special): 305-324. doi: 10.1016/S0269-7491(97)00105-X

    [24]

    BIGG M A, ELLIS G M, FORD J K, et al. A study of their identification, genealogy, and natural history in British Columbia and Washington State[M]. Nanaimo: Phantom Press, 1987: 1-79. doi: 10.1016/S0269-7491(97)00105-X

    [25]

    TANABE S, WATANABE S, KAN H, et al. Capacity and mode of PCB metabolism in small cetaceans[J]. Mar Mammal Sci, 1998, 4(2): 103-124. doi: 10.1111/j.1748-7692.1988.tb00191.x

    [26]

    MUIR D C G, FOED C A, ROSENBERG B, et al. Persistent organchlorine in beluga whales (Delphinapterus leucas) from the St Lawrence river estuary-I. concentrations and patterns of specific PCBs, chlorinated pesticides and polychlorinated dibenzo-p-dioxins and dibenzofurans[J]. Environ Pollut, 1996, 93(2): 219-234. doi: 10.1016/0269-7491(96)00006-1

    [27]

    KAJIWARA N, KAMIKAWA S, AMANO M, et al. Polybrominated diphenyl ethers (PBDEs) and organochlorines in melon-headed whales, Peponocephala electra, mass stranded along the Japanese coasts: Maternal transfer and temporal trend[J/OL]. Environ Pollut, (2008-2-12).10.1016/j.envpol.2007.12.034">http://dx.doi.org/ 10.1016/j.envpol.2007.12.034.

    [28]

    KAJIWARA N, KUNISUE T, KAMIKAWA S, et al. Organohalogen and organotin compounds in killer whales mass-stranded in the Shiretoko Peninsula, Hokkaido, Japan[J]. Mar Pollut Bull, 2006, 52(9): 1 066-1 076. doi: 10.1016/j.marpolbul.2006.01.011

    [29]

    MASSE R, MARTINEAU D, TREMBLAY L, et al. Concentrations and chromatographic profiles of DDT metabolites and polychlorinated biphenyl (PCB) residues in stranded beluga whales (Delphinaterus leucas) from the St Lawrence estuary, Canada[J]. Arch Environ Contam Toxicol, 1986, 15: 137-147. doi: 10.1007/BF01059962

    [30]

    DUINKER J C, HILLEBRAND M T J, ZEINATRA T et al. Individual chlorinated biphenyis and pesticides in tissues of some cetacean species from the North Sea and Atlantic Ocean; tissue distribution and biotransformation[J]. Aquat Mammals, 1989, 15(3): 95-124.

    [31]

    BOON J P, OOSTINGH I, VAN D M, et al. A model for the bioaccumulation of chorobiphenyl congeners in marine mammals[J]. Environ J Pharmacol, 1994, 270(2/3): 237-251. doi: 10.1016/0926-6917(94)90068-X

    [32]

    GAUTHIER J M, PELLETIER E, BROCHU C. Environmental contaminants in tissues of a neonate St Lawrence beluga whale (Delphinapterus leucas)[J]. Mar Pollut Bull, 1998, 36(1): 102-108. doi: 10.1016/S0025-326X(98)90043-1

    [33]

    MARTINEAU D, BELAND P, DESJARDINS C, et al. Levels of organochlorine chemicals in tissues of beluga whales (Delphinapterus leucas) from the St Lawrence estuary[J]. Arch Environ Contam Toxicol, 1987, 16: 137-147. doi: 10.1007/BF01055795

    [34]

    MUIR D C G, FORD C A, STEWART R E A, et al. Organochlorine contaminants in belugas, Delphinapterus leucas, from the Canadian waters[J]. Can Bull Fish Aquat Sci, 1990, 224: 165-190. https://xueshu.baidu.com/usercenter/paper/show?paperid=cee2889d9d439bd738e2e86903674254&site=xueshu_se

    [35]

    TANABE S, TATSUKAWA R, TANAKA H, et al. Distribution and total burdens of chlorinated hydrocarbons in bodies of striped dolphins (Stenella coeruleoalba)[J]. Agric Biol Chem, 1981, 45: 2 569-2 587. doi: 10.1080/00021369.1981.10864933

    [36]

    MCHUGH B, LAW R J, ALLCHIN C R, et al. Bioaccumulation and enantiomeric profiling of organochlorine pesticides and persistent organic pollutants in the killer whale (Orcinus orca) from British and Irish waters[J]. Mar Poll Bull, 2007, 54(11): 1 724-1 731. doi: 10.1016/j.marpolbul.2007.07.004

    [37]

    KARLSON K, ISHAQ R, BECHER G, et al. PCBs, DDT and methyl sulphone metabolites in various tissues of harbour porpoises from Swedish waters[J]. Environ Pollut, 2000, 110(1): 29-46. doi: 10.1016/S0269-7491(99)00283-3

    [38]

    BERGMAN A, OLSSON M. Pathology of Baltic grey seal and ringed seal females with special reference to adrenocortical hyperplasia: is environmental pollution the cause of a widely distributed disease syndrome?[J]. Finn Game Res, 1985, 44: 47-62. https://xueshu.baidu.com/usercenter/paper/show?paperid=524c76129d55995152dbec6bfb87493d&site=xueshu_se

    [39]

    BROUWER A, REIJNDERS P J H, KOEMAN J H. Polychlorinated biphenyl (PCB)-contaminated fish induces vitamin A and thyroid hormone deficiency in the common seal (Phoca vitulina)[J]. Aquat Toxicol, 1989, 15(1): 99-106. doi: 10.1016/0166-445X(89)90008-8

    [40]

    GILMARTIN W G, DELONG R L, SMITH A W, et al. Premature parturition in the California sea lion[J]. J Wildlife Dis, 1976, 12: 104-115. doi: 10.7589/0090-3558-12.1.104

    [41]

    TANABE S, IWATA H, TATSUKAWA R. Global contamination by persistent organochlorines and their ecotoxicological impact on marine mammals[J]. Sci Total Environ, 1994, 154(2/3): 163-177. doi: 10.1016/0048-9697(94)90086-8

    [42]

    MARTINEAU D, GUISE S, FOURNIER M, et al. Pathology and toxicology of beluga whales from the St Lawrence estuary, Quebec, Canada. Past, present and future[J]. Sci Total Environ, 1994, 154(2/3): 201-215. doi: 10.1016/0048-9697(94)90088-4

    [43]

    BERGMAN A, OLSSON M, REILAND S. Skull-bone in the Baltic grey seal (Halichoerus grypus)[J]. Ambio, 1992, 21: 517-519. https://xueshu.baidu.com/usercenter/paper/show?paperid=57e374d5a47dc9d9fe9b64b27c6db8ff&site=xueshu_se

    [44]

    WANNAN R, MUIR D C G. Concentrations of heavy metals and organochlorines in marine mammals of northern waters: overview and evaluation. Canadian Technical Report of Fisheries and Aquatic Sciences[R]. Western Region: Department of Fisheries and Oceans, Canada, 1984: 1-97. https://xueshu.baidu.com/usercenter/paper/show?paperid=fc72a45b5600c56903c8e0effa69c1a9&site=xueshu_se

    [45]

    VAN D B, BRINGAUM M, BOSVELD L, et al. Toxicity equivalency factors (TEF) for PCBs, PCDDs, PCDFs for humans and wildlife[J]. Environ Health Perspectives, 1998, 106(12): 775-792. https://www.researchgate.net/publication/283221993_Toxic_equivalency_factors_TEFs_for_PCBs_PCDDs_PCDFs_for_humans_and_wildlife

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出版历程
  • 收稿日期:  2008-07-16
  • 修回日期:  2008-07-30
  • 刊出日期:  2008-10-04

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