恩诺沙星及其代谢物环丙沙星在方斑东风螺体内药代动力学及残留消除规律研究

邓东, 文永森, 刘晓坤, 吕文刚, 陈景雷, 陈景步

邓东, 文永森, 刘晓坤, 吕文刚, 陈景雷, 陈景步. 恩诺沙星及其代谢物环丙沙星在方斑东风螺体内药代动力学及残留消除规律研究[J]. 南方水产科学, 2024, 20(6): 176-186. DOI: 10.12131/20240152
引用本文: 邓东, 文永森, 刘晓坤, 吕文刚, 陈景雷, 陈景步. 恩诺沙星及其代谢物环丙沙星在方斑东风螺体内药代动力学及残留消除规律研究[J]. 南方水产科学, 2024, 20(6): 176-186. DOI: 10.12131/20240152
DENG Dong, WEN Yongsen, LIU Xiaokun, LYU Wengang, CHEN Jinglei, CHEN Jingbu. Pharmacokinetics and residual elimination pattern of enrofloxacin and its metabolite ciprofloxacin in Babylonia areolate[J]. South China Fisheries Science, 2024, 20(6): 176-186. DOI: 10.12131/20240152
Citation: DENG Dong, WEN Yongsen, LIU Xiaokun, LYU Wengang, CHEN Jinglei, CHEN Jingbu. Pharmacokinetics and residual elimination pattern of enrofloxacin and its metabolite ciprofloxacin in Babylonia areolate[J]. South China Fisheries Science, 2024, 20(6): 176-186. DOI: 10.12131/20240152

恩诺沙星及其代谢物环丙沙星在方斑东风螺体内药代动力学及残留消除规律研究

基金项目: 广东省现代化海洋牧场适养品种核心技术攻关项目 (2024-MRB-00-001);国家重点研发计划“蓝色粮仓”科技创新专项 (2018YFD0901401);国家自然科学基金青年科学基金项目 (31702325)
详细信息
    作者简介:

    邓 东(1998—),男,硕士研究生,研究方向为贝类病害治疗与防治。E-mail: 2993766253@qq.com

    通讯作者:

    吕文刚(1983—),男,副教授,博士,研究方向为贝类遗传育种与生态毒理。E-mail: lvwengang2007@163.com

  • 中图分类号: S 948

Pharmacokinetics and residual elimination pattern of enrofloxacin and its metabolite ciprofloxacin in Babylonia areolate

  • 摘要:

    近年来,养殖方斑东风螺 (Babylonia areolata) 体内的恩诺沙星残留问题频发,为揭示恩诺沙星及其代谢物在方斑东风螺体内的药代动力学规律,并制定出合理的给药方法与休药期。以方斑东风螺为研究对象,在 (24.5±2.5) ℃的养殖水温下,对方斑东风螺伴饵投喂20 mg·kg−1的恩诺沙星混合液,分别于给药后的第0.17、第0.25、第0.5、第1、第2、第4、第12、第24、第48、第72、第120、第168、第240、第360 小时分期采集组织,采用岛津8050LC-MS/MS仪器检测各时期组织中的药物浓度。结果显示,药时数据适用于非房室模型,恩诺沙星在腹足肌肉、吻管 (含食道腺)、肝脏中的达峰浓度 (Cmax) 分别为7.82、10.5、31.47 mg·kg−1,环丙沙星 (代谢物) 的Cmax分别为0.72、0.89、1.21 mg·kg−1;恩诺沙星的达峰时间 (tmax) 分别为1、4、4 h,环丙沙星的tmax分别为4、12、4 h;恩诺沙星的消除半衰期 (t1/2z) 分别为38.22、52.44、62.40 h,环丙沙星的t1/2z分别为66.23、33.11、27.06 h;各组织理论休药期分别为16.94、16.79、17.99 d。结果表明,各组织中Cmax/MIC> 10,故20 mg·kg−1的恩诺沙星混合液适用于治疗由哈维氏弧菌 (Vibrio harveyi, MIC, 0.45 mg·L−1) 引发的东风螺疾病。研究建议休药期不低于440.76度日 (℃·d),给药方案为每2天1次,共3次。

    Abstract:

    In recent years, frequent occurrence of enrofloxacin residues in breeding snail (Babylonia areolate) has been a problem. To reveal the pharmacokinetic characteristics of enrofloxacin and its metabolites in B. areolate, and to design a rational dosing method and the rest period, we fed B. areolate with 20 mg·kg−1 of enrofloxacin mixture at water temperature of (24.5 ± 2.5) ° C, and then sampled at 0.17th, 0.25th, 0.5th, 1st, 2nd, 4th, 12th, 24th, 48th, 72nd, 120th, 168th, 240th and 360th hour after the dosing. Shimadzu 8050 LC-MS/MS was used to determine the drug concentration in the tissues in each period. The results show that the drug-time data applied to the non-atrial models in Gastropod muscle, proboscis (Including esophageal glands) and liver: the Cmax of enrofloxacin was 7.82, 10.5 and 31.47 mg·kg−1, respectively; the Cmax of ciprofloxacin (Metabolite) was 0.72, 0.89 and 1.21 mg·kg−1, respectively; the enrofloxacin tmax was 1, 4 and 4 h, respectively; the ciprofloxacin tmax was 4, 12 and 4 h, respectively; the enrofloxacin t1/2z was 38.22, 52.44 and 62.40 h, respectively; the ciprofloxacin t1/2z was 66.23, 33.11 and 27.06 h, respectively; the theoretical drug rest period was 16.94, 16.79 and 17.99 d, respectively. The results indicate that for all tissues, 20 mg·kg−1 of enrofloxacin mixture with the Cmax/MIC over 10 is suitable for the treatment of B. areolate disease caused by Vibrio harveyi (MIC, 0.45 mg·L−1). It is recommended that the drug rest period should not be less than 440.76 ℃·d and the dosing should be once every 2 d, a total of 3 times.

  • 由于鱼类染色体相较于其他脊椎动物具有较强的“可塑性”,所以鱼类最易进行杂交[1]。远缘杂交是一种应用广泛且效果较显著的育种方法,在杂交种的优质利用、诱导雌核发育以及抗逆性能的选育[2-4]等方面发挥着重要作用。虽然现在各种新育种手段不断应用于鱼类遗传育种,但是杂交育种仍是应用广泛且效果较为明显的一种育种方法。通过杂交育种可以使不同品种之间优良性状结合,研究显示很多杂交种均表现出了明显的杂种优势[5-12]。一般来说,分布地区距离越远、外部形态差异越大、基因型纯化程度越高的种间杂交,出现杂交优势的可能性越高。

    短须裂腹鱼(Schizothorax wangchiachii)属鲤形目、鲤科、裂腹鱼亚科、裂腹鱼属,为长江上游特有鱼类,是金沙江及其支流、雅砻江和乌江的主要经济鱼类之一[13],其肉质细嫩、味道鲜美、营养丰富、深受青睐。近十多年来,野生短须裂腹鱼因过度捕捞、环境污染、水电站开发等,资源量越来越少。刘跃天等[14]于2006年首次报道短须裂腹鱼人工繁殖成功,获鱼苗7 508尾。随后由于其经济效益尚且产卵率和孵化成功率较高[15-17],人工繁殖数量越来越多,但在养殖过程中发现其易受小瓜虫、水霉病等侵袭,从而带来严重的经济损失。鲈鲤(Percocypris pingipingi)属鲤形目、鲤科、鲃亚科、鲈鲤属,主要分布于黔、川、滇长江上游及其支流,以及广西右江、珠江水系上游[18],是我国特有的珍稀野生鱼类,也是四川省和重庆市的重点保护动物[13]。鲈鲤的抗病能力较强,但在人工繁殖过程中产卵率和孵化成功率较低。

    关于短须裂腹鱼与鲈鲤的胚胎及胚后发育均有报道[19-24],但目前尚未见有关短须裂腹鱼和鲈鲤杂交后代胚胎及仔稚鱼发育的研究报道。本研究利用隶属不同亚科的鲈鲤与短须裂腹鱼杂交,系统地观察了杂交F1代的胚胎及仔稚鱼发育,记录其发育特征及生长指数,旨在为短须裂腹鱼和鲈鲤的杂交育种以及今后优良性状养殖品种的选育提供基础资料。

    实验于2017年3月在凉山科华水生态工程有限公司进行,实验用短须裂腹鱼、鲈鲤亲鱼均为3~4龄,体质量为1 500~2 000 g,短须裂腹鱼(♀)×鲈鲤(♂) (DL)母本短须裂腹鱼的怀卵量约19 000粒,鲈鲤(♀)×短须裂腹鱼(♂) (LD)母本鲈鲤的怀卵量约12 000粒。

    实验鱼养殖于约25 m2的鱼塘中,水温(14.5±1.0) ℃,pH 8.10~8.52,分别对性成熟的短须裂腹鱼和鲈鲤雌雄个体注射人绒毛膜促性腺激素(HCG)和促黄体激素释放激素类似物(LHRH-A2)人工催产,48~72 h后取成熟亲鱼轻压腹部,顺产获得成熟卵和精子,采用干法授精进行杂交。

    分别将短须裂腹鱼卵和鲈鲤的精液,以及短须裂腹鱼的精液和鲈鲤的卵进行干法授精,待受精卵充分吸水膨胀后,在直径74 cm、高28 cm的孵化盒中流水孵化培育,密度为2 000~3 000粒·m–2,流量为60~70 mL·s–1,温度(14.5±1.0) ℃,pH 8.10~8.81,出膜后的仔鱼饲养于淡水鱼类资源与生殖发育教育部重点实验室室内循环系统,定期换水并排污。早期仔鱼以丰年虫为开口饵料,后混合投喂鱼苗专用微粒配合饲料S1,饵料和饲料分别购自山东爱家宠物水族用品有限公司和山东升索渔用饲料研究中心。

    利用体式显微镜(Nikon 6000)对DL和LD的胚胎及仔稚鱼发育过程进行观察拍照。参考国内外学者的研究[19-28],胚胎发育过程中每次随机取30~60粒胚胎,前12 h内每10 min取样1次,后每0.5~1 h取样1次,取样至出膜为止,胚胎发育的时间以60%以上的胚胎明显进入该发育阶段为准,观察期间水温为(14.5±1.0) ℃;仔稚鱼阶段每次随机取10尾,前20 d取样每天1次,之后间隔5 d取样1次,取样至鳞被覆盖完毕,用稀释的乙醇麻醉,同样采用体式显微镜进行观察、拍照并记录,然后测定其生长指数。

    以有效积温描述整个发育过程[29],各阶段积温的计算方法为:胚胎发育各阶段的积温(h·℃)=该阶段胚胎发育时间(h)×水温(℃)。

    使用Excel 2017对实验数据进行处理,利用Photoshop CS5对图像进行编辑。

    短须裂腹鱼的成熟卵为浅黄色、沉性、微黏性。在平均水温(14.5±1.0) ℃条件下,胚胎发育历时144.33 h,受精率为95.33%,孵化率为71.12%,参考短须裂腹鱼与鲈鲤的研究结果[19-24],将其胚胎发育过程分为6个阶段,共28个时期(表 1)。

    表  1  短须裂腹鱼与鲈鲤杂交F1 代胚胎发育时序表
    Table  1  Embryonic development schedule of hybrid of S. wangchiachii and P. pingipingi
    胚胎发育时期
    embryonic developmental stage
    主要特征
    developmental characteristics
    短须裂腹鱼 (♀) ×鲈鲤 (♂)
    S. wangchiachii (♀) ×
    P. pingipingi (♂) (DL)
    鲈鲤 (♀) ×短须裂腹鱼 (♂)
    P. pingipingi (♀) ×
    S. wangchiachii (♂) (LD)
    时间
    time
    积温/h·℃
    accumulated temperature
    时间
    time
    积温/h·℃
    accumulated temperature
    受精卵阶段 
    fertilized egg period
    受精卵期 受精卵呈球形,卵间隙小 0 0 0 0
    吸水膨胀期 受精卵吸水膨胀,卵间隙增大,卵膜呈透明状 45 min 10.88 1 h 1 min 14.79
    胚盘隆起期 原生质向动物极集中并隆起形成胚盘 3 h 35 min 51.77 3 h 7 min 54.81
    卵裂阶段 
    cleavage period
    2细胞期 胚盘表面凹陷形成分裂沟,将胚盘分裂为大小相似的2个分裂球 4 h 50 min 69.89 4 h 11 min 60.76
    4细胞期 分裂球再次分裂,形成大小相似的4个细胞 5 h 44 min 83.09 4 h 47 min 69.31
    8细胞期 分裂球呈几何级数增加,形成大小相似的8个细胞 6 h 30 min 94.25 5 h 44 min 83.09
    16细胞期 继续分裂,形成16个细胞 7 h 53 min 114.41 6 h 39 min 96.43
    桑葚胚期 卵裂速度加快,分裂球越来越小,细胞界限开始模糊,形成多细胞胚体,呈桑葚状 16 h 50 min 244.18 9 h 51 min 142.83
    囊胚阶段 
    blastula period
    囊胚早期 细胞团高高隆起,形似帽状,细胞界限模糊不清 19 h 47 min 286.81 16 h 43 min 242.44
    囊胚中期 细胞层向下扩散,囊胚高度下降,呈小丘状,胚层边缘逐渐平滑 21 h 1 min 304.79 18 h 40 min 270.72
    囊胚晚期 囊胚继续下降,与卵黄囊形成一个近球形 26 h 23 min 382.51 20 h 9 min 292.18
    原肠胚阶段 
    gastrula period
    原肠早期 胚层下包卵黄囊约1/2 42 h 45 min 620.02 38 h 34 min 559.27
    原肠中期 胚盾出现,胚层下包卵黄囊约2/3 49 h 53 min 723.41 42 h 28 min 615.67
    原肠晚期 胚层下包卵黄囊约3/4 53 h 3 min 769.23 51 h 15 min 743.13
    器官形成阶段 
    organogenesis period
    神经胚期 胚体可见,神经板雏形出现 55 h 19 min 802.14
    肌节出现期 胚体前段微隆起,中部出现肌节,胚孔仍可见 58 h 50 min 853.04
    眼囊期 眼囊出现,呈长梭形 61 h 15 min 888.13
    耳囊期 胚体眼囊后两侧出现一对卵圆形耳囊 68 h 37 min 997.99
    胚孔封闭期 胚层将卵黄栓完全包裹,胚孔封闭,胚体明显且超过卵黄囊一半 72 h 15 min 1 047.63
    肌肉效应期 胚体开始扭动,作缓慢的颤动式收缩 75 h 23 min 1 093.16
    尾芽期 尾端略突出,游离于卵黄,尾芽出现 79 h 8 min 1 147.39
    晶体形成期 眼囊中出现圆形、透明晶体 96 h 4 min 1 393.02
    耳石期 耳囊增大,其内可见2个小点,为耳石 101 h 16 min 1 468.27
    围心腔期 头部与卵黄连接处出现围心腔 109 h 22 min 1 586.01
    心脏原基期 围心腔内可见呈短管状的心脏原基 116 h 16 min 1 685.05
    心跳期 心脏开始有节律地搏动,频率52~
    58 次·min–1
    121 h 22 min 1 614.72
    出膜阶段 
    incubation period
    出膜前期 胚体运动加剧,运动幅度加大 139 h 59 min 2 029.71
    出膜期 胚体尾部击破卵膜,尾部伸出膜外,胚体脱离卵膜 144 h 20 min 2 092.79
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    1) 受精卵阶段。刚受精时,受精卵呈黄色球形,卵径约3.24 mm (图1-1);然后开始吸水膨胀,卵周隙增大,受精后45 min,受精卵吸水膨胀到最大,直径约为4.05 mm,卵膜呈透明状(图1-2)。受精后3 h 35 min,原生质不断向动物极集中并隆起形成类似盘状结构,即为胚盘,此时进入胚盘期(图1-3)。

    图  1  短须裂腹鱼 (♀) ×鲈鲤 (♂) 的F1 胚胎发育
    1. 受精卵期;2. 吸水膨胀;3. 胚盘隆起期;4. 2 细胞期;5. 4 细胞期;6. 8 细胞期;7. 16 细胞期;8. 桑葚胚期;9. 囊胚早期;10. 囊胚中期;11. 囊胚晚期;12. 原肠早期;13. 原肠中期;14. 原肠晚期;15. 神经胚期;16. 肌节出现期;17. 眼囊期;18. 耳囊期;19. 胚孔封闭期;20. 肌肉效应期;21. 尾芽期;22. 晶体形成期;23. 耳石期;24. 围心腔期;25. 心脏原基期;26. 心跳期;27. 出膜前期;28. 出膜期;标尺=1 mm
    Fig. 1  Embryonic development of hybrid S. wangchiachii (♀)×P. pingiping (♂)
    1. fertilized egg; 2. swelling stage; 3. blastoderm stage; 4. 2-cell stage; 5. 4-cell stage; 6. 8-cell stage; 7. 16-cell stage; 8. multi-cell stage; 9. early-blastula stage; 10. mid-blastula stage, 11. late-blastula stage; 12. early-gastrula stage; 13. mid-gastrula stage; 14. late-gastrula stage; 15. neurula stage; 16. muscle burl stage; 17. eye vesicle stage; 18. otocyst stage; 19. blastopore closing stage; 20. muscular contraction stage; 21. tailbud formed stage; 22. eye lens formed stage; 23. otolithes stage; 24. pericardiac coelom stage; 25. rudiment of heart stage; 26. heart-beating stage; 27. pre-hatching stage; 28. hatching stage; bar=1 mm

    2) 卵裂阶段。受精后4 h 50 min,胚盘向两边拉伸,其表面凹陷形成分裂沟,随着发育不断加深,分裂沟将胚盘一分为二,形成大小相似的2个细胞,即为2细胞期(图1-4);受精后5 h 44 min分裂球再次分裂,分裂沟与第一次分裂沟垂直,形成大小相似的4个细胞,进入4细胞期(图1-5);分裂球继续呈几何级数增加,受精后6 h 30 min形成大小相似的8个细胞,即为8细胞期(图1-6);受精后7 h 53 min分裂形成16个细胞,即为16细胞期(图1-7);随后分裂速度加快,依次形成32个细胞、64个细胞,随着细胞数目增多,细胞界限开始模糊,受精后16 h 50 min形成多细胞胚体,呈桑葚状,即为桑葚胚期(图1-8)。

    3) 囊胚阶段。细胞继续分裂,细胞层数和数量不断增加,受精后19 h 47 min细胞团高高隆起,形似帽状,细胞界限模糊不清,即为囊胚早期(图1-9);隆起的细胞层向下扩散,逐渐变低,并开始下包,囊胚高度下降,受精后21 h 1 min呈小丘状,胚层边缘逐渐平滑,即为囊胚中期(图1-10);囊胚继续下包,受精后26 h 23 min囊胚细胞紧贴卵黄,与卵黄一起近似球形,进入囊胚晚期(图1-11)。

    4) 原肠胚阶段。随着细胞的进一步分裂,动物极细胞数目越来越多并逐渐向植物极方向延伸,受精后42 h 45 min胚层下包卵黄囊约1/2,即为原肠胚早期(图1-12);受精后49 h 53 min胚盾出现,胚层下包卵黄囊约2/3,为原肠胚中期(图1-13);受精后53 h 3 min胚层下包卵黄囊3/4,进入原肠胚晚期(图1-14)。

    5) 器官形成阶段。受精后55 h 19 min胚层即将包完卵黄,胚体可见,神经板雏形出现,此时为神经胚期(图1-15);受精后58 h 50 min进入肌节形成期,胚体前段微微隆起,中部出现约8节肌节(图1-16),此时胚孔仍可见;受精后61 h 15 min头部两侧分化出2个眼囊,呈长梭形,即为眼囊期(图1-17);受精后68 h 37 min肌节进一步增多,约20节,胚体眼囊后两侧出现一对卵圆形耳囊,比眼囊小,进入耳囊期(图1-18);受精后72 h 15 min胚层将卵黄栓完全包裹,胚孔封闭,胚体长超过卵黄囊一半,此时为胚孔封闭期(图1-19),在胚孔封闭期观察到轻微的卵黄运动(图 2)。受精后75 h 23 min胚体开始扭动,频率和幅度都较小,约15次·min–1,作缓慢的颤动式收缩,进入肌肉效应期(图1-20);受精后79 h 8 min尾端略突出,游离于卵黄,尾芽出现,即为尾芽期(图1-21),此时胚体运动加剧,约40次·min–1;受精后96 h 4 min眼囊中出现圆形、透明晶体,进入晶体形成期(图1-22);受精后101 h 16 min耳囊增大,其内可见2个小点,为耳石,胚体发育至耳石期(图1-23);受精后109 h 22 min头部与卵黄连接处出现空的围心腔,即为围心腔期(图1-24);受精后116 h 16 min围心腔增大,其内可见呈短管状的心脏原基,即为心脏原基期(图1-25);受精后121 h 22 min心脏进入心跳期,开始有节律地搏动,频率为52~58次·min–1 (图1-26)。

    图  2  短须裂腹鱼 (♀) ×鲈鲤 (♂) 的F1 代卵黄运动过程
    Fig. 2  Yolk movement process of hybrid of S. wangchiachii (♀) and P. pingipingi (♂)

    6) 出膜阶段。受精后139 h 59 min胚体运动剧烈,运动幅度大,胚体即将出膜,此时为出膜前期(图1-27);受精后144 h 20 min胚体尾部将卵膜击破,尾部随即伸出卵膜外,伴随着不停摆动,胚体逐渐脱离卵膜,即为出膜期,初孵仔鱼长度约为(10.85±0.21) mm (图1-28)。

    1) 仔稚鱼发育特征。短须裂腹鱼(♀) ×鲈鲤(♂)杂交的F1代仔稚鱼发育良好(图3),参照国内外的划分方法将其发育时期划分为3个阶段:卵黄囊期仔鱼(刚出膜仔鱼至卵黄囊消失时),历时17 d;晚期仔鱼(从卵黄囊消失至鳍条发育完整),历时45 d;稚鱼期(从鳍条发育完成至鳞被覆盖完毕),历时105 d (表 2)。

    图  3  短须裂腹鱼 (♀) ×鲈鲤 (♂) 的F1 代仔稚鱼发育
    1. 1 d 仔鱼;2. 2 d 仔鱼;3. 3 d 仔鱼;4. 4 d 仔鱼;5. 5 d 仔鱼;6. 6 d 仔鱼;7. 7 d 仔鱼;8. 8 d 仔鱼;9. 9 d 仔鱼;10. 10 d 仔鱼;11. 11 d 仔鱼;12. 12 d 仔鱼;13. 13 d 仔鱼;14. 14 d 仔鱼;15. 15 d 仔鱼;16. 16 d 仔鱼;17. 17 d 仔鱼;18. 45 d 仔鱼;19. 105 d 稚鱼;标尺=1 mm
    Fig. 3  Larvae and juveniles development of hybrid S. wangchiachii (♀)×P. pingipingi (♂)
    1. 1 d larvae; 2. 2 d larvae; 3. 3 d larvae; 4. 4 d larvae; 5. 5 d larvae; 6. 6 d larvae; 7. 7 d larvae; 8. 8 d larvae; 9. 9 d larvae; 10. 10 d larvae; 11.11 d larvae; 12. 12 d larvae; 13. 13 d larvae; 14. 14 d larvae; 15. 15 d larvae; 16. 16 d larvae; 17. 17 d larvae; 18. 45 d larvae; 19. 105 d juveniles; bar=1 mm
    表  2  短须裂腹鱼 (♀) ×鲈鲤 (♂) 仔稚鱼发育特征表
    Table  2  Larval and juvenile development schedule of hybrid of S. wangchiachii (♀) and P. pingipingi (♂)
    时间
    time
    特征
    characteristic
    全长/mm
    total length
    体长/mm
    body length
    图序
    No. of picture
    第1天 1st day 内源性营养,卵黄囊占鱼体比值较大,前段膨大呈球状,大小约1.96 mm×1.76 mm,头部与球状卵黄囊夹角约为30°,后端呈棒状,仔鱼活动较少,多卧于水底 11.36±0.26 8.47±0.31 图3-1
    第2天 2nd day 前卵黄囊与头部夹角约45°,心脏搏动微弱,心率约55 次·min–1,心脏附近可见红色血液流动,耳石明显 11.49±0.27 8.53±0.24 图3-2
    第3天 3rd day 前卵黄囊与头部夹角约为90°,眼球出现黑色素 12.71±0.13 9.02±0.12 图3-3
    第4天 4th day 眼球黑色素明显增多,卵黄囊体积进一步缩小 12.98±0.29 9.68±0.23 图3-4
    第5天 5th day 卵黄囊上出现一条明显的血管,胸鳍原基出现,上下颌开始张合,约8 次·min–1 13.37±0.57 9.78±0.48 图3-5
    第6天 6th day 鳃可见明显红色血液流动 14.12±0.42 10.11±0.37 图3-6
    第7天 7th day 背部出现少量呈星芒状的黑色素,全身血液颜色加深,心脏搏动有力,心率约75 次·min–1 14.41±0.36 10.28±0.44 图3-7
    第8天 8th day 胸鳍形成,背鳍原基出现,上下颌张合明显,约35 次·min–1 14.79±0.59 10.49±0.61 图3-8
    第9天 9th day 上下颌张合剧烈,约97 次·min–1,心率85 次·min–1 15.04±0.64 10.52±0.41 图3-9
    第10天 10th day 胸鳍充分伸展,可摆动,头顶和背部黑色素增多,卵黄囊上也出现黑斑,心跳更剧烈,约105 次·min–1 15.09±0.68 10.54±0.52 图3-10
    第11天 11th day 尾部出现少量黑色素,尾鳍下叶出现4~8个鳍条 15.18±0.32 10.58±0.31 图3-11
    第12天 12th day 尾部黑色素增多,游泳迅速,鳔充气 15.33±0.48 10.61±0.36 图3-12
    第13天 13th day 背鳍原基隆起呈三角形,卵黄囊吸收约1/2 15.45±0.66 10.66±0.57 图3-13
    第14天 14th day 尾鳍鳍条分支增多,约8~14个 15.85±0.61 10.82±0.48 图3-14
    第15天 15th day 卵黄囊吸收约2/3 15.95±0.72 11.07±0.57 图3-15
    第16天 16th day 背鳍出现2~4个鳍条 16.02±0.57 11.13±0.46 图3-16
    第17天 17th day 卵黄消耗完,尾鳍鳍膜边缘开始内凹,肠道有明显排遗,进入后期仔鱼 16.11±0.43 11.19±0.36 图3-17
    第45天 45th day 胸鳍、尾鳍、背鳍、臀鳍、腹鳍鳍条基本发育完整,躯干呈半透明状,进入稚鱼期 25.84±0.82 19.46±0.62 图3-18
    第105天 105th day 鳞被已覆盖完毕,背部呈青黑色,腹部灰白色,已基本具备成鱼的身体特征,进入幼鱼期 56.74±0.53 45.87±0.67 图3-19
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    2) 仔稚鱼生长情况。初孵仔鱼全长为(10.85±0.21) mm,体长为(8.23±0.18) mm,出膜第17天仔鱼全长为(16.11±0.43) mm,体长为(11.19±0.36) mm,出膜第105天幼鱼全长为(56.74±0.53 mm),体长为(45.87±0.67) mm,总体呈明显增长趋势(图 4)。

    图  4  短须裂腹鱼 (♀) ×鲈鲤 (♂) 仔稚鱼生长指数图
    Fig. 4  Growth index of larvae and juveniles of hybrid of S. wangchiachii (♀) and P. pingipingi (♂)

    鲈鲤的成熟卵为金黄色、沉性、微黏性。在平均水温(14.5±1.0) ℃条件下,前期发育较正常,发育至原肠期所需时间为51 h 15 min,所需积温为743.13 h·℃ (表 1)。

    刚受精时,受精卵呈球形,卵径约为2.32 mm,然后开始吸水膨胀,受精后1 h 1 min,受精卵吸水膨胀到最大,直径约为3.26 mm,此后发育过程除时间长短外均与正交一致。

    囊胚期开始死亡个体增多,原肠期末有85.83%的胚胎死亡,原因多为下包过程中卵黄膜破裂,卵黄物质溢出导致胚胎死亡,另外在囊胚期和原肠期卵黄内出现异常团块(图 5)。经过原肠期的胚胎,个体之间发育时间相差较大,最后仅12尾出膜,且出膜后的仔鱼均畸形,多为围心腔肿大、体轴弯曲和棒状卵黄囊细短或无(图 5),出膜3 d后畸形个体全部死亡。

    图  5  鲈鲤 (♀) ×短须裂腹鱼 (♂) F1 代死亡胚胎和仔鱼
    a. 卵黄外出现不明团块;b. 卵黄膜破裂,卵黄物质溢出;c. 围心腔肿大仔鱼;d. 棒状卵黄囊细短仔鱼;e. 体轴弯曲仔鱼;标尺=1 mm
    Fig. 5  Dead embryos and larvae of hybrid of P. pingipingi (♀) and S. wangchiachii (♂)
    a. an unidentified mass appears outside the yolk; b. membrane of yolk rupture; yolk is leaking; c. pericardial swelling in the larvae; d. the clavicularyolk is short; e. the body axis of fish bends; bar=1 mm

    温度是鱼类胚胎发育过程中的重要因素。左鹏翔等[22]在(19±1) ℃条件下观察的鲈鲤胚胎发育时间为101 h 40 min,赖见生等[23]在(18.0±0.5) ℃时观察的鲈鲤胚胎发育时间为126 h 28 min,王永明等[24]在(15.0±0.7) ℃时观察鲈鲤胚胎发育时间为164 h;左鹏翔等[20]在(14±1) ℃条件下观察的短须裂腹鱼的胚胎发育时间为254 h 40 min,刘阳等[19]在12.7~14.0 ℃时观察到短须裂腹鱼胚胎发育时间为192 h。由此可见,适当的温度范围内,两亲本胚胎发育时间受发育温度的影响,且温度越高,发育时间越短。本研究在水温(14.5±1.0) ℃条件下,短须裂腹鱼(♀) ×鲈鲤(♂)的F1代胚胎发育时间为144.33 h。发育温度相近时,杂交F1代的胚胎发育速度快于短须裂腹鱼与鲈鲤。推测是由于杂种优势导致其胚胎发育速度增快,或不同地区水质不同以及孵化条件的差异等导致胚胎发育时间的不同。

    在黄河裸裂尻鱼(Schizopygopsis pylzovi)[30]、胡子鲇(Clarias fuscus)[31]的胚胎发育过程中均有强烈的卵黄运动,短须裂腹鱼(♀) ×鲈鲤(♂)的F1代在胚孔封闭期观察到轻微的卵黄运动。在短须裂腹鱼[19-21]和鲈鲤[22-24]的胚胎发育及裂腹鱼亚科其他鱼类,如尖裸鲤(Oxygymnocypris stewartii)[32]、小裂腹鱼(S. parvus)[33]、细鳞裂腹鱼(S. chongi)[34]等中均未见有卵黄运动的报道。刘文生等[31]认为卵黄运动有助于细胞在卵黄囊上排列以及对以后细胞分化的调整,推测杂交F1代胚胎发育速度快于亲本可能与卵黄运动有关,但卵黄运动具体形成原因及其对胚胎发育的影响机制有待进一步研究。

    短须裂腹鱼(♀) ×鲈鲤(♂)的F1代胚胎发育过程与亲本基本一致,但也有其自身特点,尤其是器官发育阶段,鲈鲤和短须裂腹鱼均是在胚孔封闭后开始出现肌节、眼囊和耳囊,而其杂交F1代是出现肌节和眼囊、耳囊后胚孔才封闭,可能由于不同鱼类的胚胎发育具有其独特性[35],所以具体发育过程不尽相同。

    短须裂腹鱼(♀) ×鲈鲤(♂)的F1代卵黄期仔鱼前期主要由卵黄囊提供营养物质,后期以丰年虫投喂,生长加快,其外形与双亲基本一致。仔鱼从孵化到卵黄囊吸收完毕历时17 d,其发育情况与生长指数均接近短须裂腹鱼[19-21]。目前未见短须裂腹鱼稚鱼发育的相关报道,杂交F1代仔稚鱼历时105 d发育完成,生长优势不明显,发育速度与生长速度均慢于鲈鲤[23]。推测杂交F1代后期仔鱼和稚鱼的生长速度更接近短须裂腹鱼,相较于亲本,短须裂腹鱼(♀) ×鲈鲤(♂)的F1代仔稚鱼生长发育的差异还有待进一步的实验验证。

    短须裂腹鱼和鲈鲤属于不同亚科之间的远缘杂交,具有一定的遗传多样性。目前,对短须裂腹鱼和鲈鲤杂交育种的研究有限,杂交F1代在对环境因子的耐受性、抗病力等方面是否优于亲本,还有待实验验证。本实验的研究结果将为以后的进一步研究提供理论基础。

  • 图  1   添加恩诺沙星与环丙沙星标准溶液色谱图

    Figure  1.   Chromatogram of standard solutions of enrofloxacin and ciprofloxacin

    图  2   方斑东风螺各组织中恩诺沙星药时曲线

    Figure  2.   Enrofloxacin drug time curves in various tissues of B. areolate

    图  3   方斑东风螺组织中环丙沙星药时曲线

    Figure  3.   Ciprofloxacin drug time curves in various tissues of B. areolate

    图  4   恩诺沙星(含环丙沙星)在组织中的休药期

    Figure  4.   Dormancy period of enrofloxacin (With ciprofloxacin) in tissues

    表  1   MRM模式下化合物质谱检测参数

    Table  1   Compound mass spectrometry detection parameters under MRM mode

    化合物
    Compound
    相对分子质量
    Relative molecular
    mass
    检测离子对
    Detecting
    ion pairs
    定量离子对
    Quantitative
    ion-pairing
    碰撞能量
    Collision
    energy/eV
    表恩诺沙星
    ENR
    359.40 360/342 360/342 26
    360/245 18
    环丙沙星
    CIP
    331.35 332/316 332/316 30
    332/288 32
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    表  2   各组织中恩诺沙星回收率与日内、日间变异系数

    Table  2   Enrofloxacin recoveries and intra-day inter-day coefficients of variation in various tissues

    指标
    Index
    质量浓度
    Mass concentration/
    (μg·mL−1)
    腹足肌肉
    Gastropod muscle
    吻管
    Proboscis
    肝脏
    Liver
    ENR CIP ENR CIP ENR CIP
    相对回收率
    Relative recovery rate/%
    0.1 95.92 87.73 89.70 85.40 92.40 92.31
    1.0 99.31 102.51 92.21 97.67 94.70 93.25
    10.0 101.65 98.20 97.84 101.25 92.35 94.26
    平均值 Mean 98.96 96.15 93.25 94.77 93.15 93.27
    日内变异系数
    Intraday coefficient of variation/%
    0.1 5.48 3.25 3.58 2.78 5.27 4.55
    1.0 6.91 3.34 4.28 3.13 7.16 4.73
    10.0 7.21 4.89 5.22 5.02 6.34 5.26
    平均值 Mean 6.53 3.83 4.36 3.64 6.26 4.85
    日间变异系数
    Interday coefficient of variation/%
    0.1 6.75 3.34 5.31 6.24 6.37 5.22
    1.0 7.24 5.58 4.88 7.11 6.58 3.17
    10.0 7.58 6.52 6.87 3.89 8.01 3.86
    平均值 Mean 7.19 5.15 5.69 5.75 6.99 4.08
    注:ENR. 恩诺沙星标准品;CIP. 环丙沙星标准品;n=3。 Note: ENR. Enrofloxacin; CIP. Ciprofloxacin; n=3.
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    表  3   恩诺沙星及其代谢物环丙沙星在方斑东风螺体内药动学参数

    Table  3   Pharmacokinetic parameters of enrofloxacin and its metabolite ciprofloxacin in B. areolate

    统计矩阵模型参数
    Statistical matrix model parameter
    组织 Tissue
    腹足肌肉
    Gastropod muscle
    吻管
    Proboscis
    肝脏
    Liver
    ENR CIP ENR CIP ENR CIP
    曲线下面积 AUC(0-t)/[mg·(L·h)−1] 133.330 25.682 183.250 28.465 439.870 49.719
    AUC(0-∞)/ [mg·(L·h)−1] 133.358 25.757 183.296 28.467 439.961 49.721
    平均驻留时间MRT(0-t)/h 16.904 32.092 16.110 24.497 13.476 30.890
    MRT(0-∞)/h 16.993 33.327 16.216 24.838 13.565 31.045
    VRT(0-t)/h2 535.747 1 138.917 415.691 537.463 419.861 802.940
    VRT(0-∞)/h2 571.720 1 684.493 461.342 662.036 460.436 856.366
    消除半衰期 t1/2z/h 38.218 66.623 52.436 33.109 62.403 27.060
    表观分布容积 Vz/F/(L·kg−1) 8.271 74.651 8.256 33.566 4.093 15.707
    总体清除率 CLz/F/[L·(h·kg)−1] 0.150 0.777 0.109 0.703 0.045 0.402
    达峰浓度 Cmax/(mg·L−1) 7.820 0.723 10.500 0.893 31.470 1.211
    达峰时间 tmax/h 1 4 4 12 4 4
    注:ENR. 恩诺沙星标准品;CIP. 环丙沙星标准品;n=3。 Note: ENR. Enrofloxacin; CIP. Ciprofloxacin; n=3.
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    表  4   恩诺沙星在方斑东风螺各组织的消除拟合方程和参数

    Table  4   Fitting equations and parameters for elimination of enrofloxacin in various tissues of B. areolate

    组织 Tissue 拟合方程 Fitted equation 相关系数 r2 消除半衰期 t1/2z/d
    腹足肌肉 Gastropod muscle y=−0.012+8.364et/1.102 0.998 1.765
    吻管 Proboscis y=−0.057+11.551et/1.241 0.975 1.873
    肝脏 Liver y=−0.075+21.709et/1.081 0.987 1.753
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  • [1]

    VANCUTSEM P M, BABISH J G, SCHWARK W S, et al. The fluoroquinolone antimicrobials: structure, antimicrobial activity, pharmacokinetics, clinical use in domestic animals and toxicity[J]. Cornell Vet, 1990, 80(2): 173-186.

    [2] 栾雅芝. 凡纳滨对虾养殖系统溶藻弧菌 (Vibrio alginolyticus)的分离与控制方法研究[D]. 青岛: 青岛理工大学, 2023: 11.
    [3] 席峰, 颜立立, 潘春霖, 等. 鱼类恩诺沙星药物残留风险、成因与消减技术研究进展[J]. 食品安全质量检测学报, 2023, 14(5): 155-163. doi: 10.3969/j.issn.2095-0381.2023.5.spaqzljcjs202305021
    [4] 李张婵, 施慧, 许文军, 等. 大黄鱼内脏白点病病原拮抗菌的分离鉴定及生物学特性研究[J]. 南方水产科学, 2023, 19(3): 78-87. doi: 10.12131/20220251
    [5] 侯璐瑶, 杨雨航, 陈言峰, 等. 黄芩苷在水产养殖中的应用研究进展[J]. 饲料研究, 2021, 44(23): 139-142.
    [6] 席峰, 颜立立, 潘春霖, 等. 鱼类恩诺沙星药残消除研究进展[J]. 水产学报, 2023, 47(10): 227-247.
    [7] 王欢, 许荔立, 吴志新, 等. 不同温度下恩诺沙星在克氏原螯虾体内的药代动力学[J]. 华中农业大学学报, 2021, 40(1): 112-119.
    [8] 潘明轩, 李兆新, 邢丽红, 等. 恩诺沙星及其代谢产物在南美白对虾体内药代动力学研究[J]. 食品安全质量检测学报, 2018, 9(6): 1261-1268. doi: 10.3969/j.issn.2095-0381.2018.06.007
    [9] 余开, 赵青松, 陈寅儿, 等. 恩诺沙星在三疣梭子蟹主要组织中的代谢动力学[J]. 生物学杂志, 2011, 28(4): 21-25. doi: 10.3969/j.issn.2095-1736.2011.04.021
    [10] 方龙香, 陈曦, 黄铢玉, 等. 中华绒螯蟹不同可食部位对恩诺沙星的富集效应研究[J]. 中国渔业质量与标准, 2022, 12(1): 29-36. doi: 10.3969/j.issn.2095-1833.2022.01.004
    [11] 刘洋锋. 非药品类渔药投入品中未标识农兽药筛查及其对水产养殖的影响研究[D]. 上海: 上海海洋大学, 2022: 42.
    [12] 黄聚杰. 六种抗菌药物在花鲈体内的药代动力学及残留消除规律[D]. 厦门: 集美大学, 2016: 19.
    [13] 吴少坤. 三种抗菌药物在大菱鲆体内的药代动力学及残留消除规律[D]. 厦门: 集美大学, 2018: 3.
    [14] 孙铭, 翟倩倩, 常志强, 等. 不同浓度磺胺二甲嘧啶对中国对虾APND、ECOD和GST活性的影响[J]. 中国海洋大学学报, 2016, 46(10): 16-23.
    [15] 黄聚杰, 林茂, 鄢庆枇, 等. 氟苯尼考在花鲈体内的代谢及残留消除规律[J]. 中国渔业质量与标准, 2016, 6(3): 6-13.
    [16] 李改娟, 刘艳辉, 戴欣, 等. 不同水温联合用药中恩诺沙星在鲤体内的药代动力学及残留的影响[J]. 吉林农业大学学报, 2017, 39(4): 471-476.
    [17] 张国栋. 青蒿素对斑点叉尾鮰体内恩诺沙星药代动力学及残留消除规律的影响[D]. 上海: 上海海洋大学, 2022: 29.
    [18] 茅玲燕. 恩诺沙星在中华草龟体内的药物代谢动力学研究[D]. 上海: 上海海洋大学, 2022: 14.
    [19] 董军, 张思雨, 房迪, 等. 恩诺沙星及其代谢物环丙沙星在牛蛙体内的残留消除规律研究[J]. 淡水渔业, 2024, 54(1): 66-75. doi: 10.3969/j.issn.1000-6907.2024.01.008
    [20] 曹鹏. 山东省出口水产品药物残留分析及代谢动力学研究[D]. 泰安: 山东农业大学, 2012: 84.
    [21] 吴银宝, 廖新俤, 汪植三, 等. 兽药恩诺沙星 (enrofloxacin) 的水解特性[J]. 应用生态学报, 2006(06): 1086-1090. doi: 10.3321/j.issn:1001-9332.2006.06.025
    [22] 张照荷, 陈典, 赵微, 等. 水环境中药物与个人护理品 (PPCPs) 的环境水平及降解行为研究进展[J]. 岩矿测试, 2023, 42(4): 649-666.
    [23] 朱凤娇. 恩诺沙星在中华绒螯蟹模拟养殖系统中的分布及其耐药性在转录水平的研究[D]. 上海: 上海海洋大学, 2017: 11.
    [24] 朱晓漫, 刘永涛, 杨秋红, 等. 恩诺沙星乳在罗非鱼体内的药代动力学及组织分布[J]. 淡水渔业, 2021, 51(4): 42-48. doi: 10.3969/j.issn.1000-6907.2021.04.006
    [25] 林丽聪, 樊海平, 王茂元, 等. 丁香酚在罗非鱼体内的代谢和休药期研究[J]. 渔业研究, 2020, 42(5): 486-491.
    [26] 张超硕. 恩诺沙星在黄河鲤鱼体内的药动学和组织分布研究[D]. 洛阳: 河南科技大学, 2022: 44.
    [27] 詹士立, 何欣, 陈效燕, 等. 恩诺沙星在俄罗斯鲟体内残留消除规律研究[J]. 中国渔业质量与标准, 2023, 13(1): 10-18.
    [28]

    MARTINEZ M, MCDERMOTT P, WALKER R, et al. Pharmacology of the fluoroquinolones: a perspective for the use in domestic animals[J]. Vet J, 2006, 172: 10-18 doi: 10.1016/j.tvjl.2005.07.010

    [29] 秦改晓, 徐文彦, 艾晓辉, 等. 阿维菌素在草鱼体内的药物代谢动力学研究[J]. 西北农林科技大学学报, 2012, 40(8): 13-20.
    [30]

    URZÚA N, MESSINA M , PRIETO G, et al. Pharmacokinetics and tissue disposition of enrofloxacin in rainbow trout after different routes of administration[J]. Xenobiotica, 2020, 50(10): 1236-1241.

    [31]

    XU L J, WANG H, YANG X L, et al. Integrated pharmacokinetics/pharmacodynamics parameters−based dosing guidelines of enrofloxacin in grass carp Ctenopharyngodon idella to minimize selection of drug resistance[J]. BMC Vet Res, 2013, 9: 126. doi: 10.1186/1746-6148-9-126

    [32]

    CHEN M, ZHAO H X, WANG Y, et al. Uptake and depuration of eight fluoroquinolones FQs in common carp Cyprinus carpio[J]. Ecotox Environ Safe, 2019, 180: 202-207. doi: 10.1016/j.ecoenv.2019.04.075

    [33]

    UNEY K, TERZI E, CORUM D D, et al. Pharmacokinetics and pharmacokinetic/pharmacodynamic integration of enrofloxacin following single oral administration of different doses in brown trout Salmo trutta[J]. Animals, 2021, 11(11): 3086. doi: 10.3390/ani11113086

    [34]

    MORALES-GUTIÉRREZ F J, BARBOSA J, BARRÓN D, et al. Metabolic study of enrofloxacin and metabolic profile modifications in broiler chicken tissues after drug administration[J]. Food Chem, 2015, 172: 30-39.

    [35]

    SCHMITT W. General approach for the calculation of tissue to plasma partition coefficients[J]. Toxicol Vitro, 2008, 22(2): 457-467. doi: 10.1016/j.tiv.2007.09.010

    [36]

    ESCHER B I, SCHWARZENBACH R P, WESTALL J C, et al. Evaluation of liposome-water partitioning of organic acids and bases. 1. Development of a sorption model[J]. Environ Sci Technol, 2000, 34(18): 3954-3961.

    [37]

    ARMITAGE J M, ARNOT J A, WANIA F, et al. Potential role of phospholipids in determining the internal tissue distribution of perfluoroalkyl acids in biota[J]. Environ Sci Technol, 2012, 46(22): 12285-12286. doi: 10.1021/es304430r

    [38]

    TYCZKOWSKA K, HEDEEN K M, AUCOIN D P, et al. High-performance liquid chromatographic method for the simultaneous determination of enrofloxacin and its primary metabolite ciprofloxacin in canine serum and prostatic tissue[J]. J Chromatogr, 1989, 493(2): 337-346.

    [39]

    INTORRE L S, CECCHINI S, BERTINI A M, et al. Pharmacokinetics of enrofloxacin in the seabass (Dicentrarchus labrax)[J]. Aquaculture, 2000, 182: 49-59. doi: 10.1016/S0044-8486(99)00253-7

    [40] 范培莉, 王元, 赵姝, 等. 口灌给药恩诺沙星在斑节对虾体内的药动学和组织中的消除规律研究[J]. 海洋渔业, 2023, 45(2): 191-201. doi: 10.3969/j.issn.1004-2490.2023.02.007
    [41] 王洪艳, 李兆新, 邢丽红, 等. 恩诺沙星及其代谢产物环丙沙星在牙鲆体内代谢消除规律[J]. 渔业科学进展, 2014, 35(3): 44-49. doi: 10.11758/yykxjz.20140307
    [42]

    RUENNARONG N, WONGPANIT K, SAKULTHAEW C, et al. Dispositions of enrofloxacin and its major metabolite ciprofloxacin in Thai swamp buffaloes[J]. J Vet Med Sci, 2016, 78(3): 397-403. doi: 10.1292/jvms.15-0464

    [43]

    TANG J, YANG X L, ZHENG Z L, et al. Phamacokineties and theactive metabolite of enrolloxacin in Chinese mitten-handed crab Eriocheir sinensis[J]. Aquaculture, 2006, 260: 69-76. doi: 10.1016/j.aquaculture.2006.05.036

    [44] 孙维宇. 不同温度下恩诺沙星及代谢物在黄颡鱼体内的药物代谢动力学和残留消除研究[D]. 武汉: 武汉轻工大学, 2022: 1.
    [45]

    YANG F, ZHANG C S, DUAN M H, et al. Pharmacokinetics and tissue distribution of enrofloxacin following single oral administration in Yellow River carp Cyprinus carpio haematoperus[J]. Front Vet Sci, 2022, 9: 822032. doi: 10.3389/fvets.2022.822032

    [46] 牛曰华, 张天闻, 邹红梅, 等. 恩诺沙星及其代谢物环丙沙星在大黄鱼体内的代谢动力学[J]. 中国渔业质量与标准, 2018, 8(1): 24-33. doi: 10.3969/j.issn.2095-1833.2018.01.004
    [47] 李亚男, 孟小宾, 王丹, 等. 基于生理药动学模型预测口服给药后氟苯尼考在肉鸡体内的残留[J]. 中国家禽, 2014, 36(14): 17-21. doi: 10.3969/j.issn.1004-6364.2014.14.005
    [48] 刘志刚, 彭景书, 曹跃明等著. 东风螺健康养殖与质量安全管理[M]. 北京: 中国农业出版社, 2011: 1.
    [49] 王江勇, 王瑞旋, 苏友禄, 等. 方斑东风螺“急性死亡症”的病原病理研究[J]. 南方水产科学, 2013, 9(5): 93-99. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2013.05.015
    [50] 辜良斌, 徐力文, 冯娟, 等. 豹纹鳃棘鲈尾部溃烂症病原菌的鉴定与药敏试验[J]. 南方水产科学, 2015, 11(4): 71-80. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.04.011
    [51] 凌海, 缪天音, 王元, 等. 模拟养殖系统药饵给药后恩诺沙星在异育银鲫体内、水体和底泥中代谢与分布[J]. 水产学报, 2023, 47(5): 162-171.
  • 期刊类型引用(3)

    1. 左鹏翔,金方彭,王志飞,吴俊颉,赵静霞,赵利刚,王文玉,毕晓敏,沈智敏,李波,冷云. 细鳞裂腹鱼(♀)与鲈鲤(♂)杂交及生长对比试验初报. 中国农学通报. 2024(11): 159-164 . 百度学术
    2. 陈军平,沈方方,武慧慧,张佳鑫,于若梦,付永杰,谢国强,赵道全. 我国鱼类胚胎发育研究进展. 江苏农业科学. 2021(17): 45-52 . 百度学术
    3. 梁孟,魏开金,朱祥云,马宝珊,徐滨,徐进. 饥饿和再投喂对短须裂腹鱼幼鱼体组分、消化酶活性及RNA/DNA的影响. 中国农学通报. 2020(23): 151-160 . 百度学术

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  • 收稿日期:  2024-07-03
  • 修回日期:  2024-08-28
  • 录用日期:  2024-09-24
  • 网络出版日期:  2024-10-25
  • 刊出日期:  2024-12-04

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