The sequence analysis of mitochondrial cytochrome b gene and molecular phylogeny of Parargyrops edita
-
摘要:
利用PCR技术克隆了二长棘犁齿鲷(Parargyrops edita Tanaka)线粒体细胞色素b(Cyt b)基因，该基因的全长为1 140 bp，并将该基因与GenBank中犁齿鲷、金头赤鲷、真赤鲷、四长棘鲷、黄牙鲷、平鲷、黑棘鲷和灰鳍棘鲷的Cyt b序列进行了比较，共检测到407个核苷酸变异位点，占总序列的35.7%。同时结果也显示，二长棘犁齿鲷与犁齿鲷亲缘关系最近，序列差异仅为1.5%，与传统分类一致，它们应同属于犁齿鲷属；与金头赤鲷和真赤鲷的遗传差异分别为8.3%和8.4%，也处于种间的分化水平，且以较高的置信度(100%)在分子系统发育树上聚为一支，是否应该将它们归为一个属还有待于深入研究。
Abstract:The sequence of mitochondrial cytochrome b (Cyt b) gene was amplified from Parargyrops edita using PCR technique and it had a length of 1 140 bp. Then the sequence was aligned with the Cyt b gene sequences of Evynnis japonica, Pagrus auratus, P. major, Argyrops spinifer, Dentex tumifrons, Rhabdosargus thorpei, Acanthopagrus schlegelii and Acanthopagrus berda in GenBank. The results demonstrated that there were 407 nucleotide sites substituted (35.7%).P. edita and E. japonica were the most related among the 9 Sparidae fishes. Their genetic divergence was only 1.5%, so they two might belong to the same genus (Evynnis), which was in consistent with that of the traditional morphological taxon. The genetic divergence of P. edita with P. auratus and P. major were 8.3% and 8.4%, respectively, which showed differentiation at the level between strains. Moreover, they assembled one branch in the molecular phylogeny with the most bootstrap value. Whether the Evynnis genus and Pagrus genus belong to the same genus still needs further study.
-
Keywords:
- Sparidae fishes /
- Parargyrops edita /
- mitochondria /
- cytochrome b /
- molecular phylogeny
-
硫酸盐还原菌(sulfate-reducing bacteria，SRB)在生态系统中是属于土著微生物类群，是兼性厌氧菌，广泛存在于各种环境中，是自然界硫循环中SO42-异化还原的专门承担者，将SO42-还原同时降解有机物获取能量，产物为对周围环境有害的有毒气体H2S。目前，国内外对海洋沉积物中SRB研究多集中在海洋工程、石油勘探、管道铺设等金属防腐方面[1-2]。近年来因病害使国内外海水养殖产量出现大幅度的滑坡，其主要原因是养殖环境恶化，尤其是底质的污染严重，大部分养殖海区投喂天然饵料，饵料系数较高，养殖年限较长，网箱底部堆积大量富含有机物的沉积物，为SRB大量繁殖提供了有利条件，SRB繁殖会产生大量有毒气体H2S，造成水体污染并毒害养殖生物，使养殖水体环境状况进入恶性循环状态。目前，国内外对网箱养殖环境中SRB的相关研究报道不多[3]，因此，开展网箱养殖海区沉积物中SRB生态特性和相关防治是很有必要的。本文通过研究大鹏澳网箱养殖海域的SRB，了解此环境中SRB的生态特性、SRB数量变化，以及SRB与其他环境因子之间的关系，为以后修复养殖水体环境，提高养殖生物产量，实现海水网箱养殖业的可持续发展提供理论依据。
大鹏澳是大亚湾西南部的一个小内湾，水面面积约1 400 km2。20世纪90年代以来，海水网箱养殖得到了迅速发展。目前，网箱养殖区水面面积约有20 km2，养殖网箱约4 200箱，养殖区平均水深4.5 m，污染相对比较严重[4-5]。
1. 材料与方法
1.1 样品采集
2006年11月，在大亚湾大鹏澳网箱养殖海域利用GPS定位5个站点，其中1、2、3号站位于鱼类网箱养殖区，4号站位于浮筏贝类养殖区，5号站作为对照站，采样站点如图 1所示。在每个站用柱状采泥器采集柱状沉积物样品2管，将沉积物置于内径为5 cm的PVC管内并用橡胶塞密封好，其中1管用于测定硫化物、氧化还原电位(oxidation-reduction potential，ORP)和pH，另1管用于测定SRB含量，并清晰标记样品垂直方向，其中柱状沉积物SRB计数按照1 cm层、5 cm层、10 cm层深度进行取样。
![]()
图 1 大鹏澳网箱养殖海域采样站位Figure 1. Sampling stations of fish cage aquaculture area in Dapeng′ao Cove1.2 SRB培养基配方和计数方法
培养基配方为K2HPO4 0.5 g · L-1，NH4Cl 1.0 g · L-1，MgSO4 2.0 g · L-1，Na2SO4 0.5 g · L-1，CaCI2 0.1 g · L-1，酵母膏1.0 g · L-1，乳酸钠4 mL ·L-1依次加入净化陈海水中溶解。调节pH值约为7.0~7.5[6]。密封后用蒸气压力灭菌器121~125℃灭菌15~20 min后冷却至室温。称取硫酸亚铁铵1.2 g，抗坏血酸0.4 g，在无菌箱(室)内均匀地摊在离紫外线灯30 cm处灭菌30 min。在无菌操作下，把硫酸亚铁铵和维生素C溶解于事先准备好的40 mL无菌水中。按每100 mL培养基各加入1.0 mL硫酸亚铁铵溶液和1.0 mL维生素C溶液。
硫酸盐还原菌的计数(本标准适用于工业循环冷却水中硫酸盐还原菌的测定，也适用于原水、生活用水及粘泥中硫酸盐还原菌的测定)采用我国国家标准《工业循环冷却水中硫酸盐还原菌的测定》(GB/T14643.5-1993)规定的MPN法[7]。
1.3 沉积物硫化物、ORP、pH的测定
1.3.1 硫化物的测定
沉积物中硫化物的测定采用《海洋监测规范》[8]中的硫离子选择电极法。取5.00 g混匀的湿样置于50 mL烧杯中，加入20 mL抗氧化络合剂使用液，充分搅拌5 min，静置，待沉积物完全沉淀后，用倾斜法将上清液倒入50 mL量瓶中；再重复2次用15 mL抗氧化络合剂使用液按上述步骤浸取残留的沉积物，合并3次上清液，再用抗氧化络合剂使用液定容至刻度。测定时将上清液移入50 mL烧杯中，插入参比电极和活化后的硫离子选择电极，一边搅拌至读数稳定后记录结果。每次测定后均需用蒸馏水洗涤电极并用滤纸吸干，以备下一样品测定。
1.3.2 ORP的测定
沉积物ORP的测定参照《海洋监测规范》[8]中的电位计法。
1.3.3 pH的测定
沉积物pH的测定按照《海洋监测规范》[8]规定采用复合电极方法。
上述分析仪器为上海雷磁PHSJ-4A实验室pH/ORP测定仪，配有硫离子选择电极、参比电极、氧化还原电极、感温电极和pH复合电极。
2. 数据处理
利用Microsoft Excel对SRB的检出率、含量、变化幅度等按照不同站位、不同层次进行分析，利用数理统计软件SPSS对SRB与硫化物、ORP、pH做相关分析。
3. 结果与讨论
3.1 沉积物中的SRB的数量
2006年11月大亚湾大鹏澳网箱养殖海域沉积物中SRB的数量如表 1所示，沉积物中SRB数量波动范围在900~110 000 ind · g-1之间。
表 1 大鹏澳网箱养殖海域沉积物中SRB的数量Table 1. Content of SRB in cage culture area sediment in Dapeng′ao Coveind · g-1 垂直深度/cm
vertical depth1号站
station 12号站
station 23号站
station 34号站
station 4对照站
control station1 45 000 45 000 110 000 25 000 30 000 5 30 000 4 500 45 000 15 000 15 000 10 11 500 2 500 4 500 900 4 500 图 2显示了各个站位表层沉积物SRB的分布情况，SRB平面分布特征是鱼类网箱区＞对照区＞浮筏贝类区，网箱区的数量明显高于对照区和浮筏贝类区，这可能是由于网箱区内的网箱设置比较密集，饵料主要是冰鲜小杂鱼，残饵和粪便形成的生物沉积，为SRB的生长提供了有利的环境；浮筏贝类区SRB数量最少，可能是由于此区域的养殖生物为太平洋牡蛎，无需投饵，故底部富含有机质的沉积物较少，SRB含量也较少。
![]()
图 2 采样站点表层沉积物SRB的平面分布Figure 2. Plane distribution of SRB in surface layer of sediment各个站位沉积物中SRB的垂直分布如图 3所示，可以明显看出SRB数量的分布特征为1 cm层＞5 cm层＞10 cm层，呈现由上到下逐渐减少的趋势。验证了海洋沉积物中硫酸盐还原菌数量是由上向下逐渐降低的结论[9]，这也与高爱国等[10]在北极楚科奇海调查得到的SRB分布规律相似。
![]()
图 3 沉积物中的SRB的垂直分布Figure 3. Vertical distribution of sediment SRB in the five sampling stations3.2 沉积物中的硫化物
2006年11月大亚湾大鹏澳网箱养殖海域5个站位沉积物中硫化物的含量如表 2所示，其硫化物含量波动范围为372.48~703.98 μg · g-1。
表 2 表层沉积物中SRB与其他环境因子Table 2. The amount of SRB and other factors of surface sediment站位
stationSRB数量
content of SRB硫化物含量/μg·g-1
sulfide content氧化还原电位
ORPpH 1号站 station 1 45 000 529.44 -226.5 8.12 2号站 station 2 45 000 527.76 -270.3 8.18 3号站 station 3 110 000 703.98 -384.5 8.16 4号站 station 4 25 000 372.48 -171.5 8.21 对照站 control station 30 000 445.18 -199.5 8.17 由图 4可以明显看出，鱼类网箱养殖区(1、2、3号站)沉积物中硫化物含量要高于贝类区和对照区，其主要原因是鱼类网箱区需要大量投饵，底部富含有机质，这一环境利于SRB大量繁殖，异化还原硫酸盐形成硫化物；浮筏贝类养殖区的硫化物含量最低，这是因为贝类养殖过程中不需投饵，底部沉积物有机质含量较少；另外，该海域贝类区养殖年限较短，水体底部的溶解氧和pH值均较高，不利于SRB的生长，因此，硫化物含量较低。而对照区的5号站，其硫化物含量相对较高于贝类养殖区，这可能是因为5号站位于大鹏澳湾口，在海流作用下，受网箱区沉积物往湾口外迁移的影响要大于贝类区有关。
![]()
图 4 各采样站点沉积物中硫化物的含量Figure 4. Content of sediment sulfide in the five sampling stations3.3 沉积物中的ORP
各采样站位沉积物的氧化还原电位如表 2所示，其波动范围在-171.5~-384.5 mV之间。图 5显示了2006年11月大亚湾大鹏澳网箱养殖海域5个站位沉积物的ORP平面分布特征。可以看出，鱼类网箱区的ORP要低于贝类区和对照区，其主要原因是由于网箱区残饵和排泄粪便长期积累，网箱区底部富含有机质，微生物分解大量有机质，产生还原性的物质(如：S2-、NH4+、Fe2+等)，从而导致氧化还原电位较低。
3.4 沉积物中的pH
图 6显示了2006年11月大亚湾大鹏澳网箱养殖海域各个站位沉积物的pH值，其特征为网箱区低于对照区和贝类区，影响沉积物pH变化的主要因素是呼吸作用[11]，因为网箱区沉积物的有机质含量高于对照区和贝类区，所以网箱区沉积物中的细菌呼吸作用和有机质在细菌参与下的分解作用相对活跃，导致pH下降。
3.5 SRB与其他因子的相关关系
2006年11月大亚湾大鹏澳网箱养殖海域表层沉积物中SRB含量、硫化物含量、ORP、pH值如表 2所示。利用SPSS对SRB与其他环境因子所做的相关分析结果显示，SRB与硫化物的含量为显著性正相关(R=0.96, P < 0.05，表 3)，这与李培英等[12]研究的浙江至闽北陆架积物硫酸盐还原菌与硫化物的相关关系的结果相一致。由于SRB在沉积物环境中主要电子受体是硫酸盐，当SRB大量存在时就会有更多的还原态的硫化物生成。SRB含量与Eh的关系显示极显著性负相关关系(R=-0.97，P < 0.01，表 3)，这与陈皓文等[13]对北部湾东侧沉积物SRB研究结果相一致。ORP的高低主要取决于沉积物中的DO含量，当沉积物处于严重缺氧时，有机物最终分解为还原态物质，Eh为负值，而厌氧的低氧化还原状态环境适合SRB的大量繁殖，所以这一分析结果与理论相一致。而SRB与pH的关系系数为R=-2.71(P>0.05，表 3)，两者不具有显著性相关关系，由此可以看出，硫化物含量和ORP是反映SRB数量的2个非常重要的指标。
表 3 SRB与其他因子的相关系数Table 3. Correlation between SRB and other chemical factors对子 parallelism 相关系数R correlation coefficient n number of sample P significance factor SRB-硫化物 SRB-sulfide 0.96 5 0.011 SRB-氧化还原电位 SRB-ORP -0.97 5 0.006 SRB-pH -2.71 5 0.611 -
![]()
图 1 鲷科鱼类和花鲈及石斑鱼线粒体细胞色素b DNA序列比对分析
PE. 二长棘犁齿鲷；EJ. 犁齿鲷；PA. 金头赤鲷；PM. 真赤鲷；ASP. 四长棘鲷；DT. 黄牙鲷；RT. 平鲷；AS. 黑棘鲷；AB. 灰鳍棘鲷；EF. 石斑鱼；LJ. 花鲈；“.”表示此位点与最上排核苷酸相同
Figure 1. Alignment of mitochondrial cytochrome b DNA sequences of Sparidae and Sinipercidae fishes
PE. Parargyrops edita; EJ. Evynnis japonica; PA. Pagrus auratus; PM. P. major; ASP. Argyrops spinifer; DT. Dentex tumifrons; RT. Rhabdosargus thorpei; AS. Acanthopagrus schlegelii; AB. A. berda; EF. Epinephelus fario; LJ. Latolabrax japonicus; Dot indicates nucleotides identity to top row.
![]()
图 2 NJ法构建鲷科鱼类的分子系统树，数字表示Boot strap 1 000个循环的置信度
Figure 2. Molecular phylogenetid tree of Sparidae fishes constructed by NJ method, the numbers show the confident values of Bootstrap 1 000
表 1 鲷科鱼类的DNA数据来源
Table 1 The origins of DNA data of Sparidae fishes
名称
name形态分类
morphological taxonomy来源
origin二长棘犁齿鲷Parargyrop edita 鲷科，犁齿鲷属，Sparidae，Evynnis 北部湾野生品种 犁齿鲷Evynnis japonica 鲷科，犁齿鲷属，Sparidae，Evynnis AF240725 金头赤鲷Pagrus auratus 鲷科，赤鲷属，Sparidae，Pagrus AF240727 真赤鲷P. major 鲷科，赤鲷属，Sparidae，Pagrus AP002949 四长棘鲷Argyrops spinifer 鲷科，四长棘鲷属，Sparidae，Argyrops AF240717 黄牙鲷Dentex tumifrons 鲷科，牙鲷属，Sparidae，Dentex AF240708 平鲷Rhabdosargur thorpei 鲷科，平鲷属，Sparidae，Rhabdosargur AF240732 黑棘鲷Acanthopagrus schlegelii 鲷科，棘鲷属，Sparidae，Acanthopagrus DQ069319 灰鳍棘鲷A. berda 鲷科，棘鲷属，Sparidae，Acanthopagrus AF240715 花鲈Lateolabrax japonicus 脂科，花鲈属，Sinipercidae，Lateolabrax AB117105 鲑点石斑鱼Epinephelus fario 脂科，石斑鱼属，Sinipercidae，Epinephelus DQ486931 
下载: 导出CSV
表 2 鲷科鱼类细胞色素b DNA序列差异百分比
Table 2 Percentage divergenece for cytochrome b sequeneces of Sparidae fishes
种类 二长棘犁齿鲷 犁齿鲷 金头赤鲷 真赤鲷 四长棘鲷 黄牙鲷 黑棘鲷 灰鳍棘鲷 平鲷 花鲈 石斑鱼 二长棘犁齿鲷Parargyrop edita 犁齿鲷Evynnis japonica 0.015 金头赤鲷Pagrus auratus 0.083 0.094 真赤鲷P. major 0.084 0.095 0.014 四长棘鲷Argyrops spinifer 0.129 0.135 0.137 0.135 黄牙鲷Dentex tumifrons 0.155 0.159 0.162 0.162 0.162 黑棘鲷Acanthopagrus schlegelii 0.179 0.181 0.177 0.176 0.176 0.180 灰鳍棘鲷A. berda 0.183 0.186 0.179 0.181 0.171 0.183 0.114 平鲷Rhabdosargur thorpei 0.182 0.188 0.199 0.197 0.183 0.190 0.178 0.184 花鲈Lateolabrax japonicus 0.238 0.238 0.235 0.235 0.232 0.242 0.245 0.239 0.257 石斑鱼Epinephelus fario 0.232 0.234 0.230 0.229 0.229 0.229 0.234 0.218 0.232 0.222
下载: 导出CSV
-
[1] 广东省水产厅实验所. 北部湾红鱼、二长棘鲷及赤鱼调查报告[R]. 广东水产调查研究, 1957: 1-5. [2] 陈作志, 邱永松. 北部湾二长棘鲷的生态分布[J]. 海洋水产研究, 2005, 26(3): 16-21. https://lib.cqvip.com/Qikan/Article/Detail?id=15851787&from=Qikan_Search_Index [3] 成泰庆, 郑葆珊. 中国鱼类系统检索[M]. 北京: 科学出版社, 1987. [4] 伍汉霖, 邵广昭, 赖春福. 拉汉世界鱼类名典[M]. 台北: 水产出版社, 1999. [5] 杨慧荣, 江世贵. 用RAPD技术探讨5种鲷科鱼类的亲缘关系[J]. 水产学报, 2006, 30(4): 469-474. https://lib.cqvip.com/Qikan/Article/Detail?id=22690074&from=Qikan_Search_Index [6] 江世贵, 刘红艳, 苏天凤, 等. 4种鲷科鱼类的线粒体细胞色素b基因序列及分子系统学分析[J]. 中国水产科学, 2003, 10(4): 184-189. https://lib.cqvip.com/Qikan/Article/Detail?id=7962937&from=Qikan_Search_Index [7] SAMBROOK J, FRITSCH E F, MANIATIS T. Molecular cloning: A laboratory manual[M]. 2nd ed. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989.
[8] CHANG Y C, HUANG F L, LO T B. The complete nucleotide sequence and gene organization of carp (Cyprinus carpio) mitochondrial genome[J]. J Mol Evol, 1994, 38(2): 138-155. doi: 10.1007/BF00166161
[9] CHRISTIANE D, NATHALIE S, CATELINE D, et al. The complete nucleotide sequence of the mitochondrial DNA of the dogfish Scyliorhinus canicula[J]. Genetics, 1998, 150(1): 331-334. doi: 10.1093/genetics/150.1.331
[10] KUZNETSOVA M V, KHOLODOVA M V, DANILKIN A A. Molecular phylogeny of deer (Cervidae: Artiodactyla)[J]. Genetika, 2005, 41(7): 910-918. https://www.researchgate.net/publication/7609490_Molecular_Phylogeny_of_Deer_Cervidae_Artiodactyla
[11] 孟庆闻, 苏锦祥, 译. 世界的鱼类[M]. 北京: 农业出版社, 1982. [12] 黄宗国. 中国海洋生物种类与分布[M]. 北京: 海洋出版社, 1994.
计量
- 文章访问数: 5240
- HTML全文浏览量: 219
- PDF下载量: 3191
粤公网安备 44010502001741号
