长心卡帕藻切段培养的初步研究

唐贤明, 王瑛睿, 刘翠, 陈傅晓, 尹艺, 刘涛

唐贤明, 王瑛睿, 刘翠, 陈傅晓, 尹艺, 刘涛. 长心卡帕藻切段培养的初步研究[J]. 南方水产科学, 2014, 10(2): 36-41. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.02.005
引用本文: 唐贤明, 王瑛睿, 刘翠, 陈傅晓, 尹艺, 刘涛. 长心卡帕藻切段培养的初步研究[J]. 南方水产科学, 2014, 10(2): 36-41. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.02.005
TANG Xianming, WANG Yingrui, LIU Cui, CHEN Fuxiao, YIN Yi, LIU Tao. Prelimary study of segment culture of Kappaphycus alvarezii[J]. South China Fisheries Science, 2014, 10(2): 36-41. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.02.005
Citation: TANG Xianming, WANG Yingrui, LIU Cui, CHEN Fuxiao, YIN Yi, LIU Tao. Prelimary study of segment culture of Kappaphycus alvarezii[J]. South China Fisheries Science, 2014, 10(2): 36-41. DOI: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.02.005

长心卡帕藻切段培养的初步研究

基金项目: 

海洋公益性行业科研专项经费项目 201405020

国家大学生创新性实验计划项目 1111010507

海南省科学事业费项目 11-20410-0015

广东省海洋重大项目 2010B020201015

中央高校基本科研业务费项目 201262003

详细信息
    作者简介:

    唐贤明(1979-),男,硕士,高级工程师,从事热带海水养殖技术研究。E-mail: hn.tangxm@aliyun.com

    通讯作者:

    刘涛(1975-),男,博士,副教授,从事海藻资源与遗传育种研究。E-mail: liutao@ouc.edu.cn

  • 中图分类号: S968.43

Prelimary study of segment culture of Kappaphycus alvarezii

  • 摘要:

    研究了长心卡帕藻(Kappaphycus alvarezii)外植体切段的适宜生长温度以及诱导温度、切断长度、切段方式(与藻体纵轴呈90°横切、与藻体纵轴呈45°斜切)等因子对芽发生的影响。结果显示,在试验范围内,长心卡帕藻外植体切段的适宜生长温度为15~25 ℃,最适温度为20 ℃。诱导温度、切断长度、切段方式3种因子对外植体切段的出芽效果都存在显著影响,且各因子交互影响差异极其显著(P < 0.01),较高的培养温度对于出芽具有明显的促进作用,25 ℃下试验组个体平均出芽数均高于20 ℃(P < 0.01);横切可促进外植体切段出芽,相同切段长度下,横切试验组个体平均出芽数均大于斜切试验组(P < 0.01);短切段有助于提高出芽的数量,在相同切段方式下,1 cm切段组个体平均出芽数显著优于3 cm和5 cm切段组(P < 0.01);25 ℃、1 cm、横切为长心卡帕藻最优出芽诱导条件,个体平均出芽数最高,达到平均1.50个。不同切段长度对芽的发生部位具有明显的影响,1 cm和3 cm切段组均为切面的髓部再生芽,而5 cm切段组则包括切面的髓部再生芽和非切面的皮层新生芽。

    Abstract:

    We discussed the effects of induction temperature, cutting length and cutting way (transected cutting and inclined cutting by 90 and 45 degree angles with algae body on the vertical axis, respectively) on growth and bud formation of Kappaphycus alvarezii explants. The results show that under the test conditions, the suitable growth temperature for K.alvarezii was 15~25 ℃, the optimum temperature was 20 ℃. The effects of induction temperature, cutting length and cutting way for bud formation of K.alvarezii explants were significant, and interaction among each factor was very significantly different (P < 0.01). The cultivation at higher temperature obviously promoted the budding, and the average number of buddings at 25 ℃ was more than that at 20 ℃(P < 0.01). Transected cutting promoted the budding of explants, and by the same cutting length, the average number of buddings in crosscutting group was more than that in inclined cutting group (P < 0.01). Short cutting helped to increase the number of buddings by the same cutting way, 1 cm group obtained significantly more buddings than 3 cm and 5 cm groups (P < 0.01). Besides, the individuals had the most average number of buddings in 1 cm group at 25 ℃ (average 1.50). Different cutting lengths had obvious effect on the budding position.The explants in 1 cm and 3 cm groups formed regeneration buds on the section area, while those in 5 cm group formed regeneration buds on the section area and newborn buds on the cortex.

  • 长心卡帕藻(Kappaphycus alvarezii)隶属于红藻门、红藻纲、杉藻目、红翎菜科、卡帕藻属[1],主要分布在热带和亚热带海区,因富含κ-卡拉胶,是国际主要栽培经济红藻之一,也是提取卡拉胶的主要原料。根据FAO统计,2010年全球长心卡帕藻(包括麒麟菜)养殖产量达到560×104 t[26],是产量最高的养殖种类。

    长心卡帕藻的苗种繁育和生长主要通过营养繁殖进行。因此,国内外学者已在长心卡帕藻外植体消毒[2]、生态型差异[3-6]、光合作用与生态效应[7-8]、原生质体与组织培养[9-12]、海区栽培[13-17]等方面开展了大量的研究工作。作为营养繁殖种类,长心卡帕藻的生长主要依赖于芽发生和分枝的生长,但在其生长方式方面,学者间存在着不同的认识。POLNE-FULLER和GIBOR[9]认为长心卡帕藻的类愈伤组织源于皮层细胞;DAWES和KOCH[10]则认为类愈伤组织可能起源于髓部细胞;ROBAINA等[11]重点研究了不同培养液与类愈伤组织形成及芽生长的影响;HAYASHI等[12]详细探讨了不同培养液以及不同植物生长调节剂对微繁殖体生长的影响。但迄今为止,在切段方式及培养条件对长心卡帕藻芽分生及生长状况方面尚未见报道。

    中国海南岛海区出现了栽培的异枝卡帕藻(K.striatum)大规模死亡事件以来,自2008年起先后从菲律宾、越南、印度尼西亚等国家新引进长心卡帕藻(绿色株型为主)进行试养,但苗种扩繁及度夏技术仍不成熟,养殖业仍然无法得到有效恢复。文章研究了长心卡帕藻外植体组织培养生长适宜温度,并且比较了温度条件、切段长度、切段方式等对再生芽生长的影响,以期为长心卡帕藻的种质保存及苗种快繁提供技术支持。

    长心卡帕藻由中国海洋大学大型海藻种质资源库提供(种质编号201103140),2011年3月采集于海南省陵水县黎安港(18.38°N,110.46°E)。

    选择颜色正常、无腐烂、生长旺盛的植株,清理藻体表面污泥及杂藻,经0.01%氯化汞(HgCl2)处理15 s,无菌海水冲洗干净;在生物安全柜中进行无菌切段处理。

    选取5 cm切段放置于500 mL锥形瓶中培养,加入500 mL培养液。培养液为煮沸消毒的天然海水,硝酸钠(NaNO3)24.3 mg · L-1,磷酸二氧钾(KH2PO4)1.75 mg · L-1。光照强度62.5 μmol·(m2 · s)-1,光照周期12 h∶ 12 h。培养温度设置为(10±1)℃、(15±1)℃、(20±1)℃、(25±1)℃和(30±1)℃ 5组,每组设置5个平行。分别称量培养前和培养后(10 d后)切段鲜质量。

    分别以1 cm、3 cm和5 cm作为切段长度,芽诱导温度设置为(20±1)℃和(25±1)℃;分别沿藻体纵轴进行横切(90°)和斜切(45°);对5 cm切段,增设剥除3 mm×5 mm大小的2片皮层试验组。

    每试验组切段为20株,培养条件同1.3。每7 d更换培养液,每2 d观察并记录出芽位置及数量。

    增重率(%)=(最终鲜质量-初始鲜质量)/初始鲜质量×100

    个体平均出芽数(个)=出芽总数/切段总数

    出芽率(%)=100×已出芽个体数/总个体数

    试验数据利用SPSS 13.0软件进行均值计算和方差分析。

    试验范围内,长心卡帕藻外植体切段生长适温为15~25 ℃,平均增重率为2.48 %~14.90 %;外植体切段最适生长温度为20 ℃,平均增重率为14.90%,且与其余各试验组差异极其显著(表 1),鲜质量倍增时间约为47 d[log(1+0.0149)2=46.9]。

    表  1  长心卡帕藻切段在不同温度下培养10 d后的鲜质量增长变化
    Table  1.  Weight gain of K.alvarezii cultured for 10 d at different temperatures
    温度/℃ temperature 初始鲜质量/g initial weight 最终鲜质量/g final weight 平均增重率/% average weight gain rate
    10 0.35±0.26 0.34±0.25 -1.88±1.43
    15 0.42±0.15 0.43±0.15 2.48±0.94
    20 0.40±0.02 0.46±0.03 14.90±1.12b
    25 0.43±0.02 0.48±0.03 10.83±0.71a
    30 0.23±0.03 0.20±0.02 -9.44±1.33a
    注:a. 差异显著(P < 0.05);b. 差异极显著(P < 0.01);后表同此
    Note:a. significant difference (P < 0.05);b. very significant difference(P < 0.01). The same case in the following tables.
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    诱导温度、切段长度和切段方式对长心卡帕藻外植体切段的出芽均存在着显著影响,且各因素交互影响极其显著(P < 0.01)(表 2)。培养27 d后,25 ℃下的各试验组出芽数量均显著高于20 ℃试验组(P < 0.01)(图 1-a),较高的培养温度对于长心卡帕藻外植体切段出芽具有明显的促进作用。试验范围内,25 ℃、1 cm、横切试验组个体平均出芽数最高(1.50个),为长心卡帕藻最优的出芽诱导条件。

    表  2  长心卡帕藻培养27 d发芽情况统计
    Table  2.  Statistics of germination of K.alvarezii cultured for 27 d
    编号 No. 温度/℃ temperature 切段方式 cutting way 切段长度/cm cutting length 个体数/个 number of individuals 发芽率/%g ermination rate 个体平均出芽数/个 average number of buddings
    1 25 横切 1.0 20 100 1.50±0.05 b
    2 25 横切 3.0 20 100 1.40±0.04 b
    3 25 横切 5.0 20 100 1.10±0.04 b
    4 25 斜切 1.0 20 100 1.35±0.05 b
    5 25 斜切 3.0 20 50 0.50±0.05
    6 25 斜切 5.0 20 40 0.90±0.10 b
    7 20 横切 1.0 20 85 1.30±0.06 b
    8 20 横切 3.0 20 30 0.30±0.04 b
    9 20 横切 5.0 20 40 1.00±0.12 b
    10 20 斜切 1.0 20 40 0.40±0.04 b
    11 20 斜切 3.0 20 20 0.20±0.03 b
    12 20 斜切 5.0 20 40 0.50±0.06
    13 25 横切去皮层 5.0 20 30 0.80±0.11 b
    14 20 横切去皮层 5.0 20 30 0.50±0.07
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    图  1  不同温度(a)和切段方式(b)对长心卡帕藻个体出芽率的影响(27 d)
    Figure  1.  Effect of different temperatures (a) and cutting ways(b)on growth of K.alvarezii (27 d)

    25℃下不同切段方式的出芽率和出芽数量结果见表 2。横切试验组发芽率均为100%,个体平均出芽数为1.10~1.50个;而斜切试验组中1 cm切段发芽率和个体平均出芽数最高,分别为100%和1.35个。试验结果显示,25 ℃培养、相同切段长度的横切试验组平均个体出芽数均大于斜切试验组(P < 0.01),表明横切方式有利于促进长心卡帕藻外植体切段出芽(图 1-b)。

    在相同的切段方式下,1 cm切段组个体平均出芽数极其显著优于3 cm组和5 cm组(P < 0.01),表明短切段有助于提高长心卡帕藻外植体出芽的数量。

    25 ℃、1 cm的横切试验组(图 2),培养第15天开始出芽,第23天发芽率已经达到100%;个体平均出芽数于培养第29天达到最大值(1.60个),但在培养第23天时出现了缓慢增长趋势;相对而言,略低于YUNQUE等[2]的研究结果,其认为25 ℃、pH=8.7出芽数量最多,个体平均出芽数约为1.80个,并且在培养第19天开始出芽。

    图  2  长心卡帕藻的个体平均出芽数和发芽率(25 ℃,1 cm横切条件下培养29 d)
    Figure  2.  Average number of buddings and germination rate of K.alvarezii (25 ℃, 1 cm transected cutting, cultured for 29 d)

    长心卡帕藻外植体切段出芽方式主要包括了2种方式:1)位于切面的再生芽; 2)非切面发生的新生芽(图 3)。试验结果显示,切段长度是影响出芽方式的主要因素(表 3),1 cm和3 cm切段组均为切面的再生芽,而5 cm切段组则包括了再生芽和新生芽。

    表  3  横切处理组再生芽与新生芽数比较
    Table  3.  Comparison of regeneration bud and newborn bud in transection group
    切段长度/cm cutting length 再生芽/个 regeneration bud 新生芽/个 newborn bud
    1 27.0±1.4 a 0
    3 14.5±12.0 0
    5 1.5±0.7 11.0±8.5
    去皮层(5 cm)decortication 1.0±0.0 12.0±4.2
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    图  3  长心卡帕藻切段培养试验结果(27 d)
    a. 25 ℃, 1 cm横切;b. 25 ℃,1 cm斜切;c. 25 ℃,3 cm横切;d. 25 ℃,3 cm斜切;e. 20 ℃,5 cm横切;f. 25 ℃,去皮层处理
    Figure  3.  Results of segment culture of K.alvarezii (27 d)
    a. 25 ℃, 1 cm transected cutting; b. 25 ℃, 1 cm inclined cutting; c. 25 ℃, 3 cm transected cutting; d. 25 ℃, 3 cm inclined cutting; e.20 ℃, 5 cm transected cutting; f. 25 ℃, cortex cutting

    对比5 cm切段试验组中剥除部分皮层对切段出芽的影响(表 2),其明显抑制了切段的总体出芽数量(P < 0.01)。因此,保留皮层有助于提高出芽数量。在出芽方式上,剥除部分皮层则有助于促进新生芽的发生(表 3)。但是剥除部分皮层明显阻碍了个体出芽,未去皮层组的个体平均出芽数远高于去皮层组(图 4)。

    图  4  剥除局部皮层对长心卡帕藻平均个体出芽数的影响(27 d)
    Figure  4.  Effect of different decortications on average number of buddings of K.alvarezii cultured for 27 d

    长心卡帕藻的温度生长表现出明显的热带海藻的生物学特性。在笔者试验范围内,其生长适宜温度为15~25 ℃。不同的环境条件对长心卡帕藻的生长具有明显的影响。长心卡帕藻的营养生长包括了出芽和芽的生长、分枝直径的增长。而环境决定了长心卡帕藻生长速度,尤其是室外培养生长率远高于室内培养,在之前的研究中,紫外线过滤、中盐[19]、高温、短的培养周期、浅水海域及低密度栽植等条件可显著促进长心卡帕藻生长,最高日生长速率可达7.27% ·d-1[14-5, 17, 20-21]。相对而言,在室内培养中,出芽数量和芽的生长是决定长心卡帕藻生长的主要因素。在笔者试验中,20 ℃培养长心卡帕藻切段10 d的增重率最高(达14.90%),远高于赵素芬和何培民[18]的1.05% · d-1的试验结果,显示出此试验建立的切段培养体系对外植体切段营养繁殖具有良好的促进作用。

    此试验条件下,长心卡帕藻外植体切段培养最适出芽温度为25 ℃,其中1 cm、横切试验组个体平均出芽数最高(1.50个),为最优的出芽诱导条件。在对比温度、切段长度以及横切和斜切2种切段方式等不同条件来看,诱导温度、切段长度和切段方式均对出芽存在着显著影响。25 ℃较20 ℃可促进切段的出芽,与YUNQUE等[2]的研究结果一致。相对而言,切段长度较切段方式对出芽率和出芽数量的影响更为明显,短的切段(1 cm)以及横切(与藻体纵轴呈90°)有助于芽的发生。较长的切段(5 cm)抑制了横切面的再生芽发生数量,出芽部位主要集中在非切面的围周部皮层,并且显著促进了新生芽的发生。剥除部分皮层组织切段的培养结果显示,新生芽的比例远高于再生芽,而再生芽的发生可能主要源于髓部组织的分化,这与DAWES和KOCH[10]的观点相同,但其再生能力弱于皮层分生的新生芽。长心卡帕藻养殖主要是利用其良好的营养繁殖能力,以分枝方式进行吊养。因此,其生长方式主要是依靠新生芽的分化和生长来实现。而对于组织快繁苗种培养而言,根据笔者试验的结果,则应选择较短的组织切段来实现,提高其髓部再生芽的分生。在试验中增加髓部切面面积(斜切)并未明显的增加再生芽的数量,主要的原因可能在于切面细胞整体分化能力,而并非是由于切面细胞数量变化引起。关于再生芽的发生,有学者认为是由于皮层细胞或者是髓部细胞发生的类愈伤组织进一步分化[9-10],而类愈伤组织分化部位的不同可能是培养基渗透压和琼脂含量的差异导致;但同时也有学者认为与琼脂含量无关[22];在类愈伤组织分化包括了纤维状类愈伤组织或致密型类愈伤组织2种类型[9, 23-25],而精胺处理则可提高类愈伤组织诱导效率。普遍认为纤维状类愈伤组织与再生芽的发生具有密切的联系,而笔者试验条件中再生芽发生试验结果显示,长心卡帕藻外植体切段大小及方式也与类愈伤组织分化具有明显的关系,进一步优化培养条件、促进再生芽的发生效率将对于长心卡帕藻组织快繁具有重要的现实意义。

    最近的5年中,长心卡帕藻养殖业在亚洲东南部国家以及非洲坦桑尼亚的蓬勃发展,使之包括麒麟菜在内的养殖产量已超过了海带,成为全球最大宗的水生植物种类[26]。其产品除了可以作为海洋蔬菜食品外,还可以作为鲍养殖饵料,尤其是作为卡拉胶提取原料得到了广泛应用。依赖于营养繁殖进行种苗繁育,毫无疑问将占据大量的养殖环境,尤其是对于中国而言,适宜进行苗种繁育度夏的海域仍主要集中在海南三亚周边,受到养殖环境空间、蓝子鱼害以及多数海域夏季台风影响强烈等限制,最近5年中国长心卡帕藻养殖苗种完全依赖于海南省陵水县黎安港海域,苗种繁育规模十分有限。如何快速获得大量长心卡帕藻苗种,将是中国当前和未来长心卡帕藻养殖业发展的主要技术瓶颈。笔者通过试验研究,揭示了长心卡帕藻切段生长的环境及藻体处理方法等主要影响因素。在培养过程中,控制培养温度和切段长度可有效地促进再生芽的发生,以提高长心卡帕藻的营养繁殖效率,从而快速获得大量长心卡帕藻苗种。

  • 图  1   不同温度(a)和切段方式(b)对长心卡帕藻个体出芽率的影响(27 d)

    Figure  1.   Effect of different temperatures (a) and cutting ways(b)on growth of K.alvarezii (27 d)

    图  2   长心卡帕藻的个体平均出芽数和发芽率(25 ℃,1 cm横切条件下培养29 d)

    Figure  2.   Average number of buddings and germination rate of K.alvarezii (25 ℃, 1 cm transected cutting, cultured for 29 d)

    图  3   长心卡帕藻切段培养试验结果(27 d)

    a. 25 ℃, 1 cm横切;b. 25 ℃,1 cm斜切;c. 25 ℃,3 cm横切;d. 25 ℃,3 cm斜切;e. 20 ℃,5 cm横切;f. 25 ℃,去皮层处理

    Figure  3.   Results of segment culture of K.alvarezii (27 d)

    a. 25 ℃, 1 cm transected cutting; b. 25 ℃, 1 cm inclined cutting; c. 25 ℃, 3 cm transected cutting; d. 25 ℃, 3 cm inclined cutting; e.20 ℃, 5 cm transected cutting; f. 25 ℃, cortex cutting

    图  4   剥除局部皮层对长心卡帕藻平均个体出芽数的影响(27 d)

    Figure  4.   Effect of different decortications on average number of buddings of K.alvarezii cultured for 27 d

    表  1   长心卡帕藻切段在不同温度下培养10 d后的鲜质量增长变化

    Table  1   Weight gain of K.alvarezii cultured for 10 d at different temperatures

    温度/℃ temperature 初始鲜质量/g initial weight 最终鲜质量/g final weight 平均增重率/% average weight gain rate
    10 0.35±0.26 0.34±0.25 -1.88±1.43
    15 0.42±0.15 0.43±0.15 2.48±0.94
    20 0.40±0.02 0.46±0.03 14.90±1.12b
    25 0.43±0.02 0.48±0.03 10.83±0.71a
    30 0.23±0.03 0.20±0.02 -9.44±1.33a
    注:a. 差异显著(P < 0.05);b. 差异极显著(P < 0.01);后表同此
    Note:a. significant difference (P < 0.05);b. very significant difference(P < 0.01). The same case in the following tables.
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    表  2   长心卡帕藻培养27 d发芽情况统计

    Table  2   Statistics of germination of K.alvarezii cultured for 27 d

    编号 No. 温度/℃ temperature 切段方式 cutting way 切段长度/cm cutting length 个体数/个 number of individuals 发芽率/%g ermination rate 个体平均出芽数/个 average number of buddings
    1 25 横切 1.0 20 100 1.50±0.05 b
    2 25 横切 3.0 20 100 1.40±0.04 b
    3 25 横切 5.0 20 100 1.10±0.04 b
    4 25 斜切 1.0 20 100 1.35±0.05 b
    5 25 斜切 3.0 20 50 0.50±0.05
    6 25 斜切 5.0 20 40 0.90±0.10 b
    7 20 横切 1.0 20 85 1.30±0.06 b
    8 20 横切 3.0 20 30 0.30±0.04 b
    9 20 横切 5.0 20 40 1.00±0.12 b
    10 20 斜切 1.0 20 40 0.40±0.04 b
    11 20 斜切 3.0 20 20 0.20±0.03 b
    12 20 斜切 5.0 20 40 0.50±0.06
    13 25 横切去皮层 5.0 20 30 0.80±0.11 b
    14 20 横切去皮层 5.0 20 30 0.50±0.07
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    表  3   横切处理组再生芽与新生芽数比较

    Table  3   Comparison of regeneration bud and newborn bud in transection group

    切段长度/cm cutting length 再生芽/个 regeneration bud 新生芽/个 newborn bud
    1 27.0±1.4 a 0
    3 14.5±12.0 0
    5 1.5±0.7 11.0±8.5
    去皮层(5 cm)decortication 1.0±0.0 12.0±4.2
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  • [1] 匡梅, 曾呈奎, 夏邦美. 中国麒麟菜族的分类研究[J]. 海洋科学集刊, 1999, 10(41): 168-236.
    [2]

    YUNQUE D A T, TIBUBOS K R, HURTADO A Q, et al. Optimization of culture conditions for tissue culture production of young plantlets of carrageenophyte Kappaphycus [J]. J Appl Phycol, 2011, 23(3): 433-438. doi: 10.1007/s10811-010-9594-7

    [3]

    DAWES C J, LLUISMA A O, TRONO G C. Laboratory and field growth studies of commercial strains of Eucheuma denticulatum and Kappaphycus alvarezii in the Philippines[J]. J Appl Phycol, 1994, 6(1): 21-24. doi: 10.1007/BF02185899

    [4]

    HAYASHI L, DE PAULA E J D, CHOW F. Growth rate and carrageenan analysis in four strains of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales) farmed in the subtropical waters of São Paulo State, Brazil[J]. J Appl Phycol, 2007, 19(5): 393-399. doi: 10.1007/s10811-006-9135-6

    [5]

    AGUIRRE-VON-WOBESER E, FIGUREOA F L, CABELLO-PASINI A. Photosynthesis and growth of red and green morphotypes of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta) from the Philippines[J]. Mar Biol, 2001, 138(4): 679-686. doi: 10.1007/s002270000506

    [6]

    HUNG L D, HORI K, NANG H Q, et al. Seasonal changes in growth rate, carrageenan yield and lectin content in the red alga Kappaphycus alvarezii cultivated in Camranh Bay, Vietnam[J]. J Appl Phycol, 2009, 21(3): 265-272. doi: 10.1007/s10811-008-9360-2

    [7]

    SCHMIDT É C, NUNES B G, MARASCHIN M, et al. Effect of ultraviolet-B radiation on growth, photosynthetic pigments, and cell biology of Kappaphycus alvarezii(Rhodophyta, Gigartinales) macroalgae brown strain[J]. Photosynthetica, 2010, 48(2): 161-172. doi: 10.1007/s11099-010-0022-7

    [8] 黄园, 刘建国, 庞通, 等. 盐度降低对长心卡帕藻原初光化学反应的影响[J]. 海洋学报, 2010, 32(3): 146-152. https://xueshu.baidu.com/usercenter/paper/show?paperid=65397d5b6c3410ab510112eae0788f5a&site=xueshu_se&hitarticle=1
    [9]

    POLNE-FULLER M, GIBOR A. Calluses and callus-like growth in seaweeds: induction and culture[J]. Hydrobiologia, 1987, 151/152(1): 131-138. doi: 10.1007/BF00046118

    [10]

    DAWES C J, KOCH E W. Branch, micropropagule and tissue culture of the red alga Eucheuma denticulatum and Kappaphycus alvarezii farmed in the Philippines[J]. J Appl Phycol, 1991, 3(3): 247-257. doi: 10.1007/BF00003583

    [11]

    ROBAINA R R, GARCÍA-JIMENEZ P, LUQUE A. The growth pattern and structure of callus from the red alga Laurencia sp. (Rhodophyta, Ceramiales) compared to shoot regeneration[J]. Botanica Marina, 1992, 35(4): 267-272. doi: 10.1515/botm.1992.35.4.267

    [12]

    HAYASHI L, YOKOYA N S, KIKUCHI D M, et al. Callus induction and micropropagation improved by colchicine and phytoregulators in Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Solieriaceae)[J]. J Appl Phycol, 2008, 20(5): 653-659. doi: 10.1007/s10811-007-9234-z

    [13] 郑国洪. 浅海浮筏式养殖长心麒麟菜技术[J]. 中国水产, 2006(11): 58-59. doi: 10.3969/j.issn.1002-6681.2006.11.035
    [14]

    HURTADO A Q, CRITCHLEY A T, TRESPOEY A, et al. Growth and carrageenan quality of Kappaphycus striatum var. sacol grown at different stocking densities, duration of culture and depth[J]. J Appl Phycol, 2008, 20(5): 101-105. doi: 10.1007/s10811-008-9339-z

    [15]

    HAYASHI L, SANTOS A A, FARIA G S M, et al. Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Areschougiaceae)cultivated in subtropical waters in southern Brazil[J]. J Appl Phycol, 2011, 23(3): 337-343. doi: 10.1007/s10811-010-9543-5

    [16]

    LUHAN M R J, SOLLESTA H. Growing the reproductive cells (carpospores) of the seaweed, Kappaphycus striatum, in the laboratory until outplanting in the field and maturation to tetrasporophyte[J]. J Appl Phycol, 2010, 22(5): 579-585. doi: 10.1007/s10811-009-9497-7

    [17]

    DE GÓES H G, REIS R P. An initial comparison of tubular netting versus tie-tie methods of cultivation for Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Solieriaceae) on the south coast of Rio de Janeiro State, Brazil[J]. J Appl Phycol, 2011, 23(3): 607-613. doi: 10.1007/s10811-010-9647-y

    [18] 赵素芬, 何培民. 光照强度和盐度对长心卡帕藻生长的影响[J]. 热带海洋学报, 2009, 28(1): 74-79. doi: 10.3969/j.issn.1009-5470.2009.01.012
    [19]

    HAYASHI L, FARIA G S M, NUNES B G, et al. Effects of salinity on the growth rate, carrageenan yield, and cellular structure of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Gigartinales) cultured in vitro[J]. J Appl Phycol, 2011, 23(3): 439-447. doi: 10.1007/s10811-010-9595-6

    [20]

    OHNO M, NANG H Q, HIRASE S. Cultivation and carrageenan yield and quality of Kappaphycus alvarezii in the waters of Vietnam[J]. J Appl Phycol, 1996, 8(4/5): 431-437. doi: 10.1007/BF02178588

    [21]

    HAYASHI L, OLIVEIRA E C, BLEICHER-LHONNEUR G, et al. The effects of selected cultivation conditions on the carrageenan characteristics of Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Solieriaceae) in Ubatuba Bay, São Paulo, Brazil[J]. J Appl Phycol, 2007, 19(5): 505-511. doi: 10.1007/s10811-007-9163-x

    [22]

    REDDY C R K, RAJA K K G, SIDDHANTA K, et al. In vitro somatic embryogenesis and regeneration of somatic embryos from pigmented callus of Kappaphycus alvarezii (Doty) Doty (Rhodophyta, Gigartinales)[J]. J Phycol, 2003, 39(3): 610-616. doi: 10.1046/j.1529-8817.2003.02092.x

    [23]

    HURTADO A Q, YUNQUE D A, TIBUBOS K, et al. Use of Acadian marine plant extract powder from Ascophyllum nodosum in tissue culture of Kappaphycus varieties[J]. J Appl Phycol, 2009, 21(5): 633-639. doi: 10.1007/s10811-008-9395-4

    [24]

    MUÑOZ J, CAHUE-LÓPEZ A C, PATIÑO R, et al. Use of plant growth regulators in micropropagation of Kappaphycus alvarezii (Doty) in airlift bioreactors[J]. J Appl Phycol, 2006, 18(5): 209-218. doi: 10.1007/s10811-006-9105-z

    [25]

    HAYASHI L, YOKOYA N S, KIKUCHI D M, et al. Callus induction and micropropagation improved by colchicine and phytoregulators in Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Solieriaceae)[J]. J Appl Phycol, 2008, 20(5): 653-659. doi: 10.1007/s10811-007-9234-z

    [26] FAO. 2012年世界渔业与水产养殖状况[R]. 罗马: FAO, 2012. https://openknowledge.fao.org/server/api/core/bitstreams/1540a443-d983-4415-9d2f-9dc640909691/content/i2727c02.pdf
  • 期刊类型引用(8)

    1. 蒋湘,詹棋芳,许乐乐,梁金荣,连丽森,陈道海,王锂韫. 光照强度与pH对卤虫卵(Artemia cysts)孵化率影响的响应面法分析. 饲料工业. 2023(09): 107-112 . 百度学术
    2. 窦乾明,黄晓丽,王乐,都雪,宋聃,王慧博,赵晨,霍堂斌. 艾比湖卤虫休眠卵孵化率的影响因素分析. 湿地科学. 2022(02): 216-223 . 百度学术
    3. 蒋湘,魏亦彤,许乐乐,吕美霞,朱文燕,王锂韫,陈道海. 光照强度、温度及海水类型对卤虫(Artemia saline)卵孵化率和幼体存活率的影响. 水产科技情报. 2021(04): 197-202 . 百度学术
    4. 潘正军,朱传坤,许虹,常国亮,丁怀宇,王辉. 温度、盐度对西藏卤虫卵孵化率的影响. 水产养殖. 2017(10): 24-27 . 百度学术
    5. 黄卉,杨丽芝,杨贤庆,李来好,郝淑贤,魏涯,王锦旭. 南海鸢乌贼墨汁多糖分离纯化及组分分析. 食品科学. 2017(24): 118-123 . 百度学术
    6. 赵品,林婉玲,郝淑贤,李来好,杨贤庆. 响应面法优化糟醉鲟鱼湿腌工艺. 食品与发酵工业. 2016(06): 135-140 . 百度学术
    7. 杨丽芝,杨贤庆,黄卉,李来好,邓建朝,赵永强,杨少玲. 响应面法优化南海鸢乌贼墨汁多糖提取工艺. 食品工业科技. 2016(18): 292-296 . 百度学术
    8. 吴骏,孙龙生,安振华,陈佳毅,杨家威. 卤虫卵孵化条件的优化. 水产养殖. 2015(10): 48-52 . 百度学术

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出版历程
  • 收稿日期:  2013-09-09
  • 修回日期:  2013-12-01
  • 刊出日期:  2014-04-04

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