罗非鱼、南美白对虾体内药残状况研究

李来好, 杨贤庆, 郝淑贤, 刁石强, 吴燕燕, 李刘冬, 陈培基, 石红, 周婉君

李来好, 杨贤庆, 郝淑贤, 刁石强, 吴燕燕, 李刘冬, 陈培基, 石红, 周婉君. 罗非鱼、南美白对虾体内药残状况研究[J]. 南方水产科学, 2005, 1(1): 43-48.
引用本文: 李来好, 杨贤庆, 郝淑贤, 刁石强, 吴燕燕, 李刘冬, 陈培基, 石红, 周婉君. 罗非鱼、南美白对虾体内药残状况研究[J]. 南方水产科学, 2005, 1(1): 43-48.
LI Lai-hao, YANG Xian-qing, HAO Shu-xian, DIAO Shi-qiang, WU Yan-yan, LI Liu-dong, CHEN Pei-ji, SHI Hong, ZHOU Wan-jun. Study for residues of fishery chemotherapeutic agents in tilapia and Litopeneaus vannamei[J]. South China Fisheries Science, 2005, 1(1): 43-48.
Citation: LI Lai-hao, YANG Xian-qing, HAO Shu-xian, DIAO Shi-qiang, WU Yan-yan, LI Liu-dong, CHEN Pei-ji, SHI Hong, ZHOU Wan-jun. Study for residues of fishery chemotherapeutic agents in tilapia and Litopeneaus vannamei[J]. South China Fisheries Science, 2005, 1(1): 43-48.

罗非鱼、南美白对虾体内药残状况研究

基金项目: 

国家科技攻关计划 2002BA906A39

农业结构调整重大技术研究专项 2003-08-03A

详细信息
    作者简介:

    李来好(1963-), 男, 研究员, 硕士生导师, 从事水产品加工和质量安全研究。E-mail: laihaoli@163.com

  • 中图分类号: S948

Study for residues of fishery chemotherapeutic agents in tilapia and Litopeneaus vannamei

  • 摘要:

    以广东省养殖罗非鱼及南美白对虾为实验对象, 就其体内土霉素等多种渔药残留及分布状况进行研究, 比较不同规格罗非鱼及南美白对虾体内渔药残留差异, 分析渔药在罗非鱼及南美白对虾不同部位的残留状况。结果表明在罗非鱼体内已烯雌酚、呋喃唑酮、氯霉素3种渔药未见检出, 南美白对虾体内已烯雌酚、呋喃唑酮、氯霉素、喹酸和喹乙醇5种渔药均未见检出, 而土霉素等常规用药在罗非鱼和南美白对虾体内均有不同程度的检出。渔药残留量因其规格大小及部位而异, 趋势为大规格样品渔药残留量相对较高, 在罗非鱼及南美白对虾体内的增长情况与其体重具有负相关性; 罗非鱼内脏渔药残留量明显高于肌肉组织, 虾头为虾渔药残留的主要场所。

    Abstract:

    Cultured tilapia and Litopeneaus vannamei in Guangdong province were selected to study the residues of fishery chemotherapeutic agents, The residues difference between their size were compared and its distribution were analyzed. The result showed that the residues of chloramphenicol, diethylstilbestrol, furazolidone in tilapia were not found. Diethylstilbestrol, furazolidone, chloramphenicol, olaquindox, oxilinic acid were not found in Litopeneaus vannamei, while oxytetracycline, dipterex, sulfamethoxazole, trimethoprim, enrofloxacin all were detected. Quantity of fishery chemotherapeutic agents varied with size and position. Negative correlation exists between body weight and fishery chemotherapeutic agents. Quantity of fishery chemotherapeutic agents in viscera was significant higher than in muscle of tilapia, head was the main position for fishery chemotherapeutic agents residues in Litopeneaus vannamei.

  • 很多鱼类能够忍受较长时间的饥饿,在自然环境中确实也要求它们必须具备这种生理功能。野生鱼类时常经历季节性或生理性的缺食时期,通过减少代谢率甚至消耗自身组织贮存物质,从生理或行为各方面发展了对食物不足的适应能力[1]

    鱼类除了在胚胎期依靠卵黄或母体营养外,必须经常从外界环境中获得食物或能量,以维持生长和繁殖。当鱼类得不到食物或食物不足时,存活、生长、发育和繁殖等都将受到影响,有些甚至是极其严重的[2]。为了评价鱼类营养状况,不同学者从形态学[3]、生态学[4]、组织学[5-7]、生物化学[8-9]和代谢生理[10-11]等不同水平进行了研究。郑宗林等[12]综述了饥饿对仔鱼生长和存活、鱼类形态行为的影响,并指出对鱼类饥饿的研究,在鱼类自然资源的保护、水产养殖、苗种培育以及利用补偿生长现象等方面也具有重要的指导意义。开展饥饿对海水养殖鱼类生理生态学的研究,不仅可以揭示鱼类适应饥饿胁迫的生理学对策[13-14],也可为鱼类养殖中新的高效投喂技术的形成提供理论依据[14]

    脂肪酸是细胞膜结构中的重要组成部分。某一组织中脂肪酸组成的变化可能影响其生化和生理特性。本文研究了石斑鱼饥饿过程体重、肥满度、肝体比和肌肉的营养组成,并重点探讨饥饿对石斑鱼肌肉和肝脏脂肪酸组成的变化。

    实验用斜带石斑鱼(Epinephelus coioides)(62.3±0.6 g)购买于海南省陵水县新村港鱼排,在中国水产科学研究院南海水产研究所热带水产研究开发中心(海南三亚)室外水泥池(4 m×1.5 m×1 m)进行饥饿实验,每池放养35尾,设3个重复,实验时间分别为0、1、2、3和4周。流水养殖,实验用水经沉淀后沙滤,水流速率约2.0 L ·min-1,连续充气,实验过程盐度为30.0~32.0,水温28.0~30.0℃,溶解氧为6.5~7.1 mg · L-1,氨氮为0.3~0.5 mg · L-1,亚硝基氮为0.07~0.08 mg · L-1,硫化氢为0.03~0.04 mg · L-1,pH为7.9 ~8.1。实验开始前,随机选取3尾鱼作为饥饿处理前指标对照。实验期间不投饵,每7 d取样1次,将所有鱼称重,每池随机取鱼3尾进行肥满度、肝体比、肌肉的营养组成以及肌肉和肝脏脂肪酸组成的测定。在化学分析前,肝脏和肌肉存放于-20℃的冰箱。

    肥满度=100×体重(g)/体长(cm)3

    肝体比=100×肝脏重/体重

    粗蛋白采用凯氏定氮法,粗脂肪采用索氏提取法,水分采用105℃常压干燥法。采用氯仿和甲醇按2:1的比例进行脂肪提取,脂肪酸的分析采用浙江大学色谱工作站的岛津GC-9A气相色谱仪。

    数据统计分析采用SPSS 11.0软件(Chicago,IL,USA)处理,对数据作单因素方差分析(ANOVA),并进行Duncan′s多重比较法分析平均数的差异显著性(P<0.05)。

    石斑鱼经4周的饥饿,体重量显著减轻。随着饥饿时间的延长,肥满度和肝体比显著降低(表 1);肌肉水分和灰分显著增加(表 2)。饥饿1周后,蛋白质含量显著下降;脂肪含量在第1周下降,然后基本保持稳定。

    表  1  石斑鱼饥饿4周对生物学指标的变化
    Table  1.  Changes in growth and morphological measurements in starved grouper over a 4-week period means±SD
    饥饿时间/周starved period 体重/gbody weight 肥满度condition factor 肝体比hepatosomatic index
    0 62.3±0.6e 2.98±0.11d 2.84±0.15c
    1 57.9±0.8d 2.84±0.15cd 2.50±0.13b
    2 54.5±0.5c 2.66±0.16bc 2.43±0.15b
    3 50.9±2.0b 2.58±0.15ab 2.16±0.06a
    4 47.9±19a 2.39±0.09a 2.00±0.11a
    注:同列数据上标字母不同者之间表示存在显著差异(P<0.05)
    Note: Means within columns with the different letter are significantly different (P<0.05).
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    表  2  饥饿对石斑鱼肌肉营养成分的影响
    Table  2.  Changes in muscle composition in starved grouper over a 4-week period means±SD
    饥饿时间/周starved period 水分moisture 粗蛋白protein 脂肪lipid 灰分ash
    0 77.54±0.02a 20.16±0.96c 1.48±0.13b 1.37±0.03a
    1 78.93±0.26b 19.56±0.77bc 1.20±0.14a 1.33±0.04a
    2 79.16±0.30b 18.34±0.36b 1.18±0.16a 1.44±0.07ab
    3 79.89±0.48c 16.79±0.81a 1.15±0.08a 1.47±0.05ab
    4 80.08±0.48c 16.55±0.58a 1.20±0.12a 1.58±0.07b
    注:同列数据上标字母不同者之间表示存在显著差异(P<0.05)
    Note: Means within columns with the different letter are significantly different (P<0.05).
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    石斑鱼饥饿后肝脏和肌肉脂肪酸组成的变化分别见表 3表 4。肝脏饱和脂肪酸(SFA)在饥饿前3周基本保持不变,但在第4周显著下降。单不饱和脂肪酸(MUFA)在饥饿第1周保持不变,然后呈下降趋势。多不饱和脂肪酸(PUHA)和高不饱和脂肪酸(HUFA)的总和随着饥饿时间的延长,含量显著增加。饥饿4周后,肝脏中SFA和MUFA显著降低,而PUHA+HUFA显著升高。与肝脏相比,肌肉中脂肪酸变化程度较小。随着饥饿时间的延长,肌肉中14:0减少而20:5增加。饥饿后石斑鱼肌肉DHA/EPA比率有下降趋势,但肝脏DHA/EPA比率显著上升;DHA+EPA的百分比都随饥饿时间的延长而显著上升。

    表  3  饥饿对石斑鱼肝脏脂肪酸组成(%,脂肪酸)的影响
    Table  3.  Individual fatty acids(% of total fatty acids)in the livers for grouper during 4-weeks starvation means±SD
    脂肪酸fatty acids 饥饿时间/周starved period
    0 1 2 3 4
    14:0 2.8±0.3d 3.3±0.2e 2.2±0.2b 1.4±0.5a 2.3±0.2bc
    15:0 1.1±0.2ab 1.9±0.1c 1.3±0.2b 1.6±0.0c 1.0±0.2a
    16:0 36.0±0.1c 28.6±0.2b 33.7±0.2c 29.5±1.0b 23.1±3.0a
    18:0 10.9±1.0a 15.0±0.5b 12.3±2.0a 16.7±1.2b 12.4±0.8a
    SFA 51.1±0.40b 49.0±1.0b 49.7±1.7b 49.7±1.7b 39.2±4.1a
    16:1 6.5±0.5a 7.9±0.6b 6.1±0.6a 5.5±0.4a 6.1±1.2a
    18:1 15.6±0.1b 15.6±0.4b 12.2±0.3a 14.6±1.1b 12.9±0.1a
    20:1 1.4±0.142e 1.2±0.1d 1.0±0.1c 0.8±0.1b 0.7±0.1a
    MUFA 23.4±1.0b 24.7±1.0b 19.2±0.1a 20.9±1.6a 19.6±1.1a
    18:2 2.5±0.4b 2.5±0.1b 1.5±0.4a 2.9±0.4b 4.2±0.7c
    20:3+20:4 3.9±0.4a 4.6±0.2ab 5.2±0.3b 6.3±0.4c 6.5±0.7c
    20:5 2.8±0.4b 1.6±0.1a 2.7±0.2b 1.8±0.0a 3.7±0.4c
    22:3 0.4±0.0a 0.7±0.1b 0.5±0.1a 0.7±0.1b 0.9±0.1c
    22:4 0.6±0.0a 0. 9±0.0b 0.9±0.0b 1.0±0.1b 1.0±0.1b
    22:5 1.6±0.0a 2.0±0.2bc 1.6±0.2a 1.9±0.1b 2.2±0.1c
    22:6 8.4±0.7a 8.8±0.5a 12.5±0.2b 12.4±0.6b 18.2±2.9c
    PUFA+HUFA 20.6±1.3a 21.1±0.1a 25.2±0.5b 27.2±0.2c 37.2±3.6d
    EPA+DHA 11.2±0.5a 10.4±0.4a 15.2±0.0b 14.2±0.6b 21.9±3.3c
    DHA/EPA 3.1±0.5a 5.5±0.7c 4.7±0.4b 6.8±0.4d 4.9±0.2bc
    注:同行数据上标字母不同者之间表示存在显著差异(P<0.05)
    Note: Means within columns with the different letter are significantly different (P<0.05).
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    表  4  饥饿对石斑鱼肌肉脂肪酸组成(%,总脂肪酸)的影响
    Table  4.  Individual fatty acids (% of total fatty acids) in the muscle for grouper during 4-week starvation means±SD
    脂肪酸fatty acids 饥饿时间/周starved period
    0 1 2 3 4
    14:0 2.9±0.3b 2.6±0.2b 2.5±0.3ab 2.0±0.2ab 2.0±0.3a
    15:0 1.3±0.1a 1.7±0.2b 1.3±0.2a 1.1±0.0a 1.3±0.1a
    16:0 23.3±1.2 23.4±1.1 24.8±0.5 24.8±0.5 22.1±1.2
    18:0 7.4±0.4c 4.4±0.3a 6.4±0.6bc 7.3±0.4c 5.3±0.7ab
    SFA 34.9±1.1 32.1±1.5 34.9±0.4 35.2±0.7 30.7±0.7
    16:1 9.8±1.4ab 12.4±0.6b 10.9±1.2ab 7.7±0.2a 9.1±0.9ab
    18:1 24.0±1.2 24.6±0.9 23.8±0.1 23.7±0.2 25.4±1.2
    20:1 1.2±0.1b 1.5±0.2c 1.4±0.1bc 1.0±0.1a 1.2±0.1b
    MUFA 35.1±0.2ab 38.5±1.7b 36.1±1.4ab 32.3±0.1a 35.8±0.9ab
    18:2 5.8±0.5 4.4±0.5 4.9±0.4 4.7±0.0 3.8±0.6
    20:3+20:4 4.5±0.2 4.9±0.7 5.5±0.1 4.6±0.2 4.7±0.6
    20:5 3.0±0.7a 3.4±0.1ab 3.9±0.4ab 3.9±0.4ab 4.8±0.4b
    22:3 1.2±0.1b 1.1±0.3ab 1.0±0.0ab 0.8±0.3a 1.0±0.1ab
    22:4 1.3±0.1b 1.0±0.2a 0.9±0.0a 1.0±0.2a 1.1±0.2a
    22:5 2.3±0.2ab 2.0±0.0a 2.7±0.7b 2.1±0.3ab 2.0±0.2ab
    22:6 9.7±0.5b 8.4±0.7a 7.3±0.0a 11.8±0.1c 10.6±1.1bc
    PUFA+HUFA 27.8±1.2bc 25.3±0.5a 26.0±0.5ab 28.9±1.0c 28.0±0.7c
    EPA+DHA 12.7±1.1a 11.9±0.6ab 11.1±0.3a 15.6±0.3c 15.4±0.9c
    DHA/EPA 3.3±0.6c 2.5±0.2ab 1.9±0.2a 3.1±0.3bc 2.2±0.4a
    注:同行数据上标字母不同者之间表示存在显著差异(P<0.05)
    Note: Means within columns with the different letter are significantly different(P<0.05).
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    为了依据形态学特征更准确地描述和评价鱼类的营养地位,通常采用体重、肥满度和肝体比等指标。一般来说,随着饥饿的进行,体重急剧下降,体长往往无变化,甚至稍有增加,也有可能体长呈负增长,肥满度随饥饿呈下降趋势。肝体比被看作是对长期和短期营养方式很敏感的形态学指标,肝脏在营养不良或饥饿条件下,其重量也有所变化。食物缺乏时,肝脏内的储存物被消耗,肝体比下降[2]

    生物化学是定量分析营养状况的有效方法,能准确反映肌肉和肝脏一些主要生化成分的数量动态。鱼类在饥饿状态下代谢功能会发生变化,并通过动用鱼体自身的贮存物质(糖类、脂肪和蛋白质)提供能量[13]。石斑鱼在饥饿过程中,肌肉水分含量增加,这与美洲鲟(Acipenser transmontanus)[15]、真鲷(Chrysophrys major[16]Pagrosomus major[17])和鲈(Lateolabrax japonicus)[18]的研究结果相似。本研究也发现饥饿过程中肌肉蛋白质含量下降,脂肪含量在第1周下降,随后保持相对稳定。这说明,饥饿过程中肌肉脂肪也是石斑鱼首先快速动用的能源物质,而肌肉蛋白则在整个饥饿过程中被动用,是最主要的供能物质。随着饥饿时间的延长,肌肉蛋白质开始作为鱼类新陈代谢的主要能源,对真鲷[16]的研究也得出了相似的结果。然而,EINEN等[19]报道大西洋鲑(Salmo salar)在饥饿过程中肌肉的蛋白质和脂肪含量保持相当高的稳定性,这2种营养物质由于体重的下降在鱼体中减少,说明蛋白质和脂肪是饥饿中的大西洋鲑代谢的重要能量物质。本实验石斑鱼肌肉中灰分有上升的趋势,这与大西洋鲑[19]相似,肌肉中灰分显著增加是由于肌肉中蛋白质和脂肪含量下降的结果[20]

    饥饿过程中,鱼类对其体内不同种类脂肪酸的利用顺序有一定的规律,即首先利用饱和脂肪酸,然后利用低不饱和脂肪酸,最后才动用高不饱和脂肪酸[13]。饥饿影响鱼体组织特别是肝脏和肌肉的脂肪酸组成和内脏的脂肪积累,并且不同鱼类脂肪酸的动用也存在着差异[21]。经4周的饥饿,石斑鱼肝脏中14:0和16:0以及肌肉中14:0和18:0显著降低。这个结果与鲶鱼(Clarias gariepinus)[20]相似。饥饿也引起石斑鱼肝脏的18:1和20:1。鲤(Cyprinus carpio)[22]Coregonus muksum[23]饥饿引起单不饱和脂肪酸下降而多不饱和脂肪酸上升。

    JEZIERSKA等[24]报道虹鳟(Salmo gairdneri)肝脏中的饱和脂肪酸含量保持相对的稳定,单不饱和脂肪酸下降而多不饱和脂肪酸上升;部分饱和脂肪酸上升是因为有些单不饱和脂肪酸和多不饱和脂肪酸保持稳定的百分含量。斑点叉尾NFDAA (Ictalurus punctani)饥饿28 d与14 d相比,肌肉中的饱和脂肪酸显著降低,肌肉中有些脂肪酸含量的变化相对较小[25]。本研究中肝脏SFA保持相对的稳定,但MUFA下降而PUFA+HUFA上升。

    饥饿导致石斑鱼肝脏中20:5和22:6显著增加。WEBSTER等[26]报道斑点叉尾NFDAA饥饿80 d,肝脏和肌肉能有效地贮存22:6 n-3,而且内脏脂质中的脂肪酸指标变化很小。TIDWELL等[25]发现池塘养殖的鲶鱼,饥饿引起脂肪酸含量的变化很小。饥饿使鲤鱼肌肉中22:6 n-3含量增加[22],虹鳟肝脏的22:6 n-3增加[5]。22:6 n-3未被动用可能是由于它是生物膜结构中的重要组成成分[25]

    本实验中,肌肉的脂肪酸组成与肝脏脂肪酸相比,变化较小。肝脏脂肪酸的显著变化说明了肝脏可能是作为脂肪酸代谢的主要器官的标志,这种现象同样出现于鲶鱼[20]。鱼类能够对饥饿表现出不同的反应,肝脏脂肪作为能量物质被动用而导致其脂肪酸组成的较大变化,这种现象仍在探讨中[21]

    饥饿既影响鱼类肌肉和脂肪酸组成,也影响其DHA/EPA比率,但影响的结果却有所差异。本研究中,饥饿后石斑鱼肌肉DHA/EPA比率有下降趋势,但肝脏DHA/EPA比率却显著上升;DHA+EPA的百分比都随饥饿时间的延长而显著上升。这可能是石斑鱼随饥饿时间的延长,引起DHA和EPA在肌肉和肝脏中储存。真鲷[27]仔鱼随着饥饿时间的延长,DHA/EPA比率升高。斑点叉尾NFDAA肌肉、肝脏和大脑组织的DHA/EPA比率都随着饥饿时间的延长而下降[25],饥饿导致腹腔脂肪和肝脏DHA/EPA比率下降,但与饥饿时间的长短关系不大,同时饥饿使肌肉DHA/EPA比率略为上升[26]。杂交罗非鱼(Oreochromis mossambicus×O.nilotic- us)[21]不管养殖在淡水或海水中,饥饿后肌肉的DHA/EPA比率都下降,在海水养殖中肝脏DHA/EPA比率保持相对稳定而在淡水养殖中有下降趋势。饥饿对大西洋鲑[19]肌肉DHA/EPA比率基本没有影响,但肝脏DHA/EPA比率显著升高。

    在饥饿状态下,石斑鱼营养组成以及肝脏和肌肉某些脂肪酸含量的变化呈波浪式,这说明石斑鱼在饥饿时对体内贮能物质的动用,可能存在周期性的变化。张波等[17]对真鲷幼鱼饥饿的研究也得出同样的趋势。鱼类在长期饥饿状态下对自身贮备能量的利用可能有2方面的适应:(1)降低代谢水平以节约能量消耗;(2)尽可能地保持一定的代谢水平,以保证在重新获得食物时能产生适当的胁迫反应[13]

  • 表  1   罗非鱼的产地和规格

    Table  1   Producing area and size of tilapia

    产地
    producing area
    大规格 large size 小规格 small size
    体长(cm)
    body size
    平均
    average
    体重(g)
    body weight
    平均
    average
    体长(cm)
    body size
    平均
    average
    体重(g)
    body weight
    平均
    average
    湛江 Zhanjiang 301~326 317 506~681 601 213~276 239 202~416 333
    茂名  Maoming 287~311 301 460~610 541 215~284 241 217~403 298
    中山 Zhongshan 296~330 313 490~699 611 205~290 255 200~441 356
    广州 Guangzhou 299~335 320 511~730 632 236~288 263 221~435 347
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    表  2   南美白对虾的产地和规格

    Table  2   Producing area and size of Litopeneaus vannamei

    产地
    producing area
    大规格 large size 小规格 small size
    体长(cm)
    body size
    平均
    average
    体重(g)
    body weight
    平均
    average
    体长(cm)
    body size
    平均
    average
    体重(g)
    body weight
    平均
    average
    湛江Zhanjiang 11.1~13.7 12.2 12.16~23.19 18.21 8.5~10.7 9.2 5.36~11.73 8.98
    茂名Maoming 11.4~13.4 12.0 12.11~21.81 16.32 8.8~10.4 9.8 5.39~11.46 8.47
    汕头Shantou 10.8~14.1 11.9 12.17~24.83 19.04 9.0~10.8 9.3 5.94~12.29 9.21
    珠海Zhuhai 10.9~13.9 12.1 12.14~23.25 18.91 8.9~11.0 10.2 5.96~12.52 8.99
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    表  3   罗非鱼体内渔药残留量测定

    Table  3   Residues of fishery chemotherapeutic agents in tilapia  (μg · kg-1)

    产地
    producing area
    氯霉素
    chloramphenicol
    土霉素
    oxytetracycline
    已烯雌酚
    diethylstilbestro
    呋喃唑酮
    furazolidone
    大规格
    large size
    小规格
    small size
    大规格
    large size
    小规格
    small size
    大规格
    large size
    小规格
    small size
    大规格
    large size
    小规格
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    茂名Maoming 未检出 未检出 68 141 未检出 未检出 未检出 未检出
    湛江Zhanjiang 未检出 未检出 未检出 96 未检出 未检出 未检出 未检出
    中山Zhongshan 未检出 未检出 未检出 84 未检出 未检出 未检出 未检出
    广州Guangzhou 未检出 未检出 未检出 118 未检出 未检出 未检出 未检出
    参考限量[2]
    residues limit
    不得检出 100 不得检出 不得检出
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    表  4   南美白虾体内药残测定

    Table  4   Determination for fishery chemotherapeutic agents residues of Litopeneaus vannamei mussle  (μg · kg-1)

    产地
    producing area
    已烯雌酚
    diethylstilbestrol
    土霉素
    oxytetracycline
    呋喃唑酮
    furazolidone
    氯霉素
    chloramphenicol
    敌百虫
    dipterex
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    茂名 Maoming 未检出 未检出 67 324 未检出 未检出 未检出 未检出 56 105
    湛江Zhanjiang 未检出 未检出 72 144 未检出 未检出 未检出 未检出 77 120
    汕头Shantou 未检出 未检出 未检出 94 未检出 未检出 未检出 未检出 101 151
    珠海Zhuhai 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出 63 114
    限量[2]
    residues limit
    不得检出 100 不得检出 不得检出 -
    产地
    producing area
    磺胺甲
    sulfamethoxazole
    甲氧苄啶
    trimethoprim
    恩诺沙星
    enrofloxacin
    喹乙醇
    olaquindox
    喹酸
    oxilinic acid
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    茂名 Maoming 59 114 未检出 30.2 10.3 39.8 未检出 未检出 未检出 未检出
    湛江 Zhanjiang 82 148 未检出 25.9 21.8 46.6 未检出 未检出 未检出 未检出
    汕头 Shantou 64 125 未检出 未检出 17.5 39.4 未检出 未检出 未检出 未检出
    珠海 Zhuhai 51 92 未检出 21.7 20.2 45.5 未检出 未检出 未检出 未检出
    参考限量[2]
    residues limit
    100(磺胺类) 50 50(日本标准) 不得检出 300
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    表  5   罗非鱼体重与其药残含量相关性比较

    Table  5   Relation analysis between body heavy and fishery chemotherapeutic agents residues of tilapia  (μg · kg-1)

    重量(g) weight 200~350 350~450 450~550 550~650 650~750
    平均值(g) average 325 402 515 606 687
    土霉素 oxytetracycline 121 98.5 92 未检出 未检出
    已烯雌酚 diethylstilbestrol 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出
    氯霉素 chloramphenicol 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出
    呋喃唑酮 furazolidone 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出
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    表  6   南美白对虾体重与其渔药残留含量相关性比较

    Table  6   Relation analysis between body heavy and fishery chemotherapeutic agents residues of Litopeneaus vannamei  (μg · kg-1)

    重量范围(g)weight 4~8 8~12 12~16 16~20 20~24
    平均值(g)average 6.7 10.1 13.8 18.2 21.6
    土霉素  oxytetracycline 140.4 141.3 77.1 61.9 未检出
    敌百虫  dipterex 128.1 116.9 79.3 67.2 62.9
    磺胺甲唑  sulfamethoxazole 113.7 105.9 80.5 68.4 43.2
    甲氧苄啶 trimethoprim 24.0 21.7 未检出 未检出 未检出
    恩诺沙星 enrofloxacin 46.6 38.1 24.8 17.2 10.4
    已烯雌酚  diethylstilbestrol 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出
    呋喃唑酮 furazolidone 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出
    氯霉素 chloramphenicol 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出
    喹乙醇olaquindox 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出
    喹酸  oxilinic acid 未检出 未检出 未检出 未检出 未检出
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    表  7   罗非鱼及南美白对虾不同部位渔药残留富集量

    Table  7   Fishery chemotherapeutic agents residues in different parts of tilapia and Litopeneaus vannamei (μg · kg-1)

    样品部位 sample part 土霉素
    oxytetracycline
    敌百虫
    dipterex
    磺胺甲
    sulfamethoxazole
    甲氧苄啶
    trimethoprim
    恩诺沙星
    enrofloxacin
    鱼背肌 tilapia back mussle 58
    鱼腹肌 tilapia stomach mussle 60
    鱼内脏 tilapia viscera 203
    虾仁 shrimp flesh 未检出 未检出 45 未检出 12.3
    虾头 shrimp head 217 156 172 36.5 52.8
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  • [1] SC/T 3303-1997冻烤鳗[S].
    [2] NY 5029-2001无公害食品猪肉[S]. https://d.wanfangdata.com.cn/conference/ChxDb25mZXJlbmNlTmV3UzIwMjQxMTEzMTU1MjI0Egc1NjE4OTExGghzaHY2Nzg0eA%3D%3D
    [3] NY 5070-2002无公害食品水产品中渔药残留限量[S]. https://d.wanfangdata.com.cn/periodical/Ch9QZXJpb2RpY2FsQ0hJTmV3UzIwMjQxMTA1MTcxMzA0Eg5oeXl5eTIwMDcxMjAxNBoId2wyN2I5bXk%3D
    [4] SN 0530-1996出口肉品中呋喃唑酮残留量的检验方法液相色谱法[S]. https://d.wanfangdata.com.cn/standard/CiJTdGFuZGFyZE5ld1MyMDI0MDMxOTIwMjQxMTI2MTY1ODU0EgxTTiAwNTMwLTE5OTYaCGx0dXNmODIz
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    [6] SN 0197-1993出口肉中 喹乙醇残留量检验[S]. https://d.wanfangdata.com.cn/standard/CiJTdGFuZGFyZE5ld1MyMDI0MDMxOTIwMjQxMTI2MTY1ODU0EgxTTiAwMTk3LTE5OTMaCDZuMnoyOXZ4
    [7] SN 0206-1993出口活鳗鱼中口恶喹酸残留量检验方法[S]. https://d.wanfangdata.com.cn/standard/CiJTdGFuZGFyZE5ld1MyMDI0MDMxOTIwMjQxMTI2MTY1ODU0EgxTTiAwMjA2LTE5OTMaCGZ6YXNvZXhh
    [8] SN 0208-1993出口肉中十种磺胺残留量检验方法[S]. https://d.wanfangdata.com.cn/standard/CiJTdGFuZGFyZE5ld1MyMDI0MDMxOTIwMjQxMTI2MTY1ODU0EgxTTiAwMjA4LTE5OTMaCGxldHVxY2F2
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    [11] 陈毕生, 王江勇, 冯娟, 等. 水产动物常见病害防治与用药用册[M]. 广州: 广东工业出版社, 2003.29-41.
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出版历程
  • 收稿日期:  2005-03-20
  • 刊出日期:  2005-03-19

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