基于Cyt b基因序列的黄斑蓝子鱼群体遗传多样性分析

郑鹏, 李文俊, 陈锭娴, 黄小林, 王凯丰, 刘兰苑, 韩崇, 李强, 杨育凯, 黄忠

郑鹏, 李文俊, 陈锭娴, 黄小林, 王凯丰, 刘兰苑, 韩崇, 李强, 杨育凯, 黄忠. 基于Cyt b基因序列的黄斑蓝子鱼群体遗传多样性分析[J]. 南方水产科学. DOI: 10.12131/20240289
引用本文: 郑鹏, 李文俊, 陈锭娴, 黄小林, 王凯丰, 刘兰苑, 韩崇, 李强, 杨育凯, 黄忠. 基于Cyt b基因序列的黄斑蓝子鱼群体遗传多样性分析[J]. 南方水产科学. DOI: 10.12131/20240289
ZHENG Peng, LI Wenjun, CHEN Dingxian, HUANG Xiaolin, WANG Kaifeng, LIU Lanyuan, HAN Chong, LI Qiang, YANG Yukai, HUANG Zhong. Genetic diversity analysis among Siganus oramin populations from coastal sea of southeast China based on mitochondrial genome Cyt b gene sequence[J]. South China Fisheries Science. DOI: 10.12131/20240289
Citation: ZHENG Peng, LI Wenjun, CHEN Dingxian, HUANG Xiaolin, WANG Kaifeng, LIU Lanyuan, HAN Chong, LI Qiang, YANG Yukai, HUANG Zhong. Genetic diversity analysis among Siganus oramin populations from coastal sea of southeast China based on mitochondrial genome Cyt b gene sequence[J]. South China Fisheries Science. DOI: 10.12131/20240289

基于Cyt b基因序列的黄斑蓝子鱼群体遗传多样性分析

基金项目: 

海南省自然科学基金项目 (321QN0942);中国水产科学研究院中央级公益性科研院所基本科研业务费专项资金资助(2023TD21)

详细信息
    作者简介:

    郑 鹏 (2003—),男,本科生,研究方向为鱼类繁育与亲缘地理。E-mail: Zp3209195542@163.com

    通讯作者:

    黄小林 (1987—),男,高级工程师,硕士,研究方向为海水鱼类繁育与种质资源。E-mail: 499324782@qq.com

  • 中图分类号: S 917.4

Genetic diversity analysis among Siganus oramin populations from coastal sea of southeast China based on mitochondrial genome Cyt b gene sequence

  • 摘要:

    黄斑蓝子鱼 (Siganus oramin) 养殖群体已出现经济性状衰退和遗传多样性下降问题。为保护野生种质资源,对采自中国东南沿海7个地理群体 (湛江北部湾BB、海南文昌WC、阳江沙扒湾SB、深圳大鹏湾DP、深圳大亚湾DY、漳州东山湾DS和宁德三沙湾SS)的197尾样本进行线粒体Cyt b基因测序分析,旨在评估野生群体的遗传多样性状况。结果显示,黄斑蓝子鱼的线粒体Cyt b基因全序列长度为1 141 bp,包含140个变异位点,81个单倍型,表现出高单倍型多样性 (Hd=0.921±0.014) 和低核苷酸多样性 (Pi=0.006 4±0.001 0) 的特点。遗传距离和遗传分化结果均显示黄斑蓝子鱼群体间未发生明显分化,各地理群体亲缘关系较近。基于Cyt b基因序列构建的NJ树显示,81个单倍型散落分布在一个支系,各群体均未形成明显单系群。单倍型网络分析结果亦表明不同地理区的黄斑蓝子鱼群体间未发生明显分化。AMOVA分析表明,黄斑蓝子鱼遗传分化主要来自群体内部 (99.83%)。中性检验结果显示,Fu's Fs值为显著的负值 (−24.605, p<0.05);贝叶斯天际线图表明黄斑蓝子鱼短时间内经历了瓶颈效应以及种群扩张事件,推测其扩张时间约为1.577万年前。

    Abstract:

    The cultured populations of Siganus oramin have shown declining economic traits and reduced genetic diversity. To conserve wild germplasm resources, we analyzed mitochondrial Cyt b gene sequences from 197 specimens collected from seven geographic populations along China's southeastern coast (Beibu Gulf-Zhanjiang BB, Wenchang-Hainan WC, Shaba Bay-Yangjiang SB, Dapeng Bay-Shenzhen DP, Daya Bay-Shenzhen DY, Dongshan Bay-Zhangzhou DS, and Sansha Bay-Ningde SS),aiming to assess the genetic diversity status of wild populations.The Cyt b gene sequence was 1 141 base pairs in length, containing 140 variable sites and defining 81 haplotypes. The overall haplotype diversity was 0.921±0.014, and the nucleotide diversity was 0.006 4±0.001 0. The genetic distance and differentiation indexes showed no significant genetic differentiation among the seven populations, and both the neighbor-joining tree and haplotype network structure suggest little genetic differentiation. AMOVA analysis reveals that most variation (99.83%) was found within populations. The results of the neutral test show that the Fu's Fs value was significantly negative (−24.605, p<0.05) and the Bayesian skyline plot analysis reveals that the S. oramin population underwent a demographic bottleneck followed by a rapid population expansion over a short evolutionary time span, which suggests that S. oramin might have experienced a bottleneck effect and population expansion within a short period of time, with the estimated expansion time being about 15.77 thousand years ago.

  • 玉足海参 (Holothuria leucospilota) 属棘皮动物门、海参纲、楯手目、海参科、海参属,自然分布于中国福建、广东和海南等南方沿海地区的岩石、珊瑚和海藻丛附近[1-3]。玉足海参作为海洋沉积物的搬运者和海底清道夫,在近岸海洋生态系统中扮演着重要角色,它们可以有效降低沉积物中的有机质含量,还可以促进海水的酸碱度平衡,对维护珊瑚礁生态系统的稳定具有重要意义[4-5]。玉足海参是一种重要的经济海参种类,其生殖腺是拉罗汤加文化中一种重要的传统食物[6-7]。近年来,国内外学者通过对海参的各类成分进行生物活性测定及其生物医学研究的不断深入,发现海参含有多种具有抗肿瘤、抗真菌、提高免疫力等作用的活性物质,如海参多糖、海参皂苷等[8-13],多方面研究表明玉足海参具有重要的药用和保健价值[14-17];此外,作为海洋生态系统中重要的一员,玉足海参在多营养层次生态养殖模式 (Integrated multi-trophic aquaculture, IMTA) 中应用于营养回收和颗粒废物处理,具有重大的商业和研究价值,玉足海参与其他水生生物进行多营养层次综合养殖,可以有效减少养殖水体中过量的有机营养物质,改善养殖环境,提高养殖物种成活率、产量及饵料利用率[18-20]

    近年来,随着市场需求不断增加,海参的捕捞量急剧上升,过度捕捞给野生海参资源带来了严重的威胁[21-25]。人工养殖海参被认为是解决海参危机的有效策略[3,26],通过将人工养殖的海参投放到野外,海参的自然种群可能得到恢复[4]。目前,已成功人工培育和繁殖了多种热带海参[24,27],其中糙海参 (H. scabra) 的人工繁育和养殖技术已较完善和成熟[28-29],而玉足海参的人工繁育研究尚处于起步阶段[4]。近年来,在人工繁育过程中海参亲体与幼体的养殖管理及生长环境上已有较多的研究探索;环境因子是影响海参人工繁殖的重要因素之一,对海参幼体和成体的养殖与日常管理均存在显著影响[30-31]。通过研究不同盐度对玉足海参成体的摄食、耗氧量、排泄率等方面的影响[32],表明成体的玉足海参对盐度具有广泛的耐受性,但是并不适合在低盐度水中进行养殖;海参幼体对养殖环境同样比较敏感,不同浓度梯度的盐度试验,表明盐度对海参幼体的生产、成活率和免疫力有显著影响,盐度过高会对其生长产生不良影响[31]。随着玉足海参人工繁育技术不断发展进步,存在的问题和挑战也日益凸显,如成活率低下、发育状态不佳、人工繁育过程中死亡率高等[4,21],无法达到如贝类人工繁育般的高度人工可控,环境因子对玉足海参浮游幼体生长发育影响的研究尚存在空白,有关其繁育与养殖的研究报道相对较少。本实验以玉足海参耳状幼体为研究对象,观察并记录不同盐度条件下玉足海参浮游幼体的生长、发育等情况,探讨了不同盐度养殖水体对其生长、发育和成活率的影响,旨在为提高玉足海参幼体繁育的成活率和热带海参野生资源的开发利用提供理论参考依据。

    实验用玉足海参亲本采自海南省万宁海区,体长25~35 cm,湿质量580~1 480 g。暂养于海南省陵水黎族自治县热带水产研究开发中心,经阴干刺激后释放卵子,卵子受精后进行洗卵并移至水体体积为5 m3的育苗池中进行孵化,完成孵化后停止充气,用虹吸法收集上层优质耳状幼体。实验用耳状幼体平均体长为 (420.36±1.9) μm,平均胃宽为 (90.44±0.96) μm。

    实验用玉足海参幼体饵料球等鞭金藻 (Isochrysis galbana) 藻种取自中国水产科学研究院南海水产研究所单胞藻培养室,并在热带水产研究开发中心进行扩种培养。实验在室内进行,主要用具包括15个容量为50 L的塑料桶 (同一颜色)、显微镜、盐度计、充气泵、光度计、胚胎培养皿等。

    实验在空调控温室内进行,水温保持在28~29 ℃;实验容器为体积为50 L的塑料桶,实验水体为40 L,实验用海水取自新村港,经过滤后使用,降低盐度用自来水勾兑,提高盐度使用海盐进行调节,经24 h充氧后,将海水盐度分别设置为24、27、30、33、36,每个盐度组设置3个平行,实验期间每天进行盐度调控,光照强度保持在 500 lx以下,每天投喂球等鞭金藻,投喂密度为每天20 000个·mL−1;实验期间每3~4天换水1次,换水量为实验水体的50%;每隔24 h取样,使用显微镜观测海参幼体发育,每组重复取样20个,测定玉足海参浮游幼体的体长 (L) 和胃宽 (SW,图1),并统计特定生长率,同时,记录每个盐度条件下幼体的成活率。

    图  1  玉足海参耳状幼体的体长和胃宽
    Fig. 1  Body length (L) and stomach width (SW) of larvae of H. leucospilota

    实验数据的显著性采用SPSS 19.0软件进行t检验,使用Origin 2019软件作图。P<0.05表示差异显著。生长率 (Rg, d−1) 和成活率 (Rs, %) 的计算公式如下:

    $$ R_{{\rm{g}}} =\ln(L_{t}/L_{0})/t $$ (1)
    $${R_{\rm{s}}} = {Q_{\rm{f}}}/{Q_{\rm{o}}} \times 100{\text{%}} $$ (2)

    式中:Lt为大耳状幼体时的体长 (μm);L0为初始体长 (μm);t为实验时间 (d);Qf为最终存活个数;Qo为初始幼体个数。

    玉足海参浮游幼体发育至大耳状幼体阶段时,其体长和胃宽发育至最大值 (图2),与其他盐度组相比,24盐度组幼体体长和胃宽的特定生长率均为最低,与其他盐度组具有显著性差异 (P<0.05)。盐度对玉足海参浮游幼体体长特定生长率会产生一定的影响 (图2-a),33和36盐度组的体长特定生长率显著高于其他盐度组 (P<0.05),24和27盐度组间、33和36盐度组间差异不显著 (P>0.05)。同时,盐度对玉足海参浮游幼体胃宽的特定生长率也有显著影响 (图2-b),30盐度组幼体胃宽特定生长率显著高于24、33和36盐度组 (P<0.05);27和30盐度组有利于玉足海参浮游幼体胃部的生长和发育。

    图  2  盐度对玉足海参幼体体长 (a) 和胃宽 (b) 的影响
    Fig. 2  Effects of salinity on body length (a) and stomach width (b) of juvenile H. leucospilota

    本实验结果显示,不同盐度下玉足海参幼体体长的变化呈现不同规律。不同盐度组幼体的体长随着养殖时间的增加而增长。与其他盐度组相比,36盐度组的玉足海参幼体生长速度最快,其于实验第4天体长达到最长,随后其个体随变态发育而缩小;24盐度组的玉足海参幼体发育最为缓慢,直至第6天其体长达到最长,第7天开始体长随变态发育而缩小;其他盐度组从第5、第6天后开始变态。除24盐度组外,其他盐度组玉足海参幼体体长变化幅度大,从大耳状幼体发育至樽形幼体状态的速度也较快 (图3)。

    图  3  不同盐度下玉足海参幼体体长变化
    Fig. 3  Change of body length of H. leucospilota larvae under different salinity

    本实验结果显示,不同盐度组玉足海参幼体的成活率呈现不同规律。通过21 d的观察,第6—第8天24、33和36盐度组的玉足海参幼体成活率开始显著下降,第8—第10天27和30盐度组的玉足海参成活率才开始显著下降;与其他盐度组的结果相比,27和30盐度组玉足海参幼体的成活率高于其他盐度组,30盐度组出现了最高成活率 (11.69%),27盐度组的成活率最低 (图4)。结合不同盐度下玉足海参幼体体长变化结果,本研究表明盐度30对玉足海参幼体生长、发育较为适宜。

    图  4  不同盐度对玉足海参幼体成活率的影响
    Fig. 4  Effects of different salinities on survival rate of H. leucospilota larvae

    本实验表明,不同盐度对玉足海参大耳状幼体形态有一定影响 (图5)。在玉足海参幼体发育至大耳状幼体时,相比较其他盐度条件,盐度为27~30时,玉足海参幼体球状体 (图中箭头处) 发育更加强壮和突出,个数更多,其整体形态与轮廓更加清晰 (图5-b、5-c);与其他盐度组相比,盐度为24和36时,玉足海参浮游幼体的胃明显没有其他盐度圆润与充盈;幼体大小也明显小于其他盐度 (图5-a、5-e)。

    图  5  不同盐度下玉足海参浮游幼体形态变化
    Fig. 5  Change of morphology of planktonic larva of H. leucospilota under different salinity

    盐度是影响海洋动物生理生态的重要环境因子之一,海参是棘皮动物,缺少渗透压调节器官,难以调节体腔液的盐度[33-34]。棘皮动物的体腔液通常与外界环境保持一致,外界环境盐度的波动会对海参的存活、生长、繁殖及行为等造成一定的影响[34-35];不适宜的盐度会降低其对不良环境的抵抗能力和对食物的吸收和代谢,严重时将影响其生长并降低其成活率[34-36]。本研究表明,适宜盐度 (盐度为27~30) 下,玉足海参幼体的体长和脏器能够得到更好的生长和发育,与其他组的特定生长率有显著差异 (P<0.05)。玉足海参对盐度变化有较强的耐受性,但并不适合在低盐度条件下进行养殖,18盐度组的玉足海参摄食速率显著低于其他盐度组;且盐度变化对玉足海参氨的排泄率也有显著影响[32]。本研究中玉足海参幼体对盐度的感知程度比成体更加敏感,因此进行玉足海参人工繁育时,应对其养殖水体的盐度变化进行监测。盐度变化导致仿刺参 (Apostichopus japonicus) 体腔液渗透压的改变,进而影响仿刺参体内免疫酶的活性[37];盐度对仿刺参的生长有极显著影响,当盐度介于22~30,随着盐度增加,其特定生长率逐渐升高,但当盐度继续增加后,其特定生长率开始下降[38]。Sari等[39]实验表明,当盐度高于34时对糙海参幼体的生长产生不良影响。与上述几种海参幼体的实验结果相比较,本研究结果与仿刺参的一致,糙海参幼体在高盐度下开始产生不良影响,表明在进行不同海参品种人工繁育过程中,需要进行相应的盐度调节。为不断优化玉足海参人工繁育机制,需进一步研究环境因子对其生理变化的影响,以为玉足海参人工繁育技术提供理论依据。

    盐度是影响海参生长、发育和存活的重要环境因素之一[33,40]。海参具有丰富的营养价值和较高的经济价值,这不仅刺激了中国海参养殖业的迅猛发展,同时也表明海参人工繁育技术的建立与完善是目前海参养殖业的首要任务。本研究通过对比不同盐度下玉足海参浮游幼体的成活率,结合不同盐度下其体长的变化,结果表明盐度为27~30的玉足海参幼体成活率高于其他盐度,樽形幼体在玉足海参整个发育过程中比较重要,是影响其成活率的重要因素之一。通过不同盐度梯度实验发现,24~34盐度下糙海参幼体成活率高于其他组,盐度达到44时,幼体成活率显著下降[39];而刺参幼体在盐度30下的成活率最高[41],盐度过低或过高 (<20或≥40) 最终成活率为0;本实验结果与刺参幼体盐度实验结果接近,过高或过低的盐度均会影响海参幼体的成活率,而糙海参幼体能够耐受更广的盐度,且糙海参和刺参的幼体成活率均高于玉足海参。因此,提高玉足海参幼体的成活率仍是人工繁育技术中的重点与难点,有待于进一步探究。

    球状体结构在海参浮游幼体阶段至关重要[4,42-44],其不仅参与幼体的运动,同时还为海参幼体的变态发育提供营养。球状体发育状态影响海参幼体变态的成活率[43-45],研究表明,海参的变态发育可能高度依赖于幼虫在发育过程中脂质能量的积累,球状体结构用于脂质和营养物质的储存,为海参幼体的变态发育提供能量及营养物质[42]。球状体在糙海参幼体培育阶段,通过改善养殖模式和养殖环境能够有效地提高大耳幼体状态下球状体的出现率,并提高其变态成活率。本研究中,通过比较不同盐度下大耳状幼体的发育状态,盐度介于27~30时,玉足海参浮游幼体的球状体发育更加突出,轮廓更加清晰;玉足海参幼体的成活率除受到环境因子影响之外,一定程度上可能与球状体的发育状态有关[43]。球状体在玉足海参幼体变态发育中是否起决定性作用,有待进一步研究。

    为提高玉足海参浮游幼体的变态成活率,建议在盐度为27~30条件下进行玉足海参浮游幼体的培育,以盐度不低于27为宜;适宜的养殖条件有利于玉足海参浮游幼体的生长和发育;在雨季或盐度变化的河口与沿海区域,建议进行养殖水体盐度的实时或间隔监测。

  • 图  1   黄斑蓝子鱼采集地点

    Figure  1.   Sampling sites of S. oramin

    图  2   81个Cyt b基因单倍型构建的邻接树

    Figure  2.   Neighbor-joining tree constructed from 81 Cyt b gene haplotypes of S. oramin

    图  3   基于Cyt b基因序列构建的黄斑蓝子鱼单倍型网络图

    注:单倍型间数字表示单倍型间的核苷酸变异数。

    Figure  3.   Haplotype network sequences of seven S. oramin populations based on mtDNA Cyt b gene

    Note: Numbers between haplotypes represent the number of nucleotide variations between haplotypes.

    图  4   核苷酸不配对分析图

    Figure  4.   Mismatch-distribution analysis of S. oramin

    图  5   贝叶斯天际线图

    Figure  5.   Bayesian Skyline plot of S. oramin

    表  1   7个黄斑蓝子鱼地理群体Cyt b基因序列的遗传多样性指数和中性检验

    Table  1   Genetic diversity parameters and neutral test in seven S. oramin populations

    群体
    Population
    样品数
    Number of samples
    单倍型
    Haplotype
    单倍型多样性
    Haplotype diversity
    核苷酸多样性
    Nucleotide diversity
    Tajima's D Fu's Fs
    D p Fs p
    深圳大鹏湾 DP 31 17 0.938±0.025 0.005 7±0.001 6 −1.858 0.018 −3.499 0.102
    深圳大亚湾 DY 27 16 0.920±0.035 0.004 1±0.000 6 −1.325 0.079 −5.628 0.015
    阳江沙扒湾 SB 30 21 0.972±0.016 0.007 4±0.002 0 −1.513 0.047 −6.374 0.021
    漳州东山湾 DS 28 19 0.881±0.060 0.005 2±0.001 9 −2.247 0.003 −7.380 0.003
    海南岛文昌 WC 28 17 0.894±0.051 0.008 7±0.004 2 −2.289 0.001 −1.968 0.232
    湛江北部湾 BB 24 15 0.924±0.037 0.010 9±0.004 7 −2.022 0.008 −0.557 0.446
    宁德三沙湾 SS 29 17 0.909±0.038 0.003 2±0.000 5 −1.782 0.026 −8.369 0.000
    合计 Total 197 81 0.921±0.014 0.006 4±0.001 0 −2.185 0.001 −24.605 0.000
    下载: 导出CSV

    表  2   7个黄斑蓝子鱼群体间的遗传距离 (对角线下) 和Fst值 (对角线上)

    Table  2   Genetic distance (Below diagonal) and Fst value (Above diagonal) among seven S. oramin populations

    群体
    Population
    深圳大鹏湾
    DP
    漳州东山湾
    DS
    深圳大亚湾
    DY
    湛江北部湾
    BB
    宁德三沙湾
    SS
    阳江沙扒湾
    SB
    海南岛文昌
    WC
    深圳大鹏湾 DP −0.001 40 0.010 18 −0.014 22 0.024 34 −0.008 86 0.005 43
    漳州东山湾 DS 0.005 46 0.009 87 −0.002 06 0.000 00 0.016 99 −0.004 78
    深圳大亚湾 DY 0.004 94 0.004 70 0.010 71 −0.007 01 0.013 68 −0.002 88
    湛江北部湾 BB 0.008 17 0.008 04 0.007 55 0.017 34 −0.010 58 −0.022 92
    宁德三沙湾 SS 0.004 55 0.004 20 0.003 59 0.007 13 0.033 83* −0.001 82
    阳江沙扒湾 SB 0.006 48 0.006 42 0.005 81 0.009 04 0.005 47 −0.007 24
    海南岛文昌 WC 0.007 24 0.006 94 0.006 37 0.009 59 0.005 92 0.007 99
    注:*. p<0.05。 Note: *. p<0.05.
    下载: 导出CSV

    表  3   基于Cyt b基因序列的分子变异分析

    Table  3   AMOVA analysis for S. oramin based on Cyt b gene sequence

    变异来源
    Source of variation
    自由度
    Degree of freedom
    平方和
    Sum of squares
    变异组成
    Variance components
    变异百分比
    Percentage of variation/%
    群体间 Among populations 6 22.79 0.006 20Va 0.17
    群体内 Within populations 190 688.63 3.624 37Vb 99.83
    合计 Total 196 711.42 13.81 100.00
    下载: 导出CSV

    表  4   核苷酸不配对分布分析参数估计值

    Table  4   Mismatch distribution parameters of S. oramin

    群体
    Population
    核苷酸不配对分布
    Nucleotide mismatch distribution
    拟合优度检验
    Goodness-of-fit test
    扩张参数
    τ
    初始值
    θ
    最终值
    θ1
    差平方和
    SSD
    p (SSD) 粗糙指数
    R
    p (R)
    深圳大鹏湾 DP 0.969 4.795 4 141.789 0.012 74 0.560 0.028 32 0.230
    深圳大亚湾 DY 0.625 5.231 7 158.775 0.006 13 0.840 0.010 50 0.960
    阳江沙扒湾 SB 2.795 3.556 26.797 0.008 03 0.440 0.009 42 0.830
    漳州东山湾 DS 35.306 0 5.097 0.009 07 0.720 0.018 20 0.860
    海南岛文昌 WC 0.750 2.912 6 844.115 0.008 77 0.600 0.020 14 0.830
    湛江北部湾 BB 8.066 0 7.979 0.023 87 0.660 0.031 10 0.650
    宁德三沙湾 SS 0.750 3.512 2 450.040 0.008 64 0.700 0.028 79 0.620
    合计 Total 0.720 4.584 3 599.395 0.004 24 0.760 0.009 46 0.850
    下载: 导出CSV
  • [1] 马强. 中国海蓝子鱼科Family Siganidae分类和动物地理学特点[D]. 青岛: 中国科学院研究生院 (海洋研究所), 2006: 1-8.
    [2] 孟庆闻, 苏锦祥, 缪学祖. 鱼类分类学[M]. 北京: 中国农业出版社, 1995: 898-900.
    [3] 冯广朋, 章龙珍, 庄平, 等. 海水网箱养殖长鳍篮子鱼的摄食与生长特性[J]. 海洋渔业, 2008, 30(1): 37-42.
    [4] 郑有慧, 张振豪, 韦慕兰, 等. 光伏池塘养殖篮子鱼技术[J]. 科学养鱼, 2023(12): 66-67. doi: 10.3969/j.issn.1004-843X.2023.12.045
    [5]

    SHUI B N, HAN Z Q, GAO T X, et al. Mitochondrial DNA variation in the East China Sea and Yellow Sea populations of Japanese Spanish mackerel Scomberomorus niphonius[J]. Fish Sci, 2009, 75(3): 593-600. doi: 10.1007/s12562-009-0083-3

    [6] 刘云国. 水产生物DNA分子标记技术[M]. 北京: 科学出版社, 2009: 59-62.
    [7]

    LEE W J, KOCHER T D. Complete sequence of a sea lamprey (Petromyzon marinus) mitochondrial genome: early establishment of the vertebrate genome organization[J]. Genetics, 1995, 139(2): 873-887. doi: 10.1093/genetics/139.2.873

    [8] 肖武汉, 张亚平. 鱼类线粒体DNA的遗传与进化[J]. 水生生物学报, 2000, 24(4): 384-391.
    [9]

    HUANG X L, HUANG Z, LI Q, et al. De novo assembly, characterization, and comparative transcriptome analysis of mature male and female gonads of rabbitfish (Siganus oramin) (Bloch & Schneider, 1801)[J]. Animals, 2024, 14(9): 1346. doi: 10.3390/ani14091346

    [10] 黄小林, 劳智鸿, 杨育凯, 等. 黄斑蓝子鱼幼鱼对水温、盐度和溶解氧的耐受研究[J]. 南方水产科学, 2024, 20(2): 48-55. doi: 10.12131/20230143
    [11] 李文楷. 黄斑蓝子鱼饲料中三种功能性糖在缓解高淀粉引起的生长减缓、脂肪蓄积中的作用机制[D]. 汕头: 汕头大学, 2022: 11-12.
    [12] 杨育凯, 黄小林, 舒琥, 等. 不同生境下黄斑篮子鱼肌肉营养成分比较分析[J]. 南方水产科学, 2023, 19(1): 128-135. doi: 10.12131/20210345
    [13] 陈翠英, 程宇, 王懿, 等. 黄斑蓝子鱼Δ6Δ5 Fads2蛋白重组表达和多克隆抗体的制备[J]. 汕头大学学报 (自然科学版), 2022, 37(3): 50-57.
    [14] 刘丽杰. 胰岛素及其信号通路在黄斑蓝子鱼LC-PUFA合成调控中的作用及机制研究[D]. 汕头: 汕头大学, 2022: 56-58.
    [15]

    LUO H T, YANG Y F, WANG Q, et al. Protection of Siganus oramin, rabbitfish, from heavy metal toxicity by the selenium-enriched seaweed Gracilaria lemaneiformis[J]. Ecotoxicol Environ Saf, 2020, 206: 111183. doi: 10.1016/j.ecoenv.2020.111183

    [16]

    SUN J L, JIANG T, GU Y, et al. Differential immune and metabolic responses underlie differences in the resistance of Siganus oramin and Trachinotus blochii to Cryptocaryon irritans infection[J]. Fish Shellfish Immunol, 2022, 120: 166-179. doi: 10.1016/j.fsi.2021.11.018

    [17]

    LATUCONSINA H, BUTET N A, AFFANDI R, et al. Geneticdiversity of white-spotted rabbitfish (Siganus canaliculatus) on different seagrass habitats in Inner Ambon Bay, Indonesia based on mitochondrial CO1 sequences[J]. Trop Life Sci Res, 2024, 35(1): 277. doi: 10.21315/tlsr2024.35.1.15

    [18] 中国科学院动物研究所, 中国科学院海洋研究所, 上海水产学院. 南海鱼类志[M]. 北京: 科学出版社, 1962: 733.
    [19] 彭敏, 韩耀全, 王大鹏, 等. 基于线粒体Cytb基因序列的西江流域广西境内卷口鱼遗传多样性分析[J]. 南方水产科学, 2020, 16(5): 10-18.
    [20] 李文静, 王环珊, 刘焕章, 等. 赤水河半䱗的遗传多样性和种群历史动态分析[J]. 水生生物学报, 2018, 42(1): 106-113.
    [21]

    SCHNEIDER S, EXCOFFIER L. Estimation of past demographic parameters from the distribution of pairwise differences when the mutation rates vary among sites: application to human mitochondrial DNA[J]. Genetics, 1999, 152(3): 1079-1089. doi: 10.1093/genetics/152.3.1079

    [22] 张帅, 李敏, 闫帅, 等. 基于线粒体Cyt b基因序列的棘头梅童鱼种群遗传结构[J]. 中国水产科学, 2021, 28(1): 90-99.
    [23] 周伟, 高天翔, 王俊, 等. 乌鳢群体遗传多样性和遗传结构分析[J]. 水产学报, 2017, 41(10): 1521-1532.
    [24]

    GOODALL-COPESTAKE W P, TARLING G A, MURPHY E J. On the comparison of population-level estimates of haplotype and nucleotide diversity: a case study using the gene cox1 in animals[J]. Heredity, 2012, 109(1): 50-56. doi: 10.1038/hdy.2012.12

    [25]

    NEI M, LI W H. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases[J]. Proc Natl Acad Sci, 1979, 76(10): 5269-5273. doi: 10.1073/pnas.76.10.5269

    [26]

    SOLTIS P S, SOLTIS D E. Genetic variation in endemic and widespread plant species examples from Saxifragaceae and Polystichum (Dryopteridaceae)[J]. Aliso, 1991, 13(1): 215-223. doi: 10.5642/aliso.19911301.10

    [27] 郭丹丹, 刘峰, 牛宝龙, 等. 基于线粒体Cytb基因和D-loop区的野生与养殖小黄鱼群体遗传多样性[J]. 浙江农业学报, 2022, 34(9): 1856-1865.
    [28] 崔静, 徐明芳, 章群, 等. 基于3种线粒体标记探讨中日沿海角木叶鲽遗传多样性差异[J]. 生物多样性, 2022, 30(5): 90-102. doi: 10.3969/j.issn.1004-2490.2025.01.001
    [29] 朱威霖, 肖珊, 杨春玲, 等. 基于线粒体Cytb基因序列的华南沿海黄鳍棘鲷种群遗传结构分析[J]. 西南农业学报, 2021, 34(2): 446-454.
    [30]

    GRANT W A S, BOWEN B W. Shallow population histories in deep evolutionary lineages of marine fishes: insights from sardines and anchovies and lessons for conservation[J]. J Hered, 1998, 89(5): 415-426. doi: 10.1093/jhered/89.5.415

    [31]

    SHAKLEE J B. Speciation and evolution of marine fishes studied by the electrophoretic analysis of proteins[J]. Pac Sci, 1982, 36(2): 141-157.

    [32]

    YU Z N, KONG X Y, GUO T H, et al. Mitochondrial DNAsequence variation of Japanese anchovy Engraulis japonicus from the Yellow Sea and East China Sea[J]. Fish Sci, 2005, 71: 299-307. doi: 10.1111/j.1444-2906.2005.00964.x

    [33] 吴仁协, 梁秀何, 庄志猛, 等. 中国近海银鲳线粒体COI基因序列变异分析[J]. 动物分类学报, 2012, 37(3): 480-488.
    [34]

    WANG Z Y, ZHANG Y, ZHAO L L, et al. Shallow mitochondrial phylogeographical pattern and high levels of genetic connectivity of Thamnaconus hypargyreus in South China Sea and the East China Sea[J]. Biochem Syst Ecol, 2016, 67: 110-118. doi: 10.1016/j.bse.2016.05.013

    [35]

    LECOMTE F, GRANT W S, DODSON J J, et al. Living withuncertainty: genetic imprints of climate shifts in East Pacific anchovy (Engraulis mordax) and sardine (Sardinops sagax)[J]. Mol Ecol, 2004, 13(8): 2169-2182. doi: 10.1111/j.1365-294X.2004.02229.x

    [36]

    WRIGHT S. Evolution and the genetics of populations[M]. Chicago: University of Chicago Press, 1978: 388-392.

    [37]

    RAVAGO-GOTANCO R, de la CRUZ T L, PANTE M J, et al. Cryptic genetic diversity in the mottled rabbitfish Siganus fuscescens with mitochondrial introgression at a contact zone in the South China Sea[J]. PLoS One, 2018, 13(2): e0193220. doi: 10.1371/journal.pone.0193220

    [38]

    FU Y X. Statistical tests of neutrality of mutations against population growth, hitchhiking and background selection[J]. Genetics, 1997, 147(2): 915-925. doi: 10.1093/genetics/147.2.915

    [39]

    ZHU Y X, CHENG Q Q, ROGERS S M. Genetic structure of Scomber japonicus (Perciformes: Scombridae) along the coast of China revealed by complete mitochondrial cytochrome b sequences[J]. Mitochondr DNA A, 2016, 27(6): 3828-3836. doi: 10.3109/19401736.2014.958671

    [40] 黄小林, 李文俊, 林黑着, 等. 基于线粒体DNA D-loop序列的黄斑篮子鱼群体遗传多样性分析[J]. 热带海洋学报, 2018, 37(4): 45-51.
    [41] 卢丽锋, 章群, 杨喜书, 等. 基于线粒体控制区的中国近海绿鳍鱼遗传多样性分析[J]. 海洋渔业, 2018, 40(3): 257-264. doi: 10.3969/j.issn.1004-2490.2018.03.001
    [42] 黄小林, 杨育凯, 李涛, 等. 黄斑篮子鱼仔、稚、幼鱼形态观察与生长研究[J]. 南方水产科学, 2018, 14(5): 88-94.
    [43] 乔方利. 中国区域海洋学: 物理海洋学[M]. 北京: 海洋出版社, 2012: 379-389.
    [44] 葛倩. 晚末次冰期以来南海古环境和古气候记录[D]. 北京: 中国地质大学, 2010: 10-11.
    [45] 高劲松. 南海北部中尺度涡及北部湾环流结构与生成机制研究[D]. 青岛: 中国海洋大学, 2013: 64-68.
    [46] 陈欣树, 刘以宣. 华南沿海海滩岩与第四纪环境研讨会在汕头召开[J]. 热带海洋, 1988, 2: 27.
    [47] 蓝先洪, 张志珣, 王中波, 等. 东海陆架晚更新世以来沉积物常量元素的分布及其地质意义[J]. 吉林大学学报 (地球科学版), 2014(6): 1883-1891.
    [48] 王珏. 闽江河口区晚更新世以来的气候变迁[J]. 地理科学, 1989, 9(3): 289-290.
    [49] 赵焕庭. 珠江河口演变[M]. 北京: 海洋出版社, 1990: 80-83.
    [50] 黄镇宇, 章群, 卢丽锋, 等. 基于线粒体COI序列的中国前鳞鮻遗传多样性分析[J]. 渔业科学进展, 2019, 40(1): 46-52.
    [51] 钟声平, 蒋艳, 陈秀荔, 等. 基于线粒体Cytb基因序列的褐石斑鱼种群遗传多样性分析[J]. 广西科学, 2023, 30(4): 719-726.
  • 期刊类型引用(1)

    1. 吴晓鹏,黄敏伟,陈晓瑛,彭凯,赵吉臣,钟平,刘凤坤,张业辉,黄文. 玉足海参变态附着阶段转录组分析. 南方水产科学. 2023(06): 84-96 . 本站查看

    其他类型引用(2)

推荐阅读
Structural and functional characteristics of intestinal bacterial community associated with red spotting disease ofstrongylocentroyus intermedius
CHEN Dongsheng et al., SOUTH CHINA FISHERIES SCIENCE, 2025
Intestinal tissue structure, digestive enzymes, antioxidant enzymes and intestinal flora diversity between second filial generation and wild population ofbrachymystax tsinlingensisli, 1966
SONG Rongqun et al., SOUTH CHINA FISHERIES SCIENCE, 2025
Characterization of proteinase-producing strainbacillus tropicalisbtzb2 from source of fish in reef of south china sea
HU Xiaojuan et al., SOUTH CHINA FISHERIES SCIENCE, 2024
Alternation of gastric emptying, feeding behavior and digestive enzyme activities inhexagrammos otakii
WANG Feng et al., SOUTH CHINA FISHERIES SCIENCE, 2024
Study on multi-locus sequence typing, virulence genes, and drug resistance of vibrio alginolyticus from shellfish and culture environment
ZHENG Yudong et al., PROGRESS IN FISHERY SCIENCES, 2024
Parasite drug resistance and its enlightenment for anthelmintic therapy of parasitic diseases in aquaculture
LI Wen-Xiang et al., ACTA HYDROBIOLOGICA SINICA, 2024
Antimicrobial treatment and resistance in sexually transmitted bacterial infections
Jensen, Jorgen S., NATURE REVIEWS MICROBIOLOGY, 2024
Antimicrobial consumption and resistance in bacteria from humans and food-producing animals
EFSA JOURNAL, 2024
Evolution of antibiotic resistance in escherichia coli and klebsiella pneumoniae from urine cultures
ARCHIVOS ESPANOLES DE UROLOGIA, 2023
Morphological and phylogenetical analyses of pathogenic hypomyces perniciosus isolates from agaricus bisporus causing wet bubble disease in china
PHYTOTAXA, 2021
Powered by
图(5)  /  表(4)
计量
  • 文章访问数:  59
  • HTML全文浏览量:  9
  • PDF下载量:  27
  • 被引次数: 3
出版历程
  • 收稿日期:  2024-12-18
  • 修回日期:  2025-03-30
  • 录用日期:  2025-05-20
  • 网络出版日期:  2025-06-04

目录

/

返回文章
返回