北盘江2种典型增殖放流鱼类突进游速研究

莫伟均, 王从锋, 刘德富, , 熊锋, 汪玲珑, 秦孝辉

莫伟均, 王从锋, 刘德富, 寇, 熊锋, 汪玲珑, 秦孝辉. 北盘江2种典型增殖放流鱼类突进游速研究[J]. 南方水产科学, 2014, 10(3): 9-14. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.03.002
引用本文: 莫伟均, 王从锋, 刘德富, 寇, 熊锋, 汪玲珑, 秦孝辉. 北盘江2种典型增殖放流鱼类突进游速研究[J]. 南方水产科学, 2014, 10(3): 9-14. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.03.002
MO Weijun, WANG Congfeng, LIU Defu, KOU Fanglu, XIONG Feng, WANG Linglong, QIN Xiaohui. Study on burst swimming speeds of two typical releasing fish from Beipan River[J]. South China Fisheries Science, 2014, 10(3): 9-14. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.03.002
Citation: MO Weijun, WANG Congfeng, LIU Defu, KOU Fanglu, XIONG Feng, WANG Linglong, QIN Xiaohui. Study on burst swimming speeds of two typical releasing fish from Beipan River[J]. South China Fisheries Science, 2014, 10(3): 9-14. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.03.002

北盘江2种典型增殖放流鱼类突进游速研究

基金项目: 

水利部公益性行业科研专项 201201030

贵州北盘江电力股份有限公司合作项目 SDHZ2012136

详细信息
    作者简介:

    莫伟均(1989-),男,硕士研究生,从事生态水利方面研究。E-mail: sdmoweijun@163.com

    通讯作者:

    王从锋(1974-),男,教授,从事生态水利方面研究。E-mail:wangcf@ctgu.edu.cn

  • 中图分类号: S917.4

Study on burst swimming speeds of two typical releasing fish from Beipan River

  • 摘要:

    长臀(Cranoglanis bouderius)和白甲鱼(Onychostoma sima)是目前北盘江主要放流鱼类,但这2种鱼的放流效果差异较大。由于鱼类的突进游速在一定程度上影响增殖放流的效果,故试验采用自制测试装置,用递增流速法测试了2种鱼的突进游速。结果显示,白甲鱼的突进游速大于长臀,且2种鱼的突进游速均随体长增加而近似线性增大;而相对突进游速则随着体长的增加而近似线性减小。研究结果可为北盘江鱼类增殖放流和放流效果评估,以及日后北盘江的拦鱼、诱鱼、集鱼船等鱼类资源保护措施的实施提供参考。

    Abstract:

    Cranoglanis bouderius and Onychostoma sima, the main releasing fish in Beipan River, have obvious differences in their releasing effect. We tested the two fish′s burst swimming speeds by increasing velocity method with the device made by ourself. The results show that the burst swimming speed of O.sima was higher than that of C.bouderius. The burst swimming speed and relative burst swimming speed of the two fish increased and declined along with the increasing body length with linear approximation, respectively. The investigation provides references for assessment of enhancement and releasing effect for fish from Beipan River as well as protective measures for blocking fish, luring fish and fishing boat in Beipan River in the future.

  • 一般地在鱼类内分泌系统中,脑下垂体-甲状腺轴对生长发育、物质能量代谢、繁殖等生命活动均发挥着非常重要的作用[1-3]。一方面,促甲状腺激素(thyroid-stimulating hormone,TSH)首先作用于甲状腺组织,刺激甲状腺组织合成、分泌甲状腺激素(thyroid hormone,TH),然后TH与机体组织中的TH受体结合,从而影响了机体的生长、发育以及繁殖等生命过程;另外,机体内TH水平对TSH的分泌也起到负反馈调节。在鱼类,TSH和促性腺激素都是糖蛋白激素,这几种糖蛋白激素都是由α和β 2个亚基组成,其中,每种动物中的α亚基是相同的,而β亚基都是不同的,激素的特异性是由β亚基所决定的。不同的基因分别指导α和β亚基的合成,两者在质膜上以非共价键结合,形成具有生物活性的二聚体分子蛋白[4]

    另一方面,鱼体内产生的雌激素主要是在垂体促性腺激素的作用下由卵巢滤泡细胞合成和分泌的C-18性类固醇激素。鱼类卵巢能产生和分泌的雌激素主要包括雌二醇(estradiol-17β,E2)和雌酮(estrone)2种,其中以E2的活性最强[5]。在硬骨鱼类中,E2具有促进肝组织合成和释放卵黄蛋白前体物质(卵黄蛋白原)[6]及提高血液中Ca2+水平的作用[7]。而且研究结果显示,E2对早期发育[8]、性分化[9]、生长[10]、免疫系统功能[11]、营养物质的利用[12]、性逆转[13]、血液中降血钙素水平[14]、遗传因子的调控[15]等生命活动过程也发挥着巨大的作用。因此,E2对鱼类正常的生理活动起着重要的作用。

    可是,近几十年来,随着科技和现代工业的高速发展、人口数量的增多以及人类开发利用自然资源能力和范围的不断扩大,环境污染已逐渐成为威胁人类生存的重大问题之一。在有些河流、湖泊、污水处理排放口等水体中存在一定数量的污染物。研究显示,有些环境污染物可以通过模拟机体激素的作用来干扰、扰乱内源性激素的产生,从而改变机体内分泌系统的正常功能作用。进一步研究还显示,一些内分泌干扰物具有雌激素或雄激素效应[16-17]。因此,为明确具有雌激素效应的内分泌干扰物对生物体的危害,首先对过量的外源性雌激素,如E2对生物体内分泌系统的干扰作用进行研究是非常重要的。

    异育银鲫(Carassius auratus)具有适应性强、疾病少、成活率高、生长速度快、养殖周期短、产量高、耐低温低氧、市场价格高等优点,深受广大水产养殖户的喜爱,并且异育银鲫在我国分布广泛。因此,本实验以异育银鲫为研究对象,运用实时荧光定量RT-PCR方法和放射免疫方法(RIA)检测了外源性E2对其脑垂体-甲状腺轴的影响,以期能够探讨和明确外源性E2对生物机体的危害,并为健康水产养殖标准的制定和保护人类的生存环境等方面提供新的理论和依据。

    异育银鲫购于上海孙桥水产养殖良种场,体重在45 g左右。购回后暂养于实验室160 L水族箱内,每日按照1%的体重比喂食饵料、暂养。1周后,挑选健康样本作为实验对象,实验期间均不喂食饲料。

    E2购于Sigma公司;M-MLV-RT试剂盒购于Promega公司;RNA抽提试剂Trizol Reagant购于Invitrogen公司;Perfect Real Time(SYBR Green Ⅰ)荧光定量反应试剂盒以及PCR反应试剂购于Takara公司;放射免疫分析试剂盒购于上海放射免疫分析技术有限公司。

    首先称取适量E2用无水乙醇进行溶解配制成母液,通过小剂量倍比稀释实验找出其溶解下限-酒精浓度57%,然后将E2溶解在57%的酒精中。

    将健康的异育银鲫分成4个注射组,每组6尾。实验组为注射3次0.5 mg·kg-1体重的E2组和注射5次0.5 mg·kg-1体重的E2组;对照组为注射3次同剂量的57%酒精组和注射5次同剂量的57%酒精组。

    该4个注射组均采用肌肉注射法,每2周注射一次,在第3、第5次注射完后的第3天取样。取样时,采用断尾取血法收集血液,然后分离血清,-20℃保存备用;同时,自异育银鲫头部蝶鞍骨背面的小骨腔内取出脑下垂体于1.5 mL经DEPC处理过的离心管中,-70℃保存备用。实验期间所有注射组均无死亡现象发生。

    按照Trizol Reagant试剂制造商提供的方法,从异育银鲫脑垂体中提取总的RNA。将所提取的RNA样本放于-80℃冰箱保存备用。反转录按照Promega公司M-MLV-RT试剂盒说明书进行。

    实时荧光定量RT-PCR是检测低丰度、或者从有限的组织中检测mRNA量的敏感方法之一。为了去除不同标本在RNA产量、质量以及反转录效率上可能存在的差别而得到目标基因特异性表达的真正差异,通常选择一内参基因进行校正和标准化。所以,本实验首先根据已获得的异育银鲫TSH-β基因cDNA序列[18]和金鱼beta-actin cDNA序列,运用Primer Premier 5结合Dnastar分析软件及在线BLAST,分别设计、合成了适用于荧光定量的目的片段(TSH-β cDNA)引物和内参片段(beta-actin cDNA)引物。引物序列如下:

    目的片段引物(产物长度为176 bp):

    上游引物:5′GGGTATTTTGATGAAGGTAGCC 3′

    下游引物:5′CTTTGAACCAGGAAACGAGC 3′

    内参片段引物(产物长度为127 bp):

    上游引物:5′GATGCGGAAACTGGAAAGG 3′

    下游引物:5′ACTGTGAGGGCAGAGTGGTAG 3′

    利用SYBR Green Ⅰ荧光染料在ABI Prism 7000荧光定量PCR仪上检测TSH-β mRNA的表达水平。优化后的实时定量RT-PCR体系如下:SYBR Premix EX TaqTM (2×)10 μL,上、下游引物(10 μM)各0.4 μL,ROX Reference Dye (50×)0.4 μL,DNA模板2.0 μL (< 100 ng),灭菌双蒸水6.8 μL,总量20 μL。将反应体系稍微离心后放入定量PCR仪内进行扩增。反应条件:95℃,10 s;95℃,5 s,60℃,30 s,45个循环。反应结束后,系统将采集到的每一循环反应时各反应管荧光强度的增长指数(DRn)进行分析,绘制每一反应管的扩增动力学曲线。根据动力学曲线确定每个样品管中荧光强度增加到某一特定阈值(threshold)时的扩增循环数(Ct值)。最后将每个内参样品的Ct值除以相应目的样品的Ct值,进而得出每个样品的相对精确值。最后,将所扩增的PCR产物进行溶解曲线分析(检测温度:60℃)。

    异育银鲫血清中甲状腺激素T3和T4水平的检测采用常规T3和T4放射免疫测定方法(RIA)测定。首先分别配制T3标准液(0.25、0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0和8.0 ng·mL-1)和T4标准液(0.5、1.25、2.5、3.75、5、7.5、10、15、20和40 ng·mL-1),建立T3和T4标准曲线。然后对待测样品进行T3和T4含量测定。

    每组数据均以平均值±标准差表示,显著性检验采用t检验,P < 0.05时认为差异显著;P < 0.01时认为差异极显著。数据统计采用SAS 6.0统计软件进行。

    为保证本实验结果数据的准确性,首先随机抽取5个样本进行预实验,以求对荧光定量PCR仪功效以及样品质量进行鉴定。扩增曲线显示PCR扩增指数增长期及平台期曲线都较为整齐,无不正常、不规则条带出现(图 1)。说明荧光定量PCR仪性能良好,PCR条件适当,扩增效果较好。

    图  1  荧光定量RT-PCR扩增曲线分析
    Figure  1.  Amplification curve analysis of fluorescence real time PCR

    溶解曲线分析显示,特异性扩增产物都具有相同的Tm值。目的片段PCR产物的Tm值在83℃左右,内参片段PCR产物的Tm值在80.5℃左右,溶解温度单一(图 2)。将该随机抽取的五个样本进行PCR扩增反应后,经琼脂糖凝胶电泳鉴定也同样证明了引物具有很强的特异性,并且所得目的片段产物和内参片段产物与预测大小一致,且均为单一条带(图 3)。在此基础上,我们检测了外源性E2对异育银鲫TSH-β mRNA表达的影响。

    图  2  荧光定量RT-PCR溶解曲线分析
    Figure  2.  Melting curve analysis of fluorescence real time PC
    图  3  异育银鲫内参片段和目的片段PCR产物凝胶电泳结果
    1~5. 内参PCR产物;6~10. 目的PCR产物;11. 100 bp分子量
    Figure  3.  Agarose electrophoresis of the PCR products of beta actin and C. auratus TSH-β
    1~5. PCR products of beta-actin; 6~10. PCR products of TSH-β; 11. 100 bp marker

    注射3次与5次外源性E2后,异育银鲫TSH-β mRNA表达水平与对照组相比均未有显著差异(P>0.05)。但随着注射次数的增加,总体呈现一个升高的趋势(图 4)。另外,对照组注射5次与3次相比TSH-β mRNA的表达水平无显著差异(P>0.05)。

    图  4  注射外源性E2对异育银鲫TSH-β mRNA表达水平的影响(n=6)
    Figure  4.  Effects of exogenous E2 injection on the expression level of C. auratus TSH-β mRNA(n=6)

    注射3次和5次外源性E2后,异育银鲫血清甲状腺激素T3和T4含量水平与对照组相比均出现了显著差异(图 5)。从图 5中可以看到:注射3次后,血清T3和T4水平与对照组相比显著升高(P < 0.05),而且血清T4水平较T3更为明显;注射5次后,血清T3和T4水平与对照组相比出现了极显著升高(P < 0.01)。另外,对照组5次与3次相比血清T3和T4水平无显著性变化(P>0.05)。

    图  5  注射外源性E2对异育银鲫TH水平的影响(样本n=6)
    “*”,“**”分别表示差异显著(P < 0.05)和极显著(P < 0.01)
    Figure  5.  Effects of estradiol injection on serum thyroid hormone concentration of C. auratus(n=6)
    The significant difference levels at 5% (P < 0.05)and 1% (P < 0.01) were denoted by "*" and "* *" respectively.

    本研究运用SYBR Green Ⅰ荧光定量RT-PCR方法以及RIA方法检测了外源性E2对异育银鲫脑下垂体-甲状腺轴的影响。研究结果显示,在实验条件下随着注射次数的增加,外源性E2使异育银鲫TSH-β mRNA的表达量出现了逐渐升高的趋势,但与对照组相比,并无显著性差异。这与YOUNG和BALL[19]的研究结论较为相似,其研究发现外源性E2对鳉鱼(Poecilia latipinna)TSH活性无显著性影响;但与国内外一些学者如OLIVEREAU等[20]、QU等[21]的研究结果略有不同。他们研究显示外源性E2使TSH细胞活性,TSH-β mRNA的表达水平出现了显著升高。上述结果与本结果不同,可能是由于研究对象种类以及发育阶段的不同、外源激素注射剂量以及实验条件等不同而导致外源性E2作用结果出现了差异所致。

    另一方面,利用RIA方法对异育银鲫血清甲状腺激素T3和T4含量水平的测定结果显示,在本实验条件下,随注射次数的增加,注射外源性E2使异育银鲫血清T3和T4水平显著升高。该结果与BANDYOPADHYAY等[22]的体外研究结果有相似之处。BANDYOPADHYAY研究发现,在培养液中加入1~100 ng E2时,对缘鳢(Channa gachua)甲状腺滤泡分泌T4具有促进作用。但与OLIVEREAU[20]、QU等[21]以及LEATHERLAND等[23]的体内研究结果不同。OLIVEREAU等[20]研究表明外源性E2能降低欧洲鳗鲡(Anguilla anguilla)血浆T3和T4的水平;QU等[21]对日本鳗鲡(A.japonica)的研究也表明注射外源性E2能降低血清T3和T4水平;LEATHERLAND等[23]研究显示,注射外源性E2能同时降低鲑科鱼类虹鳟(Salmo gairdneri)T3和T4水平,而埋植外源性E2时只对T3有降低作用,对T4水平无影响。上述结果可能由于实验条件、实验所用研究对象种类、鱼体的不同发育阶段[24]等不同。

    综合本实验结果可以推测:(1)E2可能作用于鱼类的脑下垂体,增强脑垂体对促甲状腺激素释放激素的反应,从而使TSH的合成和分泌出现了一定程度的增加[25],所以TSH-β mRNA的表达水平略有增加或显著升高。由此,可能导致了血清中甲状腺激素T3和T4水平的显著性升高。(2)E2也可能作用于甲状腺组织促使甲状腺组织释放了TH[22],然后TH通过脑垂体-甲状腺轴的负反馈系统抑制了TSH-β mRNA表达水平的进一步升高。至于E2具体作用于异育银鲫脑垂体还是作用于甲状腺组织或对2组织同时发挥作用,还有待进一步研究。

    在实验设计中,为明确外源性E2对异育银鲫脑垂体-甲状腺轴的影响而设计了E2注射组和对照组;另外,为排除实验期间异育银鲫由于获得饵料情况的不同而产生的生理差异的影响,整个实验期间动物没有给予投喂饲料。虽然在整个实验期间没有投喂饲料对异育银鲫的正常生理会有一定的影响,但对于本研究所要阐述问题的目的没有影响。国内、外研究者也有很多类似的研究论文发表[20, 26]

    本实验以异育银鲫为研究对象,从基因水平及内分泌角度研究了外源性E2对其脑垂体-甲状腺轴的影响。实验结果在一定程度上说明了外源性E2能够对异育银鲫脑垂体-甲状腺轴的正常生理功能产生一定的影响作用。从而为内分泌干扰物可能对生物机体产生一定的影响这一理论提供了一定的证据。与此同时,论文结果对于保护动物的繁衍和生存有着重要的意义,也为创建健康水产养殖标准和保护人类的生存环境提供新的理论和科学依据。

  • 图  1   测试鱼类游泳能力装置示意图

    1.电动机;2.变频器;3.拦网;4.外箱;5.摄像机;6.游泳槽;7.整流器;8. 螺旋桨

    Figure  1.   Device for testing swimming ability of fish

    1. pump; 2. frequency controller; 3. net; 4. tank; 5. camera; 6. swimming tunnel; 7. flow streamer; 8. propeller

    图  2   速度与频率的关系

    Figure  2.   Relationship between speed and frequency

    图  3   长臀(a)和白甲鱼(b)的突进游速与体长关系

    Figure  3.   Relationship between burst swimming speed and body length of C.bouderius (a) and O.sima (b)

    图  4   长臀(a)和白甲鱼(b)的相对突进游速与体长关系

    Figure  4.   Relationship between relative burst swimming speed and body length of C.bouderius (a) and O.sima (b)

    表  1   长臀和白甲鱼的突进游速

    Table  1   Burst swimming speed of C.bouderius and O.sima

    种类
    species
    体长/cm
    length
    突进游速/cm·s-1
    burst swimming speed
    相对突进游速/BL·s-1
    relative burst swimming speed
    长臀(C.bouderius) 11.44±3.31 94.10±10.93a 8.67±1.75a
    白甲鱼(O.sima) 14.99±4.46 153.70±9.97b 10.94±2.71b
    注:表中的值为平均值±标准差(n=10);同一列中具有不同字母标记的数值表示差异显著(P < 0.05)
    Note: Data are shown in X ±SD(n=10);values with different superscript letters in the same column are different from each other(P < 0.05).
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  • [1] 乐佩琦, 陈宜瑜, 中华人民共和国濒危物种科学委员会. 中国瀕危动物红皮书: 鱼类[M]. 北京: 科学出版社, 1998: 222-223. http://www.irgrid.ac.cn/handle/1471x/204793
    [2] 周路, 张竹青, 李正友, 等. 北盘江光照水电站建设前后鱼类资源变化[J]. 水生态学杂志, 2011, 32(5): 134-137. doi: 10.3969/j.issn.1003-1278.2011.05.026
    [3]

    HYV RINEN P, VEHANEN T. Effect of brown trout body size on post-stocking survival and pike predation[J]. Ecol Freshw Fish, 2004, 13(2): 77-84. doi: 10.1111/j.1600-0633.2004.00050.x

    [4] 叶超, 王珂, 黄福江, 等. 异齿裂腹鱼游泳能力初探[J]. 淡水渔业, 2013, 43(3): 33-37. doi: 10.3969/j.issn.1000-6907.2013.03.006
    [5]

    PLAUT I. Critical swimming speed: its ecological relevance[J]. Comp Biochem Physiol A, 2001, 131(1): 41-50. doi: 10.1016/S1095-6433(01)00462-7

    [6]

    WATKINS T B. Predator-mediated selection on burst swimming performance in tadpoles of the Pacific tree frog, Pseudacris regilla[J]. Physiol Zool, 1996, 69(1): 154-167. doi: 10.1086/physzool.69.1.30164205

    [7]

    BAILEY D M, BAGLEY P M, JAMIESON A J, et al. In situ investigation of burst swimming and muscle performance in the deep-sea fish Antimora rostrata[J]. J Exp Mar Biol Ecol, 2003, 285: 295-311. doi: 10.1016/S0022-0981(02)00534-8

    [8]

    KIEFFER J D. Perspective: exercise in fish: 50+ years and going strong[J]. Comp Biochem Physiol A, 2010, 156(2): 163-168. doi: 10.1016/j.cbpa.2010.02.009

    [9] 史航, 陈勇, 赵子仪, 等. 许氏平鲉、大泷六线鱼临界游速与爆发游速及其生理指标的研究[J]. 大连海洋大学学报, 2010, 25(5): 407-412. doi: 10.3969/j.issn.1000-9957.2010.05.006
    [10] 乔云贵, 黄洪亮, 黄妙芬, 等. 不同淡水鱼类游泳速度的初步研究[J]. 湖南农业科学, 2012(15): 116-119. doi: 10.3969/j.issn.1006-060X.2012.15.038
    [11] 周立斌, 叶卫. 长臀胚胎发育的研究[J]. 水产科学, 2007, 26(1): 31-34. doi: 10.3969/j.issn.1003-1111.2007.01.007
    [12] 郁桐柄, 沈丽红. 长臀繁殖生物学初步研究[J]. 浙江海洋学院学报: 自然科学版, 2005, 25(3): 74-77. doi: 10.3969/j.issn.1008-830X.2005.03.016
    [13] 黄卫盛, 谢俊刚, 苏怡林, 等. 珠江长臀的生物学特性研究[J]. 水产科技, 2005(3): 36-37. http://lib.cqvip.com/Qikan/Article/Detail?id=20471511&from=Qikan_Search_Index
    [14] 石小涛, 陈求稳, 刘德富, 等. 胭脂鱼幼鱼的临界游泳速度[J]. 水生生物学报, 2012, 36(1): 133-136. doi: 10.3724/SP.J.1035.2012.00133
    [15] 鲜雪梅, 曹振东, 付世建. 4种幼鱼临界游泳速度和运动耐受时间的比较[J]. 重庆师范大学学报: 自然科学版, 2010(4): 16-20. doi: 10.3969/J.ISSN.1672-6693.2010.04.005
    [16]

    ZENG L, CAO Z, FU S, et al. Effect of temperature on swimming performance in juvenile southern catfish (Silurus meridionalis)[J]. Comp Biochem Physiol A, 2009, 153(2): 125-130. doi: 10.1016/j.cbpa.2009.01.013

    [17]

    HAMMER C. Fatigue and exercise tests with fish[J]. Comp Biochem Physiol A, 1995, 112(1): 1-20. doi: 10.1016/0300-9629(95)00060-K

    [18]

    YEH M, HO C, LEE M. Burst swimming speeds of two minnows Acrossocheilus paradoxus and Varicorhinus barbatulus in relation to water temperature and body size[J]. J Fish Soc Taiwan, 2010, 37(1): 49-63. https://www.researchgate.net/publication/268813499_Effects_of_endurance_swimming_on_the_growth_of_0-_and_1-age_group_of_whiting_Merlangius_merlangus_Gadidae

    [19]

    HAMMER C. Effects of endurance swimming on the growth of 0-age and 1-age group of whiting, Merlangius merlangus, Gadidae[J]. Arch Fish Mar Res, 1994, 42(2): 105-122. https://www.researchgate.net/publication/268813499_Effects_of_endurance_swimming_on_the_growth_of_0-_and_1-age_group_of_whiting_Merlangius_merlangus_Gadidae

    [20]

    RYLAND J S. The swimming speeds of plaice larvae[J]. J Exp Biol, 1963, 40(2): 285-299. doi: 10.1242/jeb.40.2.285

    [21] 夏皮罗, 谈镐生. 形与流——漫谈阻力流体动力学[M]. 北京: 科学出版社, 1979: 73-75. http://www.irgrid.ac.cn/handle/1471x/522875?mode=full
    [22] 郑金秀, 韩德举, 胡望斌, 等. 与鱼道设计相关的鱼类游泳行为研究[J]. 水生态学杂志, 2010, 31(5): 104-110.
    [23]

    JOHNSON G D, GILL A C. Perches and their allies[M]. New York: Academic Press, 1995: 181-196.

    [24]

    DICKSON K A, DONLEY J M, SEPULVEDA C, et al. Effects of temperature on sustained swimming performance and swimming kinematics of the chub mackerel Scomber japonicus[J]. J Exp Biol, 2002, 205(7): 969-980. doi: 10.1242/jeb.205.7.969

    [25]

    MARTIN R M, WERTHEIMER A. Adult production of chinook salmon reared at different densities and released as two smolt sizes[J]. Prog Fish-Cult, 1989, 51(4): 194-200. doi: 10.1577/1548-8640(1989)051<0194:APOCSR>2.3.CO;2

    [26]

    BILTON H T, ALDERDICE D F, SCHNUTE J T. Influence of time and size at release of juvenile coho salmon (Oncorhynchus kisutch) on returns at maturity[J]. Can J Fish Aquat Sci, 1982, 39(3): 426-447. doi: 10.1139/f82-060

  • 期刊类型引用(1)

    1. 郝淑贤,韦丽娜,魏涯,黄卉,相欢,赵永强,岑剑伟,王迪,李来好. 发热包传热效果及其对冻干鱼肉复水品质的影响. 广东海洋大学学报. 2024(04): 139-146 . 百度学术

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出版历程
  • 收稿日期:  2013-11-12
  • 修回日期:  2013-12-13
  • 刊出日期:  2014-06-04

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