南沙海域永暑礁金带齿颌鲷生物学特征初步研究

张俊, 陈作志, 陈国宝

张俊, 陈作志, 陈国宝. 南沙海域永暑礁金带齿颌鲷生物学特征初步研究[J]. 南方水产科学, 2015, 11(5): 108-116. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.05.013
引用本文: 张俊, 陈作志, 陈国宝. 南沙海域永暑礁金带齿颌鲷生物学特征初步研究[J]. 南方水产科学, 2015, 11(5): 108-116. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.05.013
ZHANG Jun, CHEN Zuozhi, CHEN Guobao. A preliminary study on biology of Glowfish(Gnathodentex aureolineatus)in Yongshu Reef of Nansha area in the South China Sea[J]. South China Fisheries Science, 2015, 11(5): 108-116. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.05.013
Citation: ZHANG Jun, CHEN Zuozhi, CHEN Guobao. A preliminary study on biology of Glowfish(Gnathodentex aureolineatus)in Yongshu Reef of Nansha area in the South China Sea[J]. South China Fisheries Science, 2015, 11(5): 108-116. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.05.013

南沙海域永暑礁金带齿颌鲷生物学特征初步研究

基金项目: 

农业部财政重大专项 NFZX2013

国家科技支撑计划项目 2013BAD13B06

农业部财政专项“南海海洋捕捞信息动态采集网络 2009-2015

详细信息
    作者简介:

    张俊(1984-),男,助理研究员,从事海洋渔业声学与渔业资源研究。E-mail:zhangjun@scsfri.ac.cn

    通讯作者:

    陈作志(1978-),男,博士,副研究员,从事渔业资源和海洋生态研究。E-mail:zzchen2000@163.com

  • 中图分类号: S931.1

A preliminary study on biology of Glowfish(Gnathodentex aureolineatus)in Yongshu Reef of Nansha area in the South China Sea

  • 摘要:

    根据2013年于南沙海域永暑礁手钓采集的金带齿颌鲷(Gnathodentex aurolineatus) 样品,对其体长与体质量组成及关系、年龄组成、性比及性腺成熟组成、摄食强度等进行了初步研究。结果显示,7月和9月金带齿颌鲷体长分别为112~157 mm和120~162 mm,其体长分布、各体长组平均体长及平均体质量无显著差异(P>0.05)。7月和9月其体长与体质量关系生长参数b值分别为2.814 8和2.629 6。92个耳石中,年龄为1~11龄;7月优势年龄组为2~4龄,峰值为2龄;9月优势年龄组为3~6龄,峰值为6龄;其von Bertalanffy生长方程生长参数分别为: l= 224 mm,K = 0.028,t0=-27.282。7月金带齿颌鲷性腺成熟度包括Ⅱ期和Ⅲ期,9月则包括Ⅰ期、Ⅱ期和Ⅲ期。7月金带齿颌鲷摄食等级均以2级、3级和4级为主,9月则均以1级、2级和3级为主。随体长增加金带齿颌鲷雄性个体饱满指数降低。

    Abstract:

    Taking Glowfish(Gnathodentex aureolineatus) collected by handline in Yongshu Reef of Nansha area in the South China Sea in 2013 as samples, we studied the composition and relation of body length with body weight, age composition, sex ratio, gonad maturity composition and feeding intensity of G.aureolineatus. The results show that the ranges of body length of G.aureolineatus were 112~157 mm and 120~162 mm in July and September, respectively, no significant difference was found in the body length distribution, average body length and weight (P > 0.05). The growing parameters (b value) between body length and body weight in July and September were 2.814 8 and 2.629 6, respectively. The age range of 92 otolith identified was 1~11 year old. The preponderant class and peak of age were 2~4 and 2 years old in July, and 3~6 and 6 years old in September. The parameters of the von Bertalanffy growth function were as follows: l=224 mm, K=0.028, t0=-27.282. The gonad maturity of G.aureolineatus were StageⅡ and Ⅲ in July, StageⅠ, Ⅱ and Ⅲ in September; the feeding stages of female and male G.aureolineatus were mainly at Stage 2, 3 and 4 in July and Stage 1, 2 and 3 in September. The repletion index of male G.aureolineatus decreased with increasing body length.

  • 钙调蛋白(calmodulin,CaM)是广泛存在于真核生物细胞中的、结构和功能高度保守的一种钙离子(Ca2+)结合蛋白,由148个氨基酸组成,含4个EF手结构域,每个EF手能与1个Ca2+结合。4个EF手结构中EF1和EF3、EF2和EF4两两之间相似性最高,具有明显的内部同源性[1]。WATTERSON等[2]和NOJIMA[3]曾提出假说,编码4个EF手结构域的现代CaM基因可能是由编码单个EF手结构域的原始基因经过几轮复制进化而来。钙调蛋白在真核生物细胞中担当胞内钙受体角色,介导Ca2+对环腺苷酸代谢和糖原代谢的调控,在细胞分泌、细胞运动和Ca2+转运方面起重要作用[4]。已克隆得到的哺乳动物和鸟类、蛙等脊椎动物的钙调蛋白的氨基酸序列几乎完全一致,并且低等无脊椎动物居蟹皮海绵(Suberites domuncula)的CaM与脊椎动物CaM之间存在差异的氨基酸位点也仅5个[5-8]。钙调蛋白这种高保守性可以由它参与细胞活动之多、在细胞功能行使中地位之重要来解释。

    到目前为止,钙调蛋白是真核细胞所有Ca2+结合蛋白中研究得最为透彻的一种。研究者们在牛(Bos taurus)、小鼠(Mus musculus)、拟南芥(Arabidopsis thaliana)等模式生物中,对CaM参与调控神经发育、心肌收缩、植物免疫等的研究工作已经进行得相当深入[9-11]。在海洋无脊椎动物中关于CaM参与调控机制的研究还不多,但也有一些进展。GAO等[12]研究发现在克氏原螯虾(Procambarus clarkii)蜕皮期间CaM和Ca2+-ATPase存在某种调控关联。在合浦珠母贝(Pinctada fucata)等贝类动物中,CaM被认为在贝类钙代谢中扮演重要角色,参与贝壳的形成[13]。LUAN等[14]的研究表明,CaM可能参与文昌鱼(Branchiostoma belcheri tsingtauense)消化道的分化。CHEN等[15]的研究表明CaM可能参与纹藤壶(Balanus amphitrite)幼体的附着。然而,海参中有关CaM的研究尚未见报道。

    棘皮动物与脊索动物同属后口动物,是无脊椎动物中与高等脊椎动物进化上亲缘关系最近的类群,在进化上拥有独特的地位。同时,海参具有的吐脏、内脏再生和自溶等这些独特的生物现象,长期以来倍受研究人员关注。花刺参(Stichopus monotuberculatus)俗称“黄肉参”,隶属于棘皮动物门,海参纲,楯手目,刺参科,在中国台湾、广东、广西以及海南省的海域均有分布[16]。花刺参是中国热带海参中具有代表性的高经济价值种类,不仅是名贵的食用种类,也是重要的食品和医药原料,特别用作香脂、擦剂油、奶油、牙膏和化妆品等的原料[17]。该研究在花刺参中克隆了CaM的cDNA全长序列,并分析其在花刺参不同组织中的表达特点,以期为后续进一步研究CaM在海参生命活动中所起的作用奠定基础。

    研究所用花刺参采自广西涠洲岛,在实验室水族箱中暂养一周。水族箱为过滤循环水系统,24 h充气,光周期12 h : 12 h。从水族箱中取出花刺参冰上解剖,体腔液经2 000 g离心15 min,弃上清得到体腔细胞沉淀,加入Trizol后放入-80 ℃保存;体壁、呼吸树和肠组织等经液氮迅速研磨成粉末,加入Trizol后放入-80 ℃保存。

    Trizol(invitrogen)法提取海参体壁、呼吸树、肠以及体腔细胞的总RNA,按照TaKaRa cDNA第一链合成试剂盒的说明进行反转录,-20 ℃保存。其中肠样品同时用于CaM基因cDNA全长序列克隆。

    基于已获得的花刺参EST序列设计引物G-F/G-R,用以扩增CaM基因中间片段。扩增程序为94 ℃ 5 min,预变性;94 ℃ 15 s,52 ℃ 15 s,72 ℃ 1 min,共35个循环;72 ℃ 10 min延伸。PCR产物经回收、连接、转化后挑选阳性克隆送测序。

    根据获得的CaM中间片段序列,用Primer 5软件设计3′-RACE引物(F3-1和F3-2)和5′-RACE引物(R5-1和R5-2)。根据3′/5′-Full RACE Kit(Takara)说明书的指导,结合巢式PCR技术扩增CaM基因3′末端和5′末端序列。PCR产物用上面所述的方法进行回收、连接、转化克隆并测序。此研究所用的引物序列见表 1

    表  1  基因克隆与荧光定量PCR使用的引物及其序列
    Table  1.  Primers used in gene cloning and real-time PCR
    引物 primer 序列  sequence(5′→3′)
    G-F AGACAGACAGTGAGGAAGA
    G-R TCATAGTTGACCTGACCATC
    F3-1 GATGGCAAGGAAGATGAAGGA
    F3-2 CTTGGAGAAAAATTGACAGATGA
    R5-1 TGAAACCATTGCCATCTTTG
    R5-2 AGCAAGTCAGGGTTAAGAGGT
    qF1 AATGGTTTCATCGGTGCTG
    qR1 AGGGTTAAGAGGTGGTGGAT
    Actin-F ACGAAGTTCAAGCCCTGGTTA
    Actin-R TCTTCTCCATATCATCCCAGTTTG
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    将测序得到的5′末端序列、中间片段序列和3′末端序列拼接起来,获得花刺参CaM基因的cDNA全长序列。利用NCBI比对所获得的cDNA全长序列,并做同源性分析。应用BioEdit软件寻找ORF并翻译成蛋白质。使用SMART在线软件分析蛋白质结构和功能。使用SWISS-MODEL分析蛋白质的三维结构。用ClustalX及GeneDoc软件做蛋白质序列比对分析。利用Mega 5.0软件根据不同物种的CaM ORF序列以最小进化法构建系统进化树。

    设计荧光定量PCR特异引物qF1和qR1及内参引物Actin F和Actin R。qRT-RCR反应体系包括SYBR Rremix Ex TaqⅡ(12.5 μL)、qF1(1.0 μL)、qR1(1.0 μL)、cDNA模板(2 μL)和灭菌蒸馏水(8.5 μL)。采用2步法扩增标准程序:1)预变性95 ℃ 30 s;2)95 ℃ 5 s,60 ℃ 30 s,40个循环。反应在RG-3000荧光实时定量PCR仪(Applied Biosystems)进行,每种组织cDNA样品及内参分别做3个重复。用RG-3000自带分析软件进行溶解曲线分析以确定单一扩增,用2-ΔCT法分析花刺参CaM基因的组织表达水平[18],ΔCT为目的基因CT值与内参基因CT值的差值,然后用公式2-ΔCT计算相对表达量。

    克隆得到的StmCaM cDNA全长1 394 bp(GenBank登录号KJ624993),其中包括138 bp的5′UTR,806 bp的3′-UTR和450 bp的ORF。3′-UTR端聚腺苷酸加尾信号(AAATAG)位于poly A尾上游第21个碱基位点处(图 1)。由ORF推导出的StmCaM含148个氨基酸,预测分子量约16.7 kD,理论等电点为4.1。与其他物种CaM一样花刺参CaM含4个EF手Ca2+结合域(图 1)。利用SWISS-MODEL在线软件分析花刺参CaM的三维结构(图 2),可见CaM含4个螺旋-环-螺旋(helix-loop-helix)结构,即代表 4个EF手。每个EF手包括2个螺旋和连接2个螺旋的环状结构。使用MegAlign软件分析花刺参CaM4个EF手结构域之间的相似度,EF1与EF3相似度为51.7%,EF2与EF4相似度为48.3%;这2个组合间相似度比其他任何两两组合之间,EF1和EF2(31%)、EF1和EF4(37.9%),EF2和EF3(31%)都要高。

    图  1  StmCaM cDNA序列及推导的氨基酸序列
    下划线为聚腺苷酸加尾信号;*代表终止密码子;加框的序列为4个EF手结构;GenBank序列号KJ624993
    Figure  1.  Nucleotide sequence of Stm CaM cDNA and deduced amino acid sequences
    The polyadenylation signal in 3′-UTR was underlined; the stop codon was marked by an asterisk, and four EF-Hand domains were included in rectangles. GenBank accession No. is KJ624993.
    图  2  花刺参CaM预测的三维结构图
    Figure  2.  Predicted three-dimensional structure of StmCaM

    MegAlign软件对不同物种来源钙调蛋白进行相似度分析的结果,表中显示花刺参CaM与其他物种CaM相似度从95.9%到98%(表 2)。其中作为脊椎动物代表的小鼠的钙调蛋白与花刺参钙调蛋白之间的相似度最低为95.9%。另外,花刺参CaM与真海鞘(Halocynthia roretzi)、白氏文昌鱼(Branchiostoma lanceolatum)、中间球海胆(Strongylocentrotus intermedius)的相似度最高(均为98%);与秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis elegans)、绣球海葵(Metridium senile)、居蟹皮海绵(Suberites domuncula)的相似度分别为96.6%、97.3%和96.6%。图 3比对了不同物种来源钙调蛋白之间发生氨基酸替换的全部氨基酸位点,从低等无脊椎海绵到高等脊椎动物小鼠一共有9个位点发生氨基酸替换。表 3具体列举了发生氨基酸替换的位点。花刺参CaM与中间球海胆CaM相比有3个氨基酸位点发生变换,同合浦珠母贝相比也仅有4个氨基酸位点发生变换。

    表  2  花刺参CaM和其他物种CaM相似性比对
    Table  2.  Similarity between StmCaM and other CaMs
    物种
    species
    登录号
    Accession No.
    相似度/%
    similarity
    小鼠(M.musculus) NP_033920.1 95.9
    真海鞘(H.roretzi) BAA33967.1 98.0
    白氏文昌鱼(B.lanceolatum) P62148 98.0
    中间球海胆(S.intermedius) BAB89360.1 98.0
    克氏原螯虾(P.clarkii) ACI15835.1 97.3
    加利福尼亚海兔(A.californica) NP_001191509 98.0
    合浦珠母贝(P.fucata) GI: 46517823 96.6
    黑腹果蝇(D.melanogaster) NP_523710 98.0
    秀丽隐杆线虫(C.elegans) O16305 96.6
    绣球海葵(M.senile) BAB61794.1 97.3
    居蟹皮海绵(S.domuncula) CAA77069 96.6
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    图  3  不同物种钙调蛋白氨基酸比对图
    Figure  3.  Alignment of amino acid sequences of CaM from different species
    表  3  不同物种CaM之间氨基酸差异位点
    Table  3.  Variable residues among different CaMs
    物种
    species
    位置  posion
    27 57 78 99 101 130 143 146 147
    小鼠(M.musculus) I A D Y S I Q T A
    真海鞘(H.roretzi) I A D F S I T T S
    白氏文昌鱼(B.lanceolatum) I A D F S I T T S
    中间球海胆(S.intermedius) I A D F S I T T S
    花刺参(S.monotuberculatus) T A E F G I T T S
    克氏原螯虾(P.clarkii) I A D F S I R T S
    加利福尼亚海兔(A.californica) I A D F S I T T S
    合浦珠母贝(P.fucata) I A D F S I K M S
    黑腹果蝇(D.melanogaster) I A D F S I T T S
    秀丽隐杆线虫(C.elegans) I T E F S T G T S
    绣球海葵(M.senile) I A D F S I K T S
    居蟹皮海绵(S.domuncula) I T E F S T G T S
    注:A. 丙氨酸;D. 天冬氨酸;F. 苯丙氨酸;I. 异亮氨酸;K. 赖氨酸;M. 蛋氨酸t;Q. 谷氨酰胺;R. 精氨酸;S. 丝氨酸;T. 苏氨酸
    Note:A. Ala;D. Asp;F. Phe;I. Ile;K. Lys;M. Met;Q. Gln;R. Arg;S. Ser;T. Thr
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    利用Mega 4软件,采用最小进化法构建CaM系统发育树。结果显示,花刺参CaM与囊舌虫(Saccoglossus kowalevskii)、绣球海葵、加利福尼亚海兔(Aplysia californica)三者的CaM亲缘关系较近,聚为一簇。另外,不同脊椎动物的CaM聚为一簇,居蟹皮海绵、黑腹果蝇(Drosophila melanogaster)和秀丽隐杆线虫聚为一簇;这2簇则与StmCaM亲缘关系较远(图 4)。

    图  4  CaM的系统发育树
    Figure  4.  Phylogenetic tree of CaMs

    采用荧光定量PCR检测CaM基因在花刺参不同组织中的表达情况。结果显示体壁中CaM相对表达量最低,2-ΔCT值为0.9。呼吸树中最高,2-ΔCT为113.8,其次是体腔细胞和肠(图 5)。

    图  5  荧光定量PCR检测CaM基因在花刺参不同组织中的表达
    Figure  5.  Expression patterns of CaM mRNA in different tissues of S.monotuberculatus by real-time PCR

    前人已经克隆并描述了真海鞘、白氏文昌鱼、凡纳滨对虾(Litopenaeus vannamei)、绣球海葵和居蟹皮海绵等不同进化地位的海洋无脊椎动物的钙调蛋白[19-22]。海参作为棘皮动物中代表性的一个类群,其钙调蛋白尚未被研究发表过。该研究克隆了花刺参CaM全长cDNA序列,由其ORF推导出的花刺参CaM与其他物种CaM的相似度从95.9%到98%,同样含有4个EF手结构域。比对花刺参CaM内部4个EF手结构相互之间相似性的结果显示EF1与EF3相似度为51.7%,EF2与EF4相似度为48.3%;表明花刺参CaM中EF1与EF3、EF2与EF4之间内具有很高的内同源性。这为WATTERSON等[2]和NOJIMA[3]曾提出的关于CaM基因进化的假说提供了支撑证据。

    研究对CaM在花刺参不同组织中的mRNA表达水平作了定量分析。结果显示,StmCaM mRNA在呼吸树中表达量最高,其次为体腔细胞和肠,而体壁中则几乎检测不到其表达。刘晓云等[23]使用光学显微镜和电子显微镜观察刺参呼吸树超微结构,发现刺参呼吸树由外向内依次为体腔上皮、肌层、血腔、内皮细胞和中央腔。内皮细胞与流经中央腔的海水进行气体交换,同时里面含有丰富的囊泡(吞饮小泡和质膜小泡)可以吸收海水中营养物质。体腔上皮细胞游离面长有许多微绒毛,胞内同样含有丰富的囊泡,能与体腔液进行物质交换。前人对钙调蛋白功能的研究表明,钙调蛋白在细胞分泌、细胞运动和Ca2+中起重要作用。SATIR等[24]在草履虫(Paramecium tetraurelia)、四膜虫(Tetrahymena thermophila)和淡水蚌(Elliptio)的纤毛基部都发现有CaM存在,JAMIESON等[25]也证明钙调蛋白是纤毛轴丝复合物的组成成分;这些研究表明钙调蛋白可能参与纤毛的摆动[24, 26]。LINDEN等[27]研究发现Ca2+/calmodulin复合体能特异的结合到有被囊泡上,参与受体介导的细胞内吞作用。因此,从CaM在花刺参呼吸树中的高表达来推断,CaM可能介导花刺参呼吸树表皮细胞中囊泡吸收营养物质的过程,同时也可能参与微绒毛的摆动和Ca2+吸收。

    脊椎动物和无脊椎动物天然免疫细胞中均存在由Toll样受体介导的活性氮(reactive nitrogen species,RNS)抗菌免疫机制[28]。RNS中主要有效成分一氧化氮(NO)由一氧化氮合成酶(Nitric oxide synthase,NOS)合成。紫海胆(Strongylocentrotus purpuratus)的基因组测序发现,棘皮动物中存在NOS基因,并存在多达220个Toll样受体基因,表明这种抗菌免疫机制在棘皮动物中也是存在的[29]。NOS蛋白的结构上有2个CaM结合域,需要与2个Ca2+/CaM结合形成复合体才能合成NO[30]。因此,花刺参肠道和体腔细胞中较高的CaM表达量,可能与其参与活性氮相关的抗菌免疫机制有关。

    致谢: 感谢“南锋”号调查船及全体船员的支持!
  • 图  1   永暑礁地理位置

    Figure  1.   Geographical location of Yongshu Reef

    图  2   金带齿颌鲷体长分布

    Figure  2.   Distribution of body length of G.aurolineatus

    图  3   金带齿颌鲷各体长组平均体长和体质量

    Figure  3.   Distribution of average body length and body weight of G.aurolineatus for body length group

    图  4   金带齿颌鲷体长与体质量及纯体质量关系

    -.体长与体质量回归线;┅.体长与纯体质量回归线

    Figure  4.   Relation between body length and body weight, body length and net body weight of G.aurolineatus

    -.regression line between body length and net body weight; ┅. regression line between body length and body weight

    图  5   金带齿颌鲷耳石及轮纹(箭头)

    a.4龄鱼(雄性,体长为130 mm,体质量55.22 g);b.8龄鱼(雌性,体长为143 mm,体质量70.04 g)

    Figure  5.   Otolith and ring (arrow) of G.aurolineatus

    a.4-year old fish (male body length 130 mm, body weight 55.22 g); b.8-year old fish (female body length 143 mm, body length 70.04 g)

    图  6   金带齿颌鲷年龄分布和各龄平均体长(a) 及7月雌、雄个体年龄组成和平均体长(b)

    Figure  6.   Age distribution and average body length (a), and age distribution and average body length of female and male G.aurolineatus in July, 2013 (b)

    图  7   各年龄组金带齿颌鲷体长分布

    Figure  7.   Distribution of body length of G.aurolineatus for each age group

    图  8   金带齿颌鲷体长-年龄关系

    和━代表实测体长-年龄数据及其拟合曲线,┅代表基于von Bertalanffy方程的预测点的拟合曲线

    Figure  8.   Relationship between body length and age of G.aurolineatus

    and-indicate measured body length-age and fitting curve; ┅ indicates fitting curve of estimated data based on von Bertalanffy function

    图  9   2013年7月不同性腺成熟度金带齿颌鲷体长分布

    Figure  9.   Distribution of body length of G.aurolineatus at gonad maturity stage in July, 2013

    图  10   2013年9月不同性腺成熟度金带齿颌鲷体长分布

    Figure  10.   Distribution of body length of G.aurolineatus at gonad maturity stage in September, 2013

    图  11   雌性和雄性金带齿颌鲷摄食等级

    Figure  11.   Feeding stage of female and male G.aurolineatus

    图  12   金带齿颌鲷摄食等级比例随体长变化

    Figure  12.   Correlation between body length and feeding stage percentage of G.aurolineatus

    图  13   金带齿颌鲷饱满指数随体长变化

    Figure  13.   Variation of repletion index with body length of G.aurolineatus

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出版历程
  • 收稿日期:  2015-02-16
  • 修回日期:  2015-04-09
  • 刊出日期:  2015-10-04

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