Study on feeding and growth of larval Zhoushan flounder(Paralichthys olivaceus)
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摘要:
试验研究了褐牙鲆Paralichthys olivaceus仔鱼的摄食和生长。结果表明,仔鱼初次开口摄食时间在6日龄(16~18℃),初次摄食率为30%,8日龄饥饿仔鱼最大初次摄食率为65%,孵出后第9天达到不可逆点(PNR),混合营养期为3 d左右。初次摄食强度和初次摄食率开始时较低,在卵黄囊耗尽时达最高,然后下降。随着饥饿时间的延长,仔鱼出现“负增长”,孵化第11天存活率仅为10%,12日龄全部死亡。
Abstract:The experiment was conducted to study feeding and growth of Paralichthys olivaceus larvae.Results showed that larvae began to fed at the age of six days at 16~18℃, and the feeding rate was 30%.The highest feeding rate was 65% at the age of 8 days.P.olivaceus larvae arrived the point-of-no-return (PNR) at the 9th day.The period of mixed nutrition of the larvae was 3 days.The initial feeding intensity and the feeding rate were slowly increased to the peak when the yolk sac almost exhausted and decreased after that.With the starvation prolonged, unfed larvae entered a negative growth.The survival rate was 10% at the 11th day after hatching.
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Keywords:
- flounder /
- Paralichthys olivaceus /
- larvae /
- feeding /
- growth performance
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紫贻贝(Mytilus edulis Linnaeus)别名淡菜、海红,为寒温带种,中国黄渤海盛产,因其繁殖力强、生长快,已被列为主要养殖贝类之一。现今贻贝养殖逐年扩大规模,但由于各种养殖技术的欠缺,导致种质资源和遗传性状的单一化,不利于渔业生产和可持续发展。
目前,对紫贻贝等贻贝科种类的研究主要集中在组织学[1-2]、营养学[3-4]、养殖技术[5]及苗种培育[6-7]等方面,在生化遗传方面的研究较少,因此,此研究用聚丙烯酰胺凝胶电泳法对紫贻贝5种组织中的4种同工酶的表达进行了初步分析,以期为贝类学研究积累资料,同时为进一步研究贻贝的遗传特异性、种质鉴别、生物进化等问题提供一定的理论参考。
1. 材料和方法
1.1 材料
紫贻贝样品于2007年3月取自浙江省舟山市嵊泗县贻贝养殖区,均为成熟个体,活体带回实验室,取贻贝外套膜、闭壳肌、足、鳃、消化腺5种不同组织,-70℃低温保存。
1.2 方法
1.2.1 样品制备
将准确称取的上述5种组织,蒸馏水漂洗后,按1 : 3的比例(体重与体积之比)加入双蒸水,冰浴下匀浆,4℃冷冻离心机中12 000 r · min-1离心30 min,取上清,加入适量溴酚兰后分装,样品放入-70℃低温冰箱保存备用。
1.2.2 电泳
采用不连续垂直聚丙烯酰胺凝胶电泳法。分离胶浓度为8.2%(pH 8.9),浓缩胶浓度3.6%(pH 6.7),电泳在4℃冰箱中进行。恒压200 V,电泳时间为5~6 h,同工酶的显色方法见参考文献[8],此文略作改动。染色完毕后用75%冰醋酸溶液固定,生物电泳图像系统进行摄影记录。电泳酶谱分析见参考文献[9]。
2. 结果
2.1 超氧化物歧化酶(SOD,E.C.1.15.1.1)
表现为4条酶带,但迁移率最大的酶带在足和外套膜中未出现,而在另外3种组织中呈弱表达;其它酶带在闭壳肌中表达相对较强(图 1)。
2.2 三磷酸腺苷酶(ATPase,E.C.3.6.1.8)
紫贻贝5种组织的ATPase酶活性组织特异性不明显,除消化腺外,都表达了2条带a和b,ATPase在5种组织条带表达有差异(图 2)。
2.3 苹果酸脱氢酶(MDH)
紫贻贝5种组织MDH的电泳酶谱差异不是很明显,都只有1条酶带,但每种组织电泳酶带的强度却不同,其中足的酶带强度最高,其次是闭壳肌,消化腺、外套膜和鳃的酶带强度最弱(图 3)。
2.4 苹果酸酶(ME)
ME的电泳酶谱在紫贻贝的5种组织差异较为明显,虽然每种组织的迁移速率基本相同,但是酶带的数量和强度都存在很大差异。外套膜、足和闭壳肌均表现出2条酶带,而消化腺和鳃则都只有1条酶带。从酶带表达强度来看,外套膜的近负极端的酶带表达最强,闭壳肌的2条酶带与足的2条酶带依次较弱,消化腺和鳃的酶带最弱(图 4)。
3. 讨论
同工酶是基因表达的产物,不同的同工酶与基因表达的关系不同。同工酶的组织特异性与组织生理功能相关,同一种酶在同一生物体内的不同组织之间由于生理功能的不同而存在差异,即组织特异性。目前,同工酶电泳技术已广泛应用于海洋贝类的组织表达研究、种质鉴定和种群遗传结构分析等领域。其中,贝类的同工酶组织特异性研究涉及马氏珠母贝(Pinctada martensii)[10]、泥蚶(Tegillarca granosa)[9]、菲律宾蛤仔(Ruditapes philippinarum)[11]、企鹅珍珠贝(Pteria penguin)[12]等,并对编码同工酶基因的座位数、多态性进行了探讨,为贝类学研究提供了大量生化遗传指标,但有关紫贻贝同工酶的研究报道还较少。
通过对紫贻贝的足、外套膜、闭壳肌、鳃和消化腺等组织的SOD、ATPase、MDH、ME进行分析发现,SOD在紫贻贝的5种组织中均有表达,多表现为4条酶带,但迁移率最大的酶带在足和外套膜中未出现,而在另外3种组织中呈弱表达。这样的分布特征与其5种组织的生理功能密切相关,SOD是生物体防御氧化损伤的重要酶类,当生物体受到外界病原体侵染后,体内自由基浓度将升高,而SOD能清除体内过多的自由基以免除其对自身细胞的毒害[13];另外,贻贝依靠闭壳肌实现其贝壳的开闭,是其生命过程中主要的运动器官,因此它的SOD含量较丰富,李广丽等[14]、李太武等[9]有过类似的报道。ATPase存在于生物体内所有的细胞中,在细胞的供能活动如离子平衡中起重要作用,是催化ATP合成的一种酶。在紫贻贝中,ATPase在除消化腺外的组织中都表达了2条带。MDH以NAD+作为电子受体,广义上也包括以NAD+或NADP+作为受体而生成丙酮酸和碳酸的ME。广泛存在于线粒体、细菌细胞膜上,是三羧酸循环中重要的脱氢酶之一,也是三羧酸循环中脱氢氧化的最后一步。MDH在紫贻贝5种组织中都表达出1条酶带,其中足和闭壳肌的MDH染色最深,该结果与李太武等[9]对泥蚶同工酶不同组织的研究、菲律宾蛤仔[12]的MDH同工酶谱等相似,该特征与肌肉收缩所需要的大量能量在柠檬酸循环过程中,把苹果酸转为草酰乙酸,糖原能通过酵解和有氧分解迅速释放大量能量有关。但上述结果与中国栉孔扇贝(Chinese Japanese Chlamys farreri)和日本栉孔扇贝(Japanese Chlamys farreri)不同[15],所以,不同贝类的MDH同工酶的表达差异有待进一步研究。ME是参与能量代谢的重要酶类,可以补充三羧酸循环因其它代谢而消耗的草酰乙酸和苹果酸;同时它催化的反应本身也是糖酵解的辅助途径,因而该酶的含量和活性将影响能量代谢的顺利进行。检测中ME存在1~2条酶带,其中迁移率大的条带在5种组织中都有表达,而迁移率小的条带只存在于外套膜、闭壳肌和足中;在活性上,紫贻贝5种组织的ME也存在较明显的差别,但不管是数量上还是活性上外套膜和闭壳肌中ME的表达都占优势,其次是足组织,该酶分布特征与机体参与能量代谢的生理机能紧密联系。
同工酶一般由多个基因位点控制,表达差异反映了其在不同组织中受不同的遗传基因控制的结果,同时也是在不同组织中各位点以不同的表达方式适应5种组织器官的不同生理生化需要。生活在不同地区的贻贝,为了适应各自的环境条件,必然会产生有不同组织特异性的同工酶系;酶活性强度还可能会因生物体健康状况、生理功能失调而产生一定的变化,因此,也可以通过检测生物体一定组织中同工酶的表达状况的方法来诊断疾病,该方法可以用来监测鱼、虾、贝等养殖过程中的病害发生状况,从而避免水产养殖动物发生大规模的死亡。所以有理由相信,随着同工酶技术的继续发展,该技术一定会成为贝类养殖甚至是整个水产养殖业中不可或缺的专业技术。
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表 1 摄食和饥饿仔鱼在早期发育阶段的日增长
Table 1 Daily growth of P.olivaceus under feeding and starvation at early development
初孵期larval 摄食期feeding period 不可逆期PNR period 摄食组feeding 饥饿组hungry 摄食组feeding 饥饿组hungry 日增长/mm·d-1 daily growth rate 0.206 0.069 -0.0075 0.102 -0.083 日龄/d day age 1~5 6~8 6~8 9~11 9~11 -