Polymorphism study of the mitochondrial DNA D-loop control region sequences from black porgy Acanthopagrus schlegeli, in the costal waters of China
-
摘要:
采用聚合酶链式反应(PCR)和直接测序的方法，测定了广西北海、广东深圳和山东青岛3个地理群体共72尾黑鲷(Acanthopagrus schlegeli)线粒体D-loop第一高变区5′端547~549 bp序列，以探讨黑鲷种群的遗传变异。分析结果表明：72条序列T、C、A、G 4种核苷酸的平均含量分别为30.8%、21.8%、36.3%、11.0%。共检测到55个变异位点，其中转换位点32个，颠换位点19个，缺失/颠换位点1个，插入/颠换位点3个。72个个体具有51种单倍型(haplotype)，单倍型比率为70.8%，黑鲷线粒体D-loop控制区表现出较为丰富的核苷酸多态性。对其所有单倍型依据序列距离使用NJ法构建的亲缘关系树并无明显的系谱分支，没有显示出明显的地理分布族群，说明黑鲷线粒体DNA控制区第一高变区序列无法用于黑鲷种群的鉴别。
Abstract:For inquiring into the genteic diversity and genetic structure of black porgy Acanthopagrus schlegeli, We used polymerase chain reaction (PCR) and direct nucleotide sequencing to analyze the 547~549 bp 5′end of the D-loop region from 72 A.schlegeli samples, which captured from Beihai(Guangxi province), Shenzhen(Guangdong province) and Qingdao(Shandong province). The results show that the A, T, G and C mean contents in those fragments were 30.8%, 21.8%, 36.3%, 11.0%, respectively. There were 55 variable nucleotide positions in those gene fragments, which included 38 transition sites and 13 transvertion sites, 1 insert/ transvertion site and 3 deletion/trasvertion. Comparisons of these 72 partial D-loop sequences revealed 51 mitochondrial haplotypes in A.schlegeli, the haplotype rate was 70.8%. Those indicated that there were rich nucleotide variational polymorphism exited in A.schlegeli. Phylogenetic trees of haplotypes were constructed by NJ method. Neither significant genealogical branches nor geographic cluster were found. It showed that mitochondrial DNA highly variable region sequence is unsuitable to be used as a genetic marker for population identification.
-
Keywords:
- Acanthopagrus schlegeli /
- black porgy /
- mitochondrial DNA /
- D-loop /
- genetic polymorphism
-
很多鱼类能够忍受较长时间的饥饿，在自然环境中确实也要求它们必须具备这种生理功能。野生鱼类时常经历季节性或生理性的缺食时期，通过减少代谢率甚至消耗自身组织贮存物质，从生理或行为各方面发展了对食物不足的适应能力[1]。
鱼类除了在胚胎期依靠卵黄或母体营养外，必须经常从外界环境中获得食物或能量，以维持生长和繁殖。当鱼类得不到食物或食物不足时，存活、生长、发育和繁殖等都将受到影响，有些甚至是极其严重的[2]。为了评价鱼类营养状况，不同学者从形态学[3]、生态学[4]、组织学[5-7]、生物化学[8-9]和代谢生理[10-11]等不同水平进行了研究。郑宗林等[12]综述了饥饿对仔鱼生长和存活、鱼类形态行为的影响，并指出对鱼类饥饿的研究，在鱼类自然资源的保护、水产养殖、苗种培育以及利用补偿生长现象等方面也具有重要的指导意义。开展饥饿对海水养殖鱼类生理生态学的研究，不仅可以揭示鱼类适应饥饿胁迫的生理学对策[13-14]，也可为鱼类养殖中新的高效投喂技术的形成提供理论依据[14]。
脂肪酸是细胞膜结构中的重要组成部分。某一组织中脂肪酸组成的变化可能影响其生化和生理特性。本文研究了石斑鱼饥饿过程体重、肥满度、肝体比和肌肉的营养组成，并重点探讨饥饿对石斑鱼肌肉和肝脏脂肪酸组成的变化。
1. 材料与方法
1.1 实验鱼与养殖条件
实验用斜带石斑鱼(Epinephelus coioides)(62.3±0.6 g)购买于海南省陵水县新村港鱼排，在中国水产科学研究院南海水产研究所热带水产研究开发中心(海南三亚)室外水泥池(4 m×1.5 m×1 m)进行饥饿实验，每池放养35尾，设3个重复，实验时间分别为0、1、2、3和4周。流水养殖，实验用水经沉淀后沙滤，水流速率约2.0 L ·min-1，连续充气，实验过程盐度为30.0~32.0，水温28.0~30.0℃，溶解氧为6.5~7.1 mg · L-1，氨氮为0.3~0.5 mg · L-1，亚硝基氮为0.07~0.08 mg · L-1，硫化氢为0.03~0.04 mg · L-1，pH为7.9 ~8.1。实验开始前，随机选取3尾鱼作为饥饿处理前指标对照。实验期间不投饵，每7 d取样1次，将所有鱼称重，每池随机取鱼3尾进行肥满度、肝体比、肌肉的营养组成以及肌肉和肝脏脂肪酸组成的测定。在化学分析前，肝脏和肌肉存放于-20℃的冰箱。
1.2 计算公式
肥满度=100×体重(g)/体长(cm)3
肝体比=100×肝脏重/体重
1.3 样品分析方法
粗蛋白采用凯氏定氮法，粗脂肪采用索氏提取法，水分采用105℃常压干燥法。采用氯仿和甲醇按2：1的比例进行脂肪提取，脂肪酸的分析采用浙江大学色谱工作站的岛津GC-9A气相色谱仪。
1.4 统计分析
数据统计分析采用SPSS 11.0软件(Chicago，IL，USA)处理，对数据作单因素方差分析(ANOVA)，并进行Duncan′s多重比较法分析平均数的差异显著性(P＜0.05)。
2. 结果
石斑鱼经4周的饥饿，体重量显著减轻。随着饥饿时间的延长，肥满度和肝体比显著降低(表 1)；肌肉水分和灰分显著增加(表 2)。饥饿1周后，蛋白质含量显著下降；脂肪含量在第1周下降，然后基本保持稳定。
表 1 石斑鱼饥饿4周对生物学指标的变化Table 1. Changes in growth and morphological measurements in starved grouper over a 4-week periodmeans±SD 饥饿时间/周starved period 体重/gbody weight 肥满度condition factor 肝体比hepatosomatic index 0 62.3±0.6e 2.98±0.11d 2.84±0.15c 1 57.9±0.8d 2.84±0.15cd 2.50±0.13b 2 54.5±0.5c 2.66±0.16bc 2.43±0.15b 3 50.9±2.0b 2.58±0.15ab 2.16±0.06a 4 47.9±19a 2.39±0.09a 2.00±0.11a 注：同列数据上标字母不同者之间表示存在显著差异(P＜0.05)
Note: Means within columns with the different letter are significantly different (P＜0.05).表 2 饥饿对石斑鱼肌肉营养成分的影响Table 2. Changes in muscle composition in starved grouper over a 4-week periodmeans±SD 饥饿时间/周starved period 水分moisture 粗蛋白protein 脂肪lipid 灰分ash 0 77.54±0.02a 20.16±0.96c 1.48±0.13b 1.37±0.03a 1 78.93±0.26b 19.56±0.77bc 1.20±0.14a 1.33±0.04a 2 79.16±0.30b 18.34±0.36b 1.18±0.16a 1.44±0.07ab 3 79.89±0.48c 16.79±0.81a 1.15±0.08a 1.47±0.05ab 4 80.08±0.48c 16.55±0.58a 1.20±0.12a 1.58±0.07b 注：同列数据上标字母不同者之间表示存在显著差异(P＜0.05)
Note: Means within columns with the different letter are significantly different (P＜0.05).石斑鱼饥饿后肝脏和肌肉脂肪酸组成的变化分别见表 3和表 4。肝脏饱和脂肪酸(SFA)在饥饿前3周基本保持不变，但在第4周显著下降。单不饱和脂肪酸(MUFA)在饥饿第1周保持不变，然后呈下降趋势。多不饱和脂肪酸(PUHA)和高不饱和脂肪酸(HUFA)的总和随着饥饿时间的延长，含量显著增加。饥饿4周后，肝脏中SFA和MUFA显著降低，而PUHA+HUFA显著升高。与肝脏相比，肌肉中脂肪酸变化程度较小。随着饥饿时间的延长，肌肉中14：0减少而20：5增加。饥饿后石斑鱼肌肉DHA/EPA比率有下降趋势，但肝脏DHA/EPA比率显著上升；DHA+EPA的百分比都随饥饿时间的延长而显著上升。
表 3 饥饿对石斑鱼肝脏脂肪酸组成(%，脂肪酸)的影响Table 3. Individual fatty acids(% of total fatty acids)in the livers for grouper during 4-weeks starvationmeans±SD 脂肪酸fatty acids 饥饿时间/周starved period 0 1 2 3 4 14：0 2.8±0.3d 3.3±0.2e 2.2±0.2b 1.4±0.5a 2.3±0.2bc 15：0 1.1±0.2ab 1.9±0.1c 1.3±0.2b 1.6±0.0c 1.0±0.2a 16：0 36.0±0.1c 28.6±0.2b 33.7±0.2c 29.5±1.0b 23.1±3.0a 18：0 10.9±1.0a 15.0±0.5b 12.3±2.0a 16.7±1.2b 12.4±0.8a SFA 51.1±0.40b 49.0±1.0b 49.7±1.7b 49.7±1.7b 39.2±4.1a 16：1 6.5±0.5a 7.9±0.6b 6.1±0.6a 5.5±0.4a 6.1±1.2a 18：1 15.6±0.1b 15.6±0.4b 12.2±0.3a 14.6±1.1b 12.9±0.1a 20：1 1.4±0.142e 1.2±0.1d 1.0±0.1c 0.8±0.1b 0.7±0.1a MUFA 23.4±1.0b 24.7±1.0b 19.2±0.1a 20.9±1.6a 19.6±1.1a 18：2 2.5±0.4b 2.5±0.1b 1.5±0.4a 2.9±0.4b 4.2±0.7c 20：3+20：4 3.9±0.4a 4.6±0.2ab 5.2±0.3b 6.3±0.4c 6.5±0.7c 20：5 2.8±0.4b 1.6±0.1a 2.7±0.2b 1.8±0.0a 3.7±0.4c 22：3 0.4±0.0a 0.7±0.1b 0.5±0.1a 0.7±0.1b 0.9±0.1c 22：4 0.6±0.0a 0. 9±0.0b 0.9±0.0b 1.0±0.1b 1.0±0.1b 22：5 1.6±0.0a 2.0±0.2bc 1.6±0.2a 1.9±0.1b 2.2±0.1c 22：6 8.4±0.7a 8.8±0.5a 12.5±0.2b 12.4±0.6b 18.2±2.9c PUFA+HUFA 20.6±1.3a 21.1±0.1a 25.2±0.5b 27.2±0.2c 37.2±3.6d EPA+DHA 11.2±0.5a 10.4±0.4a 15.2±0.0b 14.2±0.6b 21.9±3.3c DHA/EPA 3.1±0.5a 5.5±0.7c 4.7±0.4b 6.8±0.4d 4.9±0.2bc 注：同行数据上标字母不同者之间表示存在显著差异(P＜0.05)
Note: Means within columns with the different letter are significantly different (P＜0.05).表 4 饥饿对石斑鱼肌肉脂肪酸组成(%，总脂肪酸)的影响Table 4. Individual fatty acids (% of total fatty acids) in the muscle for grouper during 4-week starvationmeans±SD 脂肪酸fatty acids 饥饿时间/周starved period 0 1 2 3 4 14：0 2.9±0.3b 2.6±0.2b 2.5±0.3ab 2.0±0.2ab 2.0±0.3a 15：0 1.3±0.1a 1.7±0.2b 1.3±0.2a 1.1±0.0a 1.3±0.1a 16：0 23.3±1.2 23.4±1.1 24.8±0.5 24.8±0.5 22.1±1.2 18：0 7.4±0.4c 4.4±0.3a 6.4±0.6bc 7.3±0.4c 5.3±0.7ab SFA 34.9±1.1 32.1±1.5 34.9±0.4 35.2±0.7 30.7±0.7 16：1 9.8±1.4ab 12.4±0.6b 10.9±1.2ab 7.7±0.2a 9.1±0.9ab 18：1 24.0±1.2 24.6±0.9 23.8±0.1 23.7±0.2 25.4±1.2 20：1 1.2±0.1b 1.5±0.2c 1.4±0.1bc 1.0±0.1a 1.2±0.1b MUFA 35.1±0.2ab 38.5±1.7b 36.1±1.4ab 32.3±0.1a 35.8±0.9ab 18：2 5.8±0.5 4.4±0.5 4.9±0.4 4.7±0.0 3.8±0.6 20：3+20：4 4.5±0.2 4.9±0.7 5.5±0.1 4.6±0.2 4.7±0.6 20：5 3.0±0.7a 3.4±0.1ab 3.9±0.4ab 3.9±0.4ab 4.8±0.4b 22：3 1.2±0.1b 1.1±0.3ab 1.0±0.0ab 0.8±0.3a 1.0±0.1ab 22：4 1.3±0.1b 1.0±0.2a 0.9±0.0a 1.0±0.2a 1.1±0.2a 22：5 2.3±0.2ab 2.0±0.0a 2.7±0.7b 2.1±0.3ab 2.0±0.2ab 22：6 9.7±0.5b 8.4±0.7a 7.3±0.0a 11.8±0.1c 10.6±1.1bc PUFA+HUFA 27.8±1.2bc 25.3±0.5a 26.0±0.5ab 28.9±1.0c 28.0±0.7c EPA+DHA 12.7±1.1a 11.9±0.6ab 11.1±0.3a 15.6±0.3c 15.4±0.9c DHA/EPA 3.3±0.6c 2.5±0.2ab 1.9±0.2a 3.1±0.3bc 2.2±0.4a 注：同行数据上标字母不同者之间表示存在显著差异(P＜0.05)
Note: Means within columns with the different letter are significantly different(P＜0.05).3. 讨论
为了依据形态学特征更准确地描述和评价鱼类的营养地位，通常采用体重、肥满度和肝体比等指标。一般来说，随着饥饿的进行，体重急剧下降，体长往往无变化，甚至稍有增加，也有可能体长呈负增长，肥满度随饥饿呈下降趋势。肝体比被看作是对长期和短期营养方式很敏感的形态学指标，肝脏在营养不良或饥饿条件下，其重量也有所变化。食物缺乏时，肝脏内的储存物被消耗，肝体比下降[2]。
生物化学是定量分析营养状况的有效方法，能准确反映肌肉和肝脏一些主要生化成分的数量动态。鱼类在饥饿状态下代谢功能会发生变化，并通过动用鱼体自身的贮存物质(糖类、脂肪和蛋白质)提供能量[13]。石斑鱼在饥饿过程中，肌肉水分含量增加，这与美洲鲟(Acipenser transmontanus)[15]、真鲷(Chrysophrys major[16]，Pagrosomus major[17])和鲈(Lateolabrax japonicus)[18]的研究结果相似。本研究也发现饥饿过程中肌肉蛋白质含量下降，脂肪含量在第1周下降，随后保持相对稳定。这说明，饥饿过程中肌肉脂肪也是石斑鱼首先快速动用的能源物质，而肌肉蛋白则在整个饥饿过程中被动用，是最主要的供能物质。随着饥饿时间的延长，肌肉蛋白质开始作为鱼类新陈代谢的主要能源，对真鲷[16]的研究也得出了相似的结果。然而，EINEN等[19]报道大西洋鲑(Salmo salar)在饥饿过程中肌肉的蛋白质和脂肪含量保持相当高的稳定性，这2种营养物质由于体重的下降在鱼体中减少，说明蛋白质和脂肪是饥饿中的大西洋鲑代谢的重要能量物质。本实验石斑鱼肌肉中灰分有上升的趋势，这与大西洋鲑[19]相似，肌肉中灰分显著增加是由于肌肉中蛋白质和脂肪含量下降的结果[20]。
饥饿过程中，鱼类对其体内不同种类脂肪酸的利用顺序有一定的规律，即首先利用饱和脂肪酸，然后利用低不饱和脂肪酸，最后才动用高不饱和脂肪酸[13]。饥饿影响鱼体组织特别是肝脏和肌肉的脂肪酸组成和内脏的脂肪积累，并且不同鱼类脂肪酸的动用也存在着差异[21]。经4周的饥饿，石斑鱼肝脏中14：0和16：0以及肌肉中14：0和18：0显著降低。这个结果与鲶鱼(Clarias gariepinus)[20]相似。饥饿也引起石斑鱼肝脏的18：1和20：1。鲤(Cyprinus carpio)[22]和Coregonus muksum[23]饥饿引起单不饱和脂肪酸下降而多不饱和脂肪酸上升。
JEZIERSKA等[24]报道虹鳟(Salmo gairdneri)肝脏中的饱和脂肪酸含量保持相对的稳定，单不饱和脂肪酸下降而多不饱和脂肪酸上升；部分饱和脂肪酸上升是因为有些单不饱和脂肪酸和多不饱和脂肪酸保持稳定的百分含量。斑点叉尾
饥饿导致石斑鱼肝脏中20：5和22：6显著增加。WEBSTER等[26]报道斑点叉尾
本实验中，肌肉的脂肪酸组成与肝脏脂肪酸相比，变化较小。肝脏脂肪酸的显著变化说明了肝脏可能是作为脂肪酸代谢的主要器官的标志，这种现象同样出现于鲶鱼[20]。鱼类能够对饥饿表现出不同的反应，肝脏脂肪作为能量物质被动用而导致其脂肪酸组成的较大变化，这种现象仍在探讨中[21]。
饥饿既影响鱼类肌肉和脂肪酸组成，也影响其DHA/EPA比率，但影响的结果却有所差异。本研究中，饥饿后石斑鱼肌肉DHA/EPA比率有下降趋势，但肝脏DHA/EPA比率却显著上升；DHA+EPA的百分比都随饥饿时间的延长而显著上升。这可能是石斑鱼随饥饿时间的延长，引起DHA和EPA在肌肉和肝脏中储存。真鲷[27]仔鱼随着饥饿时间的延长，DHA/EPA比率升高。斑点叉尾
在饥饿状态下，石斑鱼营养组成以及肝脏和肌肉某些脂肪酸含量的变化呈波浪式，这说明石斑鱼在饥饿时对体内贮能物质的动用，可能存在周期性的变化。张波等[17]对真鲷幼鱼饥饿的研究也得出同样的趋势。鱼类在长期饥饿状态下对自身贮备能量的利用可能有2方面的适应：(1)降低代谢水平以节约能量消耗；(2)尽可能地保持一定的代谢水平，以保证在重新获得食物时能产生适当的胁迫反应[13]。
-
![]()
图 1 黑鲷线粒体DNA控制区5′端序列(单倍型1)
注：方框表示终止相关的序列，阴影表示终止相关序列的反向互补序列，双线表示重得序列和源序列所在位置，单线表示ETAS
Figure 1. 5′ end sequence of mitochondrial DNA cotrol region of black porgy(haploty 1)
Note: The square frame in diagram denotes termination associated sequences, the shadow means convert-complement sequence with termination associated sequences, the double line means the position of the repeative sequence and homologous sequence, single line means the ETAS
表 2 中国南北海黑鲷品种内单倍型多样性
Table 2 Haplotype diversity of D-loop of black porgy
品种species 样本数sample size 单倍型数number of haplotypes 单倍型百分率percent of haplotypes 单倍型多样性haplotype diversity 深圳Shenzhen 23 17 73.9% 0.9684±0.022 青岛Qingdao 24 15 62.5% 0.9348±0.076 北海Beihai 25 21 84.0% 0.9667±0.029 合计total 72 51 70.8% 0.9787±0.012 
下载: 导出CSV
表 3 黑鲷品种内核苷酸多态性
Table 3 Nucleotide polymorphism of D-loop of black porgy
品种species 样本数sample size 变异位点数number of variation sites 简约信息位点parsimony sites 平均核苷酸差异(K)average number of nucleotide differences 核苷酸多样度(π)nucleotide diversity Tajima′s 深圳Shenzhen 23 28 13 4.877 0.00897 -1.35155 青岛Qingdao 24 25 12 3.833 0.00702 -1.39469 北海Beihai 25 26 13 4.913 0.00903 -1.05981 合计total 72 55 33 4.818 0.00886 -1.78914
下载: 导出CSV
-
[1] JEAN Chuentan, LEE Sinche, CHEN Chetsung, et al. Variation in mitochondrial DNA sequences of black porgy, Acanthopagrus schlegeli, in the coastal waters of Taiwan[J]. Zool Stud, 1998, 37(1): 22-30. https://www.semanticscholar.org/paper/Variation-in-Mitochondrial-DNA-Sequences-of-Black-Jean-Lee/27451ea0b4e2ab9e2ef072f0ec1c234bed3b2b51
[2] 刘焕章. 鱼类线粒体DNA控制区的结构与进化: 以鳑鲏鱼类为例[J]. 自然科学进展, 2002, 12(3): 266-270. doi: 10.3321/j.issn:1002-008X.2002.03.008 [3] ROSEL P E, HAYGOOD M G, PERRIN W F. Phylogenetic relationships among the True Porpoises (Cetacea: Phocoenidae)[J]. Mol Phylogen Evol, 1995, 4(4): 463-474. doi: 10.1006/mpev.1995.1043
[4] ROSEL P E, ROJAS-BRACHO L. Mitochondrial DNA variation in the critically endangered vaquita Phocoena sinus (Norris and MacFarland)[J]. Mar Mammal Sci, 1999, 15(4): 990-1003. doi: 10.1111/j.1748-7692.1999.tb00874.x
[5] BAKER C S, PERRY A, BANNISTER J L, et al. Abundant mitochondrial DNA variation and world-wide population structure in humpback whales[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1993, 90(19): 8239-8243. https://www.jstor.org/stable/2363001
[6] HOELZEL A R, HALLEY J, O'BRIEN S J, et al. Elephant seal genetic variation and the use of simulation models to investigate historical population bottlenecks[J]. J Heredity, 1993, 84(6): 443-449. doi: 10.1093/oxfordjournals.jhered.a111370
[7] JEAN C T, HUI C F, LEE S C, et al. Variation in mito-chondrial DNA and phylogenetic relationships of fishes of the subfamily Sparinae (Perciformes: Sparidae) in the coastal waters of Taiwan[J]. Zool Stud, 1995, 34(4): 270-280. https://www.semanticscholar.org/paper/Variation-in-Mitochondrial-DNA-and-Phylogenetic-of-Jean-Hui/df9a17ee536d6e81a7deb55040686a6d83a3fcdf
[8] JEAN C T, LEE S C, HUI C F, et al. Phylogenetic relationships among fish of the subfamily Sparinae (Perci-formes: Sparidae) in the coastal waters of Taiwan[J]. J Zool Syst Evol Res, 1995, 33(1): 49-53. doi: 10.1111/j.1439-0469.1995.tb00208.x
[9] SACCONE C, ATTIMONELLI M, SBISA E. Structural elements highly preserved during the evolution of the D-loop containing region in vertebrate mitochondrial DNA[J]. J Mol Evol, 1987, 26(11): 205-211. doi: 10.1007/BF02099853
[10] TZENG C S, HUI C F, SHEN S C, et al. The complete nucleotide sequence of the Crossostoma lacustre mito-chondrial genome: conservation and variations among vertebrates[J]. Nucleic Acids Res, 1992, 20(22): 4853-4858. https://academic.oup.com/nar/article/20/18/4853/995948
[11] YODER A D, CARTMILL M, RUVOLO M et al. Ancient single origin for Malagasy primates[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1996, 93(10): 5122-5126. doi: 10.1073/pnas.93.10.5122
[12] KUMAR S, TAMURA K, JAKOBSEN I B, et al. MEGA2: molecular evolutionary genetics analysis software[J]. Bioinformatics, 2001, 17(12): 1244-1245. doi: 10.1093/bioinformatics/17.12.1244
[13] FU Y X, LI W H. Statistical tests of neutrality of mutations[J]. Genetics, 1993, 133(3): 693-709. doi: 10.1093/genetics/133.3.693
[14] DODA J N, WRIGHT C T, CLAYTON D A. Elongation of displacement-loop strands in human and mouse mitochondrial DNA is arrested near specific template sequences[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1981, 78(10): 6116-6120. doi: 10.1073/pnas.78.10.6116
[15] SBISA E, TANZARIELLO F, REYES F, et al. Mammalian mitochondrial D-loop regions tructural analysis: identification of new conserved sequences and the functional and evolutionary implications[J]. Gene, 1997, 205(1/2): 125-140. https://www.researchgate.net/publication/223837344_Mammalian_mitochondrial_D-loop_region_structural_analysis_Identification_of_new_conserved_sequences_and_their_functional_and_evolutionary_implications
[16] SACCONE C, ATTIMONELLI M, SBISA E. Structural elements highly preserved during the evolution of the d-loop region invertebrate mitochondrial DNA[J]. J Mol Evol, 1987, 26(3): 205-211. doi: 10.1007/BF02099853
[17] GUO X H, LIU S J, LIU Y. Comparative analysis of the mitochondrial DNA control region in cyprinus with different ploidy level[J]. Aquac, 2003, 224(1/4): 25-38. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0044848603001686
[18] 张燕, 张鹗, 何舜平. 中国鲿科鱼类线粒体DNA控制区结构及其系统发育分析[J]. 水生生物学报, 2003, 27(5): 463-467. doi: 10.3321/j.issn:1000-3207.2003.05.004 [19] 曾青兰, 刘焕章. 大口胭脂鱼线粒体DNA控制区序列的研究[J]. 湖北大学学报: 自然科学版, 2001, 23(3): 261-264. doi: 10.3969/j.issn.1000-2375.2001.03.021 [20] LEE W J, CONROY J, HOWELL W H. Structure and evolution of teleost mitochondrial control regions[J]. J Mol Evol, 1995, 41(1): 54-66. doi: 10.1007/BF00174041
[21] 杨慧荣, 江世贵, 周发林, 等. 3个不同地理群体黑鲷遗传变异的RAPD分析[J]. 中国水产科学, 2004, 11(3): 185-189. doi: 10.3321/j.issn:1005-8737.2004.03.002
计量
- 文章访问数:
- HTML全文浏览量:
- PDF下载量:
粤公网安备 44010502001741号
