Rapid residue determination of malachite green, crystal violet and their metabolites in aquatic products by UPLC-MS/MS
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摘要:
建立了超高效液相色谱-串联质谱(UPLC-MS/MS)测定水产品中孔雀石绿(MG)、结晶紫(CV)及其代谢物隐色孔雀石绿(LMG)和隐色结晶紫(LCV)残留量的快速、准确检测方法。该法在SN/T 1768-2006快速检测方法的基础上,采用空白样品添加不同质量浓度标准溶液的方式绘制校准曲线,并以氘代孔雀石绿(D5-MG)和氘代隐色孔雀石绿(D6-LMG)为内标进行检测,从而大大提高了定量的准确性。结果表明,MG、CV、LMG和LCV 4种待测物在0~10.0 ng · mL-1范围内线性关系良好(R>0.99),方法检出限均为0.1 μg · kg-1。在加标量为0.5和1.0 μg · kg-1水平下4种待测物平均回收率在92.1%~111.0%之间,测定结果的相对标准偏差为2.2%~9.5%。此外,该法在FAPAS国际能力验证中得以证实,改进后的方法快速且准确,能满足水产品出口检测要求。
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关键词:
- 超高效液相色谱-串联质谱 /
- 孔雀石绿 /
- 结晶紫 /
- 代谢物 /
- 水产品
Abstract:We developed a rapid and accurate method by UPLC-MS/MS to determine the residue of malachite green (MG), crystal violet (CV) and their metabolites (LMG and LCV) in aquatic products. Based on the rapid method of SN/T 1768-2006, standard curves were made by adding standard solutions of different concentrations to the blank samples, and D5-MG and D6-LMG were used as internal standards, which improved the accuracy of determination. The results show that MG, CV, LMG and LCV have a good linear correlation within the range of 0~10.0 ng · mL-1 (R > 0.99), and the detection limits of the method are all 0.1 μg · kg-1. The average recoveries at fortification of 0.5 and 1.0 μg · kg-1 range from 92.1%to 111.0% with relative standard deviations (RSD)varying from 2.2% to 9.5%. Furthermore, the rapid and accurate improved method is also proved by FAPAS Proficiency Test to meet the export testing requirements of aquatic products.
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Keywords:
- UPLC-MS/MS /
- malachite green /
- crystal violet /
- metabolite /
- aquatic products
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孔雀石绿(MG)和结晶紫(CV)是一类三苯甲烷类染料,最先应用在纺织工艺,因其具有消毒和杀菌作用而被广泛应用于水产品的养殖过程中。由于MG和CV具有高毒、高残留和致癌、致畸、致突变等特点,当其进入生物体内,会产生具有更强危害的隐色孔雀石绿(LMG)和隐色结晶紫(LCV),因此,包括中国在内的许多国家都将MG和CV列为水产养殖中的禁用药物[1-4]。然而,由于MG和CV具有价格低廉、效果显著等优点,其在水产养殖中的使用屡禁不止,这不但对人体健康造成威胁,而且严重影响了中国水产品的出口[5];因此,如何快速、准确地测定该类禁用药物、特别是其代谢物在水产品中的残留量,对于水产品出口企业非常重要。
目前国内外检测MG、CV、LMG和LCV的分析方法有气相色谱质谱法[6]、高效液相色谱法[7-11]和液相色谱-质谱法[12-16],同时国内检测此类药物的标准方法有GB/T 19857-2005[17]、GB/T 20361-2006[18]和SN/T 1768-2006[19]等。然而,上述方法不是检出限高达不到出口要求,就是检测方法繁琐,特别是存在前处理操作步骤多、耗时较长、费用高及检测过程使用大量有毒试剂等缺点,因此,笔者在应用SN/T 1768-2006检测方法的基础上,多次利用超高效液相色谱-串联质谱对水产品中MG、CV及其代谢物的残留量进行检测,总结了一些经验,并对方法中的一些环节进行了改进。改进后的方法在FAPAS国际能力验证中得以证实,该法快速、准确、灵敏度高,完全可以达到水产品出口检测的要求。
1. 材料与方法
1.1 仪器与试剂
超高效液相色谱-串联四极杆质谱仪(Waters公司出品);MASSLYNX 4.1质谱工作站软件;T10均质器(德国IKA公司出品);旋转蒸发仪(瑞士BUCHI公司出品);WH-3旋涡混合仪(上海沪西产);离心机(德国Beckman Coulter公司出品);CP224S电子分析天平(德国Sartorius公司出品);乙腈(Fisher色谱纯);试验用水为Milli-Q超纯水;乙酸铵(分析纯);标准品结晶紫盐酸盐购自Riedel-de公司(CV,纯度89.0%);孔雀石绿草酸盐(MG,纯度90.0%)、隐色孔雀石绿(LMG,纯度92.0%)、隐色结晶紫(LCV,纯度99.0%)及内标氘代隐色孔雀石绿(D6-LMG,纯度98.5%)均购自Dr. Ehrenstorfer公司;氘代孔雀石绿购自WITEGA公司(D5-MG,纯度99.0%);标准溶液:分别准确称取适量MG、CV、LMG、LCV、D5-MG和D6-LMG标准品,用乙腈分别配制成100 μg · mL-1的标准贮备液,-18 ℃避光保存。使用前,根据需要用初始流动相配制混合标准溶液,现配现用。试验样品为斑点叉尾
(Ictalurus punctatus),取其肌肉搅碎,于-18 ℃冰箱保存备用。1.2 液相色谱条件
色谱柱为ACQUITY UPLCTM BEH C18柱(2.1 mm×100 mm,1.7 μm);流动相:溶剂A为乙腈,溶剂B为5 mmol乙酸铵溶液(pH=4.5),梯度洗脱条件见表 1;样品室温度10 ℃;进样体积10 μL;流速0.3 mL · min-1。
表 1 梯度洗脱条件Table 1. Gradient elution conditionst/min ϕ(乙腈)/% acetonitrile ϕ(乙酸铵缓冲液)/% ammonium acetate buffer 曲线curve 0 60 40 - 8 90 10 6 10 60 40 1 1.3 质谱条件
电喷雾离子源ESI+;毛细管电压0.7 kV;离子源温度120 ℃;锥孔反吹气50 L · h-1;脱溶剂气温度350 ℃;脱溶剂气流量650 L · h-1。第一重四极杆和第二重四极杆的低端分辨率及高端分辨率均为13;碰撞气流量0.2 mL · min-1;锥孔电压和碰撞能量见表 2,检测方式为多反应监测(MRM)扫描模式。
表 2 MRM扫描模式的参数Table 2. MRM parameters待测物analyte 母离子/m/z parent ion 子离子/m/z daughter ion 锥孔电压/V cone voltage 碰撞能量/eV collision energy 孔雀石绿MG 329.10 208.00, 313.10* 65 36, 36 隐色孔雀石绿LMG 331.10 239.10*, 315.90 50 34, 22 结晶紫CV 372.10 340.10, 356.10* 75 50, 38 隐色结晶紫LCV 374.16 238.30, 358.20* 55 32, 30 氘代孔雀石绿D5-MG 334.10 318.10* 65 40 氘代隐色孔雀石绿D6-LMG 337.16 322.10* 50 22 注:*.定量离子
Note: *. quantitative ion1.4 样品处理
准确称取已搅碎的样品5.00 g于50 mL离心管中,加入适量D5-MG和D6-LMG内标混合标准溶液,使2种内标最终测定质量浓度为2 ng · mL-1(标准曲线的制作与样品处理同步,分别在空白样品中加入最终测定质量浓度为0、0.2、0.5、1.0、5.0和10 ng · mL-1的MG、CV、LMG和LCV标准溶液),加入孔雀石绿和结晶紫快速检测前处理试剂盒中的提取剂1(液体20.0 mL),用均质器以8 000 r · min-1的速度均质30 s,再加入提取剂2(固体粉末),振荡1 min,4 000 r · min-1离心5 min,取上清液4.0 mL于鸡心瓶中,40 ℃水浴减压旋转蒸干,加入2 mL初始流动相涡旋混合1 min,充分溶解残留物,0.22 μm滤膜过滤后,供上机测试。
2. 结果
2.1 LC-MS/MS分析
采用电喷雾离子源,正离子扫描模式,分别对MG、CV、LMG、LCV和D5-MG、D6-LMG监测其母离子和2个信号较强的子离子,以母离子和子离子组成监测离子对,以多反应监测模式对待测物进行定性和定量分析。该法完全满足欧盟2002/675/EC指令规定对于禁用药物的质谱确证方法需要4个确证点(IP)的要求(其中1个母离子1 IP和2个子离子2×1.5 IP),其中样品定量离子与定性离子的离子强度比不超过其标准系列相应的离子强度比均值的±20%作为定性确证的质量控制依据[20]。
在上述测定条件下,选择空白鱼肉加混合标准样品(0.5 μg · kg-1)进行测定,谱图见图 1。试验结果表明,MG、CV、LMG、LCV、D5-MG和D6-LMG保留时间分别为1.43、1.99、5.74、5.88、1.41和5.64 min。
2.2 标准曲线线性和检出限
用空白鱼肉样品作基质,加入最终测定质量浓度为0、0.2、0.5、1.0、5.0和10 ng · mL-1的MG、CV、LMG和LCV混合标准溶液(相当于样品中添加0、0.4、1.0、10.0和20.0 μg · kg-1的待测物),加入2 ng · mL-1的D5-MG和D6-LMG内标混合标准溶液,用HPLC-MS/MS进行测定。试验结果以标样质量浓度(ng · mL-1)为横坐标,以MG和CV(LMG、LCV)的标准峰面积与内标D5-MG(D6-LMG)的峰面积之比值为纵坐标制作标准曲线,线性回归方程和相关系数见表 3。以10倍信噪比计算检出限,MG、CV、LMG和LCV检出限均为0.1 μg · kg-1,满足水产品出口检测要求。
表 3 标准曲线线性回归方程及相关系数Table 3. Linear equations and correlation coefficients of standard curves待测物analyte 线性回归方程linear equation 相关系数correlation coefficient 孔雀石绿MG Y=0.7903X+0.0209 0.999 6 结晶紫CV Y=1.9924X+0.1134 0.996 0 隐色孔雀石绿LMG Y=1.0259X+0.0939 0.998 7 隐色结晶紫LCV Y=0.5141X-0.0075 0.999 7 2.3 回收率与精密度
对空白鱼肉样品在0.5和1.0 μg · kg-1 2个水平上进行加标回收试验(表 4)。试验结果表明, MG、CV、LMG和LCV的回收率在92.1%~111.0%之间,测定结果的相对标准偏差为2.2%~9.5%。
表 4 样品加标回收率及精密度(n=4)Table 4. Recovery and RSD of fortified samples待测物analyte 加标量/μg·kg-1 fortification level 平均回收率/% average recovery 精密度/% RSD 孔雀石绿MG 0.5 96.5 6.2 1.0 101.0 6.1 结晶紫CV 0.5 111.0 4.0 1.0 109.1 2.6 隐色孔雀石绿LMG 0.5 96.6 2.2 1.0 97.9 9.5 隐色结晶紫LCV 0.5 92.1 4.4 1.0 98.4 2.2 3. 讨论
3.1 方法选择及改进
目前,国内同时检测MG、CV及其代谢物的标准方法有GB/T 19857-2005和GB/T 20361-2006和SN/T 1768-2006等,但GB/T 19857-2005和GB/T 20361-2006存在检测方法繁琐,特别是前处理操作步骤多、耗时较长、费用高及检测过程使用大量有毒试剂等缺点,因此,笔者采用SN/T 1768-2006快速检测方法进行水产品出口检测。然而,由于待测物的不稳定性,完全采用SN/T 1768-2006方法检测,其MG和CV回收率偏低,而LMG和LCV回收率偏高,不能满足检测要求。该法在应用SN/T 1768-2006检测方法的基础上,采用空白样品添加不同质量浓度标准溶液的方式绘制校准曲线,以最大限度排除基体干扰。同时定量方法采用D5-MG和D6-LMG为内标进行内标法检测,降低由于前处理过程中目标化合物的损失所带来的偏差,从而提高定量的准确性,加标回收率稳定、重现性好,整个检测过程仅需30 min左右。
3.2 色谱条件的选择
研究采用了超高效液相色谱仪和1.7 μm填料的超高效液相色谱柱对样品进行分离,与传统的高效液相色谱柱相比,该法能更好地使待测物与抑制电离的基质分离,降低基质对质谱检测的影响,同时提高分离效率。对于电喷雾离子源正离子扫描模式,流动相在弱酸性环境条件下加入适量乙酸铵可以提高待测物离子化效率,因此,试验中采用乙腈和5 mmol乙酸铵溶液(pH=4.5)作为流动相体系,并且对流动相比例进行优化。结果显示,当乙腈和乙酸铵溶液初始比例为60︰40梯度洗脱条件下(表 1),待测物在6 min左右全部出峰,并且灵敏度高、分离效果好,满足检测要求。
3.3 样品溶液放置时间对检测结果的影响
由于MG、CV及其代谢物的不稳定性,文章研究了样品溶液放置时间对检测结果的影响。研究比较了4种待测物平均添加水平为3.0 μg · kg-1的鱼肉样品处理完后在10 ℃下避光放置0、30、60 min及6、12 h检测对回收率的影响。结果显示,MG和CV在研究时间内对放置时间影响较小,而LMG和LCV回收率随着放置时间的延长而呈下降趋势。与样品处理好后及时上机相比,LMG在放置30、60 min及6、12 h后检测的回收率分别下降了13%、24%、30%和34%,而LCV分别下降了10%、19%、25%和30%;因此,为了保证检测数据准确可靠,样品前处理时间不宜太长,样品处理完后应及时上机检测,可考虑对标准工作溶液和样品溶液进行穿插进样检测,特别是检测隐色代谢物。同时为了保证检测数据准确可靠,检测过程也应注意以下事项:1)整个检测过程要尽量避光,防止待测物降解;2)标准贮备液应在-18 ℃以下避光保存,有效期3个月,混合标准工作溶液应现配现用;3)待测样品应在-18 ℃以下避光保存,尽量避免样品的反复解冻;4)检测过程避免交叉污染,包括样品之间、样品与标准溶液之间等。
3.4 方法的验证
运用该法,2009年6月笔者参加了英国FAPAS(食品分析领域全球第一的国际评价体系)组织的鳗鱼中MG、CV质量分数的能力验证测试,MG、LMG、MG总量、CV、LCV和CV总量6项结果全部满意。结果表明,该法能够满足美国FDA对水产品MG、CV及其代谢物残留量检测的准确性和检出限的要求,且更加简单快速。
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表 1 梯度洗脱条件
Table 1 Gradient elution conditions
t/min ϕ(乙腈)/% acetonitrile ϕ(乙酸铵缓冲液)/% ammonium acetate buffer 曲线curve 0 60 40 - 8 90 10 6 10 60 40 1 表 2 MRM扫描模式的参数
Table 2 MRM parameters
待测物analyte 母离子/m/z parent ion 子离子/m/z daughter ion 锥孔电压/V cone voltage 碰撞能量/eV collision energy 孔雀石绿MG 329.10 208.00, 313.10* 65 36, 36 隐色孔雀石绿LMG 331.10 239.10*, 315.90 50 34, 22 结晶紫CV 372.10 340.10, 356.10* 75 50, 38 隐色结晶紫LCV 374.16 238.30, 358.20* 55 32, 30 氘代孔雀石绿D5-MG 334.10 318.10* 65 40 氘代隐色孔雀石绿D6-LMG 337.16 322.10* 50 22 注:*.定量离子
Note: *. quantitative ion表 3 标准曲线线性回归方程及相关系数
Table 3 Linear equations and correlation coefficients of standard curves
待测物analyte 线性回归方程linear equation 相关系数correlation coefficient 孔雀石绿MG Y=0.7903X+0.0209 0.999 6 结晶紫CV Y=1.9924X+0.1134 0.996 0 隐色孔雀石绿LMG Y=1.0259X+0.0939 0.998 7 隐色结晶紫LCV Y=0.5141X-0.0075 0.999 7 表 4 样品加标回收率及精密度(n=4)
Table 4 Recovery and RSD of fortified samples
待测物analyte 加标量/μg·kg-1 fortification level 平均回收率/% average recovery 精密度/% RSD 孔雀石绿MG 0.5 96.5 6.2 1.0 101.0 6.1 结晶紫CV 0.5 111.0 4.0 1.0 109.1 2.6 隐色孔雀石绿LMG 0.5 96.6 2.2 1.0 97.9 9.5 隐色结晶紫LCV 0.5 92.1 4.4 1.0 98.4 2.2 -
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