Effects of glucose glycation on structural and functional properties of limited enzymatic hydrolysates from brown-striped mackerel scad (Decapterus maruadsi) protein isolate
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摘要:
为拓展蓝圆鲹 (Decapterus maruadsi) 分离蛋白的应用范围，促进其高值化利用，以蓝圆鲹分离蛋白限制性酶解产物 (Brown-striped mackerel scad protein isolate limited enzymatic hydrolysate, BPILH) 为原料，采用葡萄糖对其进行糖基化反应，考察不同反应时间对BPILH结构与功能特性的影响。结果表明，葡萄糖与BPILH的糖基化反应程度与反应时间和色度呈正相关。结构表征结果显示，糖基化反应使α螺旋和无规则卷曲含量减少，并降低糖基化产物的内源荧光强度。此外，长时间的高温使蛋白质分子内部的疏水基团暴露，使其表面疏水性增加。溶解度在酸性、碱性条件下随着反应时间的延长呈现先升高后降低的趋势，其中，第8小时糖基化产物的溶解度在pH 10时达到最高值 (90.49±0.01)%。乳化性随着反应时间的延长而增加，与第0小时相比，第12小时糖基化产物的乳化性提升了24.28%，乳化稳定性和持油性均随着反应时间的延长呈现先增加后减少的趋势，在第1小时乳化稳定性达到最高值(17.51±0.13) min，在第2小时持油性达到最高值(2.19±0.21) g·g−1。因此，反应时间过长会对功能特性产生一定的负面影响，研究结果可为蓝圆鲹分离蛋白在食品配料蛋白中的应用提供一定的理论参考。
Abstract:In order to explore the extended application of fish proteins and promote the high value utilization of brown-striped mackerel scad (Decapterus maruadsi), taking the brown-striped mackerel scad protein isolate limited enzymatic hydrolysate (BPILH) as raw material, we used glucose to conduct a glycation reaction to investigate the effects of different reaction time on the structural and functional properties of BPILH. The results show that glucose underwent glycation reaction with BPILH, and the degree of glycation reaction was positively correlated with reaction time and chromaticity. Structural properties results show that the glycation reaction reduced the α-helix and irregular coil content of BPILH and decreased its endogenous fluorescence intensity. In addition, high temperature treatment with long time during glycation reaction exposed the hydrophobic groups inside the protein molecules and increased their surface hydrophobicity. The solubility of glycation BPILH firstly increased and then decreased with the reaction time under acidic and alkaline conditions, in which the glycation solubility of product reached the highest value of (90.49±0.01)% at pH of 10 after 8-hour reaction. The emulsification of glycosylated BPILH increased with the reaction time. Comparied with the original mixture before reaction, the emulsification of the glycation product after 12-hour reaction increased by 24.28%, and both emulsification stability and oil-holding capacity showed an increase-decrease tendency with the reaction time, with the highest value of emulsification stability of (17.51±0.13) min at 1st hour and oil-holding capacity of (2.19±0.21) g·g−1 at 2nd hour. The emulsification stability of glycation product increased by 24.28% with the reaction time. Therefore, long reaction time may have some negative effects on the functional properties, and this study provides theoretical references for the application of brown-striped mackerel scad protein isolate in food industry.
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中国对虾 (Fenneropenaeus chinensis)，又名中国明对虾、明虾，体型大，价格昂贵，是黄、渤海区重要的经济虾类之一。其蛋白质含量高，富含镁 (Mg)、铁 (Fe) 等多种微量元素，营养价值高[1]。中国对虾在贮运流通过程中易发生黑变，严重影响商品价值。研究表明，虾体中的酪氨酸在有氧条件下经酚氧化酶 (Phenoloxidase, PO) 催化生成L-3,4-二羟基苯丙氨酸 (Levodopa, L-DOPA)，进一步生成醌类化合物，而醌类物质极不稳定，可自发聚合生成黑色素，或者与蛋白质官能团交联生成黑色素，导致黑变发生[2]。虾的防黑保鲜一直是国内外研究的热点，目前虾类保鲜除控制温度外，主要采用化学方法。生产中常用亚硫酸盐类、4-己基间苯二酚 (4-hexylresorcinol, 4-HR) 等化学试剂来延缓虾的黑变。GB 2760—2014《食品添加剂使用标准》明确规定了焦亚硫酸钠和4-HR的残留限量，即虾体内二氧化硫 (SO2) 残留量不得超过0.1 g·kg−1，4-HR残留量不得超过1 mg·kg−1。国内外学者对亚硫酸盐类[3-5]和4-HR[6-7]在虾类防黑保鲜中的应用进行了系列研究，发现在限量范围内，亚硫酸盐和4-HR的防黑效果有限，且过量使用则可能产生安全问题[8]。近年来的相关研究多聚于一些天然植物提取物，如植物多酚[9]、石榴皮提取物[10]、绿茶提取物[11]等，在抑制虾类黑变方面表现出较大的应用潜力。将这些天然植物提取物与焦亚硫酸钠、4-HR等复配使用，有助于解决单一成分防黑效果不理想的问题[12]。
本研究在GB 2760限定范围内对具有潜在防黑作用的物质进行筛选，将常用的焦亚硫酸钠、4-HR与筛选确定的天然植物提取物进行复配，通过正交试验确定了复合防黑保鲜剂的最优配比，并对其在中国对虾防黑保鲜方面的应用效果进行了验证。研究结果为虾类绿色高效防黑保鲜剂的开发与应用提供参考。
1. 材料与方法
1.1 材料与试剂
鲜活中国对虾购于青岛市崂山区沙子口码头，体长 (19.7±1.25) cm，体质量 (62.5±10.0) g，充氧保活条件下2 h内运至实验室，经暂养后流水冲洗，然后加冰猝死，置于无菌样品袋中备用。
石榴皮提取物 (纯度为90%)、葡萄籽提取物 (纯度为95%) (均为食品级) 购自陕西昊辰生物科技有限公司；竹叶抗氧化物 (食品级) 购自河南豫中生物科技有限公司；三氯乙酸 (TCA)、抗坏血酸、焦亚硫酸钠、硫代巴比妥酸 (TBA)、4-己基间苯二酚 (均为分析纯) 购自国药集团化学试剂有限公司。
1.2 仪器与设备
METTLER TOLEDO (梅特勒托利多) 分析天平 (苏州赛恩斯仪器有限公司)；T18高速分散机 (德国IKA公司)；SHA-B恒温振荡器 (常州国语仪器制造有限公司)；5PX-25085H-II生化培养箱 (上海新苗医疗器械有限公司)。
1.3 方法
1.3.1 对虾酚氧化酶的提取与纯化
参照Zhang等[13]的方法提取酚氧化酶粗酶，并略作调整。将虾的头胸部经液氮冷冻后研磨成粉，按照1∶3 (m∶v) 的比例将头胸部粉末与缓冲液 [0.05 mol·L−1、pH 7.2磷酸盐缓冲液，含0.2% (w) Brij-35和1 mol·L–1氯化钠 (NaCl)] 混合，4 ℃下搅拌30 min，过滤，将上清液于4 ℃、8 000 r·min–1离心30 min，过滤，得到的上清液即为粗酶液。
参照Sae-Leaw和Benjakul[14]的方法对酚氧化酶粗酶进行纯化。称取一定质量的硫酸铵固体加入到酚氧化酶粗酶液中，使其质量分数达50%，静置30 min后于8 000 r·min–1条件下离心30 min，去除上清液，收集沉淀于透析袋中透析24 h，期间更换3次透析液，透析结束后进行浓缩，8 000 r·min–1离心30 min，除去不溶物。经硫酸铵沉淀后的粗酶液上样于弱阴离子交换柱DEAE Sepharose Fast Flow (1.6 cm×25 cm)，用0.05 mol∙L–1的磷酸盐 (pH 7.2) 清洗柱至A280 nm小于0.05，分别使用含0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mol·L–1 NaCl的磷酸盐缓冲液 (0.05 mol·L–1, pH 7.2) 进行洗脱，流速1 mL·min–1，测定各管的酚氧化酶活性，将有酚氧化酶活性和蛋白峰的管分别合并，利用超滤管对其除盐浓缩后置于−80 ℃中保存备用。
1.3.2 不同物质对酚氧化酶活性的影响
参照Nirmal等[15]的方法并略有改动。将不同质量浓度 (1.0、3.0、5.0、7.0、10.0 g·L–1) 的抗坏血酸、竹叶抗氧化物、石榴皮提取物、葡萄籽提取物与酚氧化酶溶液按1∶1 (v∶v)的比例混合，室温下反应30 min后与底物L-DOPA溶液 (15 mmol·L–1，去离子水溶解) 混合，45 ℃水浴中孵育3 min，测定其475 nm处的动力学曲线。对照组以去离子水代替。试验结果以相对于酚氧化酶最大酶活的百分比表示。1个酶活力单位(U)定义为，在475 nm波长下，单位体积酶溶液 (mL) 在单位时间 (min) 内使酶促反应吸光度值增加0.001，用U·mL–1酶液表示。
1.3.3 复合保鲜剂配比优化
预试验发现，焦亚硫酸钠溶液质量浓度不超过15 g·L–1时，处理对虾体内的SO2残留量低于0.1 g·kg–1；4-HR溶液质量浓度不超过50 mg·L–1时，4-HR残留量不高于1 mg·L–1。基于预试验结果，并参照文献[12]，选取抗坏血酸、竹叶抗氧化物、焦亚硫酸钠、4-HR，分别设置质量浓度为1.0~5.0 g·L–1、1.0~5.0 g·L–1、13.0~15.0 g·L−1、30.0~50.0 mg·L–1。采用4因素、3水平L9 (34) 正交试验 (表1) 对复合保鲜剂的配比进行优化。以中国对虾酚氧化酶活性为指标，对照组以去离子水代替，每组取3次平行样。
表 1 复合保鲜剂配方正交试验设计Table 1. Orthogonal experiment design of compound anti-blackening preservative水平
LevelA：抗坏血酸
Ascorbic acid/(g·L–1)B：竹叶抗氧化物
Bamboo leaf antioxidant/(g·L–1)C：焦亚硫酸钠
Sodium metabisulfite/(g·L–1)D：4-HR
4-hexylresorcinol/(mg·L–1)1 1.0 1.0 13.0 30.0 2 3.0 3.0 14.0 40.0 3 5.0 5.0 15.0 50.0 1.3.4 复合保鲜剂的配制和使用
按1.3.3得到的复合保鲜剂的最佳配比配制成溶液，虾与保鲜剂的比例为1∶4 (m∶v)，浸泡时间为1 min，浸泡后沥水2~3 min。
1.3.5 指标检测
按照1.3.4的方法处理后，于4 ℃条件下贮藏，分别在第0、第24、第48、第72、第96、第120、第144 小时取样，同时对照组以去离子水浸泡后于同一条件下取样，进行黑变评分并测定相关指标。
1.3.5.1 黑变评分
参考Montero等[6]的方法，由6名经培训的感官品评人员采用表2的标准对样品的黑变情况进行评分。
表 2 中国对虾黑变评分标准Table 2. Evaluation criteria for blakening of F. chinensis分值
Score黑变情况
Condition of blackening0 无黑变，即体表完全没有黑点 0.1~1.0 轻微黑变，即体表有少量黑点或整体黑变面积较小 1.1~2.0 中等黑变，即体表有较多的黑点或整体黑变面积稍大 2.1~3.0 严重黑变，即体表有大量黑点或整体黑变面积大 1.3.5.2 硫代巴比妥酸反应物 (Thiobarbituric acid reactive substance, TBARS) 值的测定
TBARS值的测定参照GB 5009.181—2016 《食品安全国家标准 食品中丙二醛的测定》中第二法 分光光度法，结果以mg·kg−1表示。
1.3.5.3 挥发性盐基氮 (Total volatile basic nitrogen, TVB-N) 值的测定
TVB-N值参照GB 5009.228—2016《食品中挥发性盐基氮的测定》中的微量扩散法测定，结果以mg·100 g–1表示。
1.3.5.4 菌落总数的测定
菌落总数参照GB 4789.2—2022《食品微生物学检验 菌落总数测定》，采用平板计数，计数单位为lg CFU·g–1。
1.3.5.5 微生物多样性分析
将经复合保鲜剂处理后的中国对虾于4 ℃条件下贮藏，分别在第0、第72、第144 小时取样，分析其微生物多样性。采用HTAB (Hexadecyltrimethy ammonium bromide) 法[16]从样本中提取基因组DNA，对16S rDNA的V3–V4区进行扩增，电泳检测PCR扩增产物的纯度，用QuantiFluorTM荧光计定量，将纯化的扩增产物等量混合，连接测序接头，构建测序文库，Illumina PE250上机测序 (由广州基迪奥生物科技有限公司协助完成)[17]。参照Huptas等[18]的方法筛选数据后进行聚类分析，将一致性超过95%的序列聚类为操作分类单位 (Operational taxonomic unit, OTU) 去除聚类比对过程中的嵌合体序列，得到最终有效数据，并进行OTU丰度统计分析。
1.3.6 数据处理
试验重复2次，每次取3次平行样，结果以“平均值±标准差 ($\bar x $±s)”表示。采用t-检验进行组间差异显著性分析，P<0.05为差异显著，P<0.01为差异极显著。使用Origin Pro 2022b软件作图。
2. 结果与分析
2.1 不同物质对酚氧化酶活力的抑制作用
抗坏血酸、葡萄籽提取物、石榴皮提取物、竹叶抗氧化物对酚氧化酶的抑制作用见图1。当抗坏血酸的质量浓度为3.0 g·L–1时，可抑制90%以上的酚氧化酶活性。抗坏血酸可以通过还原黑变过程中的中间产物-醌类物质来阻断黑变进程[19]，抗坏血酸还可以作为竞争性抑制剂与酚氧化酶的双铜活性中心结合，减少酶与底物的接触，进而抑制黑变[20]。在试验选定的浓度范围内，葡萄籽提取物对酚氧化酶的抑制作用与其质量浓度几乎呈线性相关，但过高浓度的葡萄籽提取物溶液颜色过深，对虾的感官品质有不良影响，因此不适宜作为复合保鲜剂的配方。石榴皮提取物对酚氧化酶的抑制作用有限，当质量浓度提高至7.0 g·L–1时，也仅能将相对酶活控制在70%左右。竹叶抗氧化物质量浓度为3.0 g·L–1时几乎可以完全抑制酚氧化酶活性，竹叶提取物由黄酮、酚类、酸类等物质构成，具有良好的抑菌和抗氧化作用[21]。因此，后续试验选择抗坏血酸和竹叶抗氧化物作为复配组分。
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图 1 不同物质对中国对虾酚氧化酶活性的抑制作用Figure 1. Inhibitory effect of different substances on phenoloxidase activity of F. chinensis2.2 复合保鲜剂的最优配比试验
将筛选出的抗坏血酸、竹叶抗氧化物与焦亚硫酸钠、4-HR复配，以酚氧化酶活性为指标进行正交试验 (表3)。结果显示极差：RC> RD> RA> RB，说明在选定的浓度范围内，对酚氧化酶活性影响大小依次为焦亚硫酸钠>4-HR>抗坏血酸>竹叶抗氧化物。较优方案为A2B3C3D3，即复合保鲜剂的最优配比为：抗坏血酸质量浓度3.0 g·L–1、竹叶抗氧化物质量浓度5.0 g·L–1、焦亚硫酸钠质量浓度15.0 g·L–1、4-HR质量浓度50.0 mg·L–1。
表 3 L9 (34) 正交试验结果Table 3. L9 (34) orthogonal test results序号
No.A：抗坏血酸
Ascorbic acidB：竹叶抗氧化物
Bamboo leaf antioxidantC：焦亚硫酸钠
Sodium metabisulfiteD：4-HR
4-hexylresorcinol酚氧化酶活性
PO activity/(U·L−1)1 1 1 1 1 115.00 2 1 2 3 2 46.67 3 1 3 2 3 85.00 4 2 1 3 3 24.67 5 2 2 2 1 103.33 6 2 3 1 2 81.67 7 3 1 2 2 96.67 8 3 2 1 3 110.00 9 3 3 3 1 51.67 K1 246.67 236.33 306.67 270.00 K2 209.67 260.00 285.00 225.00 K3 258.34 218.33 123.00 219.67 k1 82.22 78.78 102.22 90.00 k2 69.89 86.67 95.00 75.00 k3 86.11 72.78 41.00 73.22 R 48.67 23.67 162.00 50.33 2.3 防黑保鲜效果验证
2.3.1 黑变评分情况
中国对虾经复合保鲜剂处理后的黑变情况见图2。对照组在冷藏期间黑变评分迅速上升，贮藏第24小时，头胸和躯干部出现黑斑；第48小时黑变加重；第72小时黑斑遍布对虾全身，这与郭芳等[22]的观察结果基本一致。经复合保鲜剂处理后，中国对虾在整个贮藏期间的黑变评分均显著低于对照组 (P<0.05)，尤其是前96 h仅发生了轻微黑变，即使在贮藏144 h后虾的感官品质也在可接受范围内，表明复合保鲜剂有效延缓了中国对虾黑变进程，这与其含有的抑菌成分和抗氧化成分有效抑制黑变过程中腐败菌的生长以及酚氧化酶氧化反应有关[23]。此外，徐扬等[24]和López-Caballero等[25]研究发现焦亚硫酸钠对虾类的黑变控制效果有限，仅在贮藏前期起到控制黑变的效果，贮藏后期 (4~5 d) 与未处理之间无显著性差异。然而，本研究中复合保鲜剂处理组在贮藏期内与对照组差异显著 (P<0.05)，说明研制的复合保鲜剂的抑菌和抗氧化活性更强，从而抑制虾类黑变的效果更优，可有效延长虾类的货架期。
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图 2 复合保鲜剂对中国对虾冷藏期间防黑效果评价Figure 2. Evaluation of anti-blackening effect of compound preservative on F. chinensis2.3.2 TBARS值变化情况
TBARS值可用于评估水产品的脂肪氧化程度，氧化程度越高，TBARS值越大[26]。中国对虾的初始TBARS值为0.067 mg·kg–1。冷藏过程中，两组对虾TBARS值的增长趋势相似 (图3-a)。相较对照组，处理组增长趋势较为缓慢，且在整个贮藏期间TBARS值均显著低于对照组 (P<0.05)，表明复合保鲜剂能够有效延缓中国对虾脂质氧化，这与其中的抗坏血酸、竹叶抗氧化物等成分都具有良好的抗氧化作用有关[27-28]，有效抑制了脂质氧化引起的对虾在贮藏过程中的品质劣变。杨峰等[29]通过对南极磷虾 (Euphausia superba) 的保鲜研究同样发现复配后的保鲜剂能够显著抑制脂质氧化，与单一抑黑剂相比效果更优。
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图 3 中国对虾冷藏期间TBARS值、TVB-N值和菌落总数变化Figure 3. Changes in TBARS value, TVB-N value, and total bacterial counts during storage of F. chinensis2.3.3 TVB-N值变化情况
TVB-N值是评价水产品鲜度的重要指标[30]。中国对虾冷藏期间TVB-N值变化见图3-b。在冷藏过程中，两组样品的TVB-N值呈增加趋势。冷藏24 h以及后续的取样点，处理组的TVB-N值均显著低于对照组 (P<0.05)。根据GB 2733—2015，对虾的TVB-N的限量值为30.0 mg·100 g–1。冷藏第144 小时，对照组TVB-N值达32.65 mg·100 g–1，而此时此处理组TVB-N值仅为24.83 mg·100 g–1。复合保鲜剂中的成分对微生物的生长有抑制作用，减少了微生物对蛋白质的降解，导致TVB-N值增加缓慢，这与Gokoglu等[31]观察不同抑黑剂处理红虾 (Aristaeomorpha foliacea) 后的TVB-N值变化结果一致。此外，Senapati等[32]研究发现经4-HR处理后凡纳滨对虾 (Litopenaeus vannamei) 的TVB-N值低于焦亚硫酸钠处理组。加之，竹叶抗氧化物中的黄酮类化合物成分以及抗坏血酸低pH的特性使其均具有抑制微生物生长的作用[33-34]，表明研制的复合保鲜剂可以更有效地控制中国对虾在贮藏过程中的品质变化。
2.3.4 菌落总数变化情况
菌落总数是评定水产品鲜度的重要指标，水产品腐败与微生物的生长繁殖密切相关[35]。如图3-c所示，对照组、处理组的初始菌落总数分别为2.69和2.45 lg CFU·g–1。在冷藏前48 h，两组对虾的菌落总数增长迅速，48 h后增长趋缓。冷藏过程中对照组的菌落总数均显著高于处理组 (P＜0.05)。冷藏第120小时，对照组的菌落总数已达5.11 lg CFU·g–1，此时处理组的菌落总数仅为4.65 lg CFU·g–1，仍在一级鲜度范围内[36]，说明复合保鲜剂能够在一定程度上抑制微生物的繁殖，这与复合保鲜剂中的4-HR[37]、焦亚硫酸钠[38]、竹叶抗氧化物[39]、抗坏血酸[40]4种组分均具备一定的抑菌作用有关。因此，研制的复合保鲜剂可有效延缓中国对虾的菌落总数升高，一定程度上延长了对虾的货架期。
2.3.5 菌群结构变化情况
中国对虾经复合保鲜剂处理后，在冷藏过程中的菌群结构变化情况见图4。第0天的对照组与处理组的初始菌群略有差别，对照组中别弧菌属 (Aliivibrio)、黏着杆菌属 (Tenacibaculum)、交替假单胞菌属 (Pseudoalteromonas) 比例相对较高，而处理组则是别弧菌属、黄杆菌属 (Flavobacterium)、弧菌属 (Vibrio) 比例占优。
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图 4 中国对虾冷藏过程属水平上的细菌分布堆叠图注：C. 对照组；T. 处理组；C72. 对照组贮藏72 h的样品，以此类推。Figure 4. Stacked map of bacteria species distribution of F. chinensis at genus level during storageNote: C. Control group; T. Treatment group; C72. Samples stored for 72 h in the control group, and so on.对照组中的别弧菌属在贮藏前期比例迅速增加，第72小时达54%，而贮藏后期比例减少；发光杆菌属 (Photobacterium) 随冷藏时间的延长占比逐渐升高，第144小时占比增至45%，成为中国对虾的优势菌属。Kuuliala等[41]在大西洋银鳕 (Gadus morhua) 中也观察到发光杆菌属在冷藏过程中比例持续增长的现象，说明发光杆菌属可能是导致水产品腐败的重要菌属，其生长代谢产物是中国对虾冷藏后期不良气味形成的主要来源。处理组中的优势菌属为致腐能力相对较弱的别弧菌属，其比例随着贮藏时间的延长持续增加，而致腐能力较强的发光杆菌属在冷藏后期明显减少，表明复合保鲜剂可有效抑制发光杆菌属的繁殖。因此，复合保鲜剂的抑菌活性可达到延缓水产品在贮藏过程中快速腐败的目的。Peng等[42]研究表明一种新型的羟基吡喃酮-氨基硫脲衍生物对虾体内的副溶血性弧菌 (V. parahaemolyticus) 表现出强烈的抑菌活性，有效延长了虾类的货架期，与本研究结果相似。
3. 结论
本研究经对选取的多种具有抑黑作用的物质进行单因素试验和正交试验，最终确定复合防黑保鲜剂较优配比为：抗坏血酸质量浓度3.0 g·L–1、竹叶抗氧化物质量浓度5.0 g·L–1、焦亚硫酸钠质量浓度15.0 g·L–1、4-HR质量浓度50.0 mg·L–1。经复合保鲜剂处理后，中国对虾黑变被明显抑制，同时该保鲜剂具有抑制细菌生长、延缓脂质氧化的作用。微生物多样性分析结果表明，发光杆菌属和别弧菌属是中国对虾冷藏过程的优势菌属，而复合保鲜剂可以有效抑制发光杆菌属的生长繁殖。因此，研制的复合保鲜剂具有良好的抑黑保鲜效果，具有较好的应用前景。
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图 1 反应时间对糖基化产物接枝率和褐变性的影响
注：不同字母代表差异显著 (P<0.05)。
Figure 1. Effect of reaction time on grafting rate and browning of glycation products
Note: Different letters represent significant differences (P<0.05).
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图 3 反应时间对糖基化产物粒径、电位的影响
注：不同字母代表差异显著 (P<0.05)。
Figure 3. Effects of reaction time on particle size and potential of glycation products
Note: Different letters represent significant differences (P<0.05).
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图 4 不同反应时间糖基化产物的SDS-PAGE (a) 和分子质量分布 (b)
Figure 4. SDS-PAGE (a) and molecular mass distribution (b) of glycation products at different reaction time
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图 5 不同反应时间糖基化产物的傅里叶红外光谱
Figure 5. Fourier transform infrared spectrum of glycation products at different reaction time
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图 6 不同反应时间糖基化产物的内源荧光和表面疏水性
注：方柱上不同字母表示差异显著 (P<0.05)。
Figure 6. Intrinsic fluorescence and surface hydrophobicity of glycation products at different reaction time
Note: Different letters on the bars represent significant differences (P<0.05).
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图 7 不同反应时间糖基化产物的紫外光谱
Figure 7. Ultraviolet absorption spectrum of glycation products at different reaction time
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图 8 不同反应时间糖基化产物的圆二色谱
Figure 8. Circular dichroism spectrum of glycation products at different reaction time
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图 9 不同反应时间糖基化产物的乳化性和乳化稳定性
注：不同字母代表差异显著 (P<0.05)
Figure 9. Emulsifying and emulsifying stability of glycation products at different reaction time
Note: Different letters represent significant differences (P<0.05).
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图 10 不同反应时间糖基化产物的持油性
注：不同字母代表差异显著 (P<0.05)。
Figure 10. Oil-holding capacity of glycation products at different reaction time
Note: Different letters represent significant differences (P<0.05).
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图 11 不同反应时间糖基化产物的扫描电镜 (2 000×)
注：a. BPILH；b—i. 反应时间为0、1、2、4、6、8、10、12 h的糖基化产物。
Figure 11. Scanning electron microscopy of glycation products at different reaction time (2 000×)
Note: a. BPILH; b—i. Glycosylation products with reaction time of 0, 1, 2, 4, 6, 8, 10 and 12 h.
表 1 反应时间对糖基化产物色度的影响
Table 1 Effect of reaction time on chromaticity of glycation products
反应时间
Reaction time/h亮度
L*红绿色度
a*黄蓝色度
b*色差
ΔE0 112.76±0.21 −0.65±0.02 8.85±0.32 1 112.25±0.12a 0.32±0.09g 11.96±0.04f 3.30±0.31g 2 112.23±0.15a 1.36±0.06f 13.32±0.11e 4.94±0.24f 4 106.68±0.08b 2.38±0.05e 18.24±0.13d 11.59±0.26e 6 102.78±0.12c 3.36±0.10d 21.82±0.11c 16.85±0.29d 8 97.83±1.15d 4.01±0.04c 22.33±0.33c 20.65±1.01c 10 94.83±1.15e 5.36±0.10b 23.88±0.31b 24.16±0.95b 12 80.69±0.51f 6.33±0.40a 27.44±0.59a 37.72±0.67a 注：同列中不同字母表示存在显著性差异 (P<0.05)。 Note: Values with different letters within the same column are significantly different (P<0.05). 
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表 2 不同反应时间糖基化产物的溶解度
Table 2 Solubility of glycation products at different reaction time
% 反应时间
Reaction time/hpH 2 4 6 8 10 0 46.97±0.07eG 55.96±0.07dE 59.17±0.07cH 80.71±0.03aE 77.94±0.04bG 1 51.22±0.02eD 52.78±0.03dH 63.94±0.07cG 80.67±0.04aE 76.70±0.04bH 2 49.56±0.05eE 53.26±0.06dG 66.22±0.04cF 81.29±0.06aD 80.50±0.04bE 4 48.19±0.02eF 54.20±0.06dF 74.38±0.04cB 84.20±0.05aC 78.25±0.04bF 6 52.16±0.01eC 57.03±0.04dC 71.06±0.01cD 85.72±0.01aB 81.71±0.03bD 8 51.15±0.04eD 60.66±0.06dA 75.73±0.04cA 87.03±0.03bA 90.49±0.01aA 10 52.31±0.01eB 59.25±0.03dB 73.15±0.09cC 73.81±0.08bG 86.96±0.04aB 12 48.58±0.12eA 56.31±0.01dD 68.74±0.10cE 75.13±0.03bF 85.42±0.02aC 注：同行不同小写字母表示相同反应时间在不同pH条件下存在显著性差异 (P<0.05)，同列不同大写字母表示不同反应时间在相同pH条件下存在显著性差异 (P<0.05)。 Note: Different lowercase letters within the same row represent significant differences of the same reaction time under different pH conditions (P<0.05), while different uppercase letters within the same column represent significant differences of different reaction time under the same pH condition (P<0.05).
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[1] 农业农村部渔业渔政管理局, 全国水产技术推广总站, 中国水产学会. 2023中国渔业统计年鉴[M]. 北京: 中国农业出版社, 2023: 39-41. [2] 沈月新. 水产食品学[M]. 北京: 中国农业出版社, 2001: 21. [3] 王伟, 刘俊荣, 马永生, 等. 等电点沉淀法鱼分离蛋白结构与功能变化研究进展[J]. 食品科学, 2015, 36(1): 250-255. [4] KLOST M, DRUSCH S. Functionalisation of pea protein by tryptic hydrolysis: characterisation of interfacial and functional properties[J]. Food Hydrocoll, 2019, 86(1): 134-140.
[5] NISOV A, ERCILI-CURA D, NORDLUND E. Limited hydrolysis of rice endosperm protein for improved techno-functional properties[J]. Food Chem, 2020, 302: 125274. doi: 10.1016/j.foodchem.2019.125274
[6] 刘伟峰. 限制性酶解对蓝圆鲹分离蛋白功能特性的影响[D]. 厦门: 集美大学, 2020: 19. [7] YUAN F Z, AHMED I, LV L T, et al. Impacts of glycation and transglutaminase-catalyzed glycosylation with glucosamine on the conformational structure and allergenicity of bovine β-lactoglobulin[J]. Food Funct, 2018, 9(7): 3944-3955. doi: 10.1039/C8FO00909K
[8] KATO A, SASAKI Y, FURUTA R, et al. Functional protein- polysaccharide conjugate prepared by controlled dry-heating of ovalbumin-dextran mixtures[J]. Agric Biol Chem, 1990, 54(1): 107-112.
[9] LI Y L, HOU F, YANG Z T, et al. The growth of N-doped carbon nanotube arrays on sintered Al2O3 substrates[J]. Mater Sci Eng B, 2009, 158(1/2/3): 69-74.
[10] ZHU D, DAMODARAN S, LUCEY J A. Physicochemical and emulsifying properties of whey protein isolate (WPI)-dextran conjugates produced in aqueous solution[J]. J Agric Food Chem, 2010, 58(5): 2988-2994. doi: 10.1021/jf903643p
[11] MU L X, ZHAO M M, YANG B, et al. Effect of ultrasonic treatment on the graft reaction between soy protein isolate and gum acacia and on the physicochemical properties of conjugates[J]. J Agric Food Chem, 2010, 58(7): 4494-4499. doi: 10.1021/jf904109d
[12] JIANG Z, BRODKORB A. Structure and antioxidant activity of Maillard reaction products from α-lactalbumin and β-lactoglobulin with ribose in an aqueous model system[J]. Food Chem, 2012, 133(3): 960-968. doi: 10.1016/j.foodchem.2012.02.016
[13] YANG S, LEE S, PYO M C, et al. Improved physicochemical properties and hepatic protection of Maillard reaction products derived from fish protein hydrolysates and ribose[J]. Food Chem, 2017, 221: 1979-1988. doi: 10.1016/j.foodchem.2016.11.145
[14] DECOURCELLE N, SABOURIN C, DAUER G, et al. Effect of the Maillard reaction with xylose on the emulsifying properties of a shrimp hydrolysate (Pandalus borealis)[J]. Food Res Int, 2010, 43(8): 2155-2160. doi: 10.1016/j.foodres.2010.07.026
[15] DONG S Y, WEI B B, CHEN B C, et al. Chemical and antioxidant properties of casein peptide and its glucose Maillard reaction products in fish oil-in- water emulsions[J]. J Agric Food Chem, 2011, 59(24): 13311-13317. doi: 10.1021/jf203778z
[16] 董烨, 张益奇, 张晓頔, 等. 鳙鱼皮水解物美拉德反应产物抗氧化活性研究[J]. 核农学报, 2022, 36(11): 2199-2209. [17] 马露燕. 低聚木糖糖基化豌豆蛋白构建微囊体系及其性能研究[D]. 郑州: 河南工业大学, 2023: 26. [18] WANG L H, SUN X, HUANG G Q, et al. Conjugation of soybean protein isolate with xylose/fructose through wet-heating Maillard reaction[J]. J Food Meas Charact, 2018, 12(4): 2718-2724. doi: 10.1007/s11694-018-9889-y
[19] 孙乐常, 刘伟峰, 林怡晨, 等. 碱性蛋白酶限制性酶解对蓝圆鲹分离蛋白功能特性的影响[J]. 食品科学, 2021, 42 (2): 23-29. [20] ZHANG Y Y, XU J M, ZHANG T, et al. Effect of carbon numbers and structures of monosaccharides on the glycosylation and emulsion stabilization ability of gelatin[J]. Food Chem, 2022, 389: 133128. doi: 10.1016/j.foodchem.2022.133128
[21] WANG W L, ZHANG L, WANG Z Q, et al. Physicochemical and sensory variables of Maillard reaction products obtained from Takifugu obscurus muscle hydrolysates[J]. Food Chem, 2019, 290: 40-46. doi: 10.1016/j.foodchem.2019.03.065
[22] 詹梦涛, 娄水珠, 刘仙花, 等. 3, 5-二硝基水杨酸法测定液体糖中总糖含量[J]. 云南民族大学学报(自然科学版), 2020, 29(4): 317-321. [23] LIU C, WANG Z J, JIN H, et al. Effect of enzymolysis and glycosylation on the curcumin nanoemulsions stabilized by β-conglycinin: formation, stability and in vitro digestion[J]. Int J Biol Macromol, 2020, 142: 658-667.
[24] LAEMMLI U K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4[J]. Nature, 1970, 227(5259): 680-685. doi: 10.1038/227680a0
[25] WU Q, CAI Q F, TAO Z P, et al. Purification and characterization of a novel angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptide derived from abalone (Haliotis discus hannai Ino) gonads[J]. Eur Food Res Technol, 2015, 240(1): 137-145. doi: 10.1007/s00217-014-2315-8
[26] WANG Y, ZHOU Y, WANG X X, et al. Origin of high-pressure induced changes in the properties of reduced-sodium chicken myofibrillar protein gels containing CaCl2: physicochemical and molecular modification perspectives[J]. Food Chem, 2020, 319: 126535. doi: 10.1016/j.foodchem.2020.126535
[27] CAO L, SU S, REGENSTEIN J M, et al. Ca2+-induced conformational changes of myosin from silver carp (Hypophthalmichthys molitrix) in Gelation[J]. Food Biophys, 2015, 10(4): 447-455. doi: 10.1007/s11483-015-9408-1
[28] 陈思如. 低聚木糖糖基化改性酪蛋白的功能特性及应用[D]. 长春: 吉林大学, 2022: 38-39. [29] GONG K J, SHI A M, LIU H Z, et al. Emulsifying properties and structure changes of spray and freeze-dried peanut protein isolate[J]. J Food Eng, 2016, 170: 33-40. doi: 10.1016/j.jfoodeng.2015.09.011
[30] TAN E S, NGOH Y Y, GAN C Y. A comparative study of physicochemical characteristics and functionalities of pinto bean protein isolate (PBPI) against the soybean protein isolate (SPI) after the extraction optimisation[J]. Food Chem, 2014, 152: 447-455.
[31] 冷雪冬. 稻米米糠蛋白复合多糖脂肪替代物制备及应用研究[D]. 大庆: 黑龙江八一农垦大学, 2023: 5-6. [32] MARKOWICZ B D. Maillard reaction products in processed food: pros and cons[M]. London: IntechOpen, 2012: 281-299.
[33] 张杨翌. 糖基化改性对明胶结构和乳化性的影响研究[D]. 上海: 上海海洋大学, 2022: 16. [34] 王可. 木质化鸡胸肉分级模型构建与过氧化氢体外氧化肌原纤维蛋白劣变机制及功能特性改善[D]. 泰安: 山东农业大学, 2023: 59-60. [35] XU Y J, ZHAO Y Q, WEI Z X, et al. Modification of myofibrillar protein via glycation: physicochemical characterization, rheological behavior and solubility property[J]. Food Hydrocoll, 2020, 105(7): 105852.
[36] SHANMUGAM A, ASHOKKUMAR M. Ultrasonic preparation of stable flax seed oil emulsions in dairy systems: physicochemical characterization[J]. Food Hydrocoll, 2014, 39: 151-162. doi: 10.1016/j.foodhyd.2014.01.006
[37] WONG B T, DAY L, AUGUSTIN M A. Deamidated wheat protein-dextran Maillard conjugates: effect of size and location of polysaccharide conjugated on steric stabilization of emulsions at acidic pH[J]. Food Hydrocoll, 2011, 25(6): 1424-1432. doi: 10.1016/j.foodhyd.2011.01.017
[38] 李琳. 限制性酶解结合糖基化处理对大豆分离蛋白结构与加工特性的影响[D]. 雅安: 四川农业大学, 2021: 36-37. [39] LIU G, LI W R, QIN X G, et al. Pickering emulsions stabilized by amphiphilic anisotropic nanofibrils of glycated whey proteins[J]. Food Hydrocoll, 2020, 101(4): 105503.
[40] 丁俭, 黄祯秀, 杨梦竹, 等. 食源蛋白水解物/多肽与糖类物质美拉德反应产物在食品应用中的研究进展[J]. 食品科学, 2023, 44(1): 305-318. [41] 常雨晴. 带鱼多肽制备及美拉德反应对其性质影响研究[D]. 大连: 大连海洋大学, 2023: 25-26. [42] JACKSON M, MANTSCH H H. The use and misuse of FTIR spectroscopy in the determination of protein structure[J]. Crit Rev Biochem Mol Biol, 1995, 30(2): 95-120. doi: 10.3109/10409239509085140
[43] LIU J H, FANG C H, XU X, et al. Structural changes of silver carp myosin glycated with konjac oligo- glucomannan: effects of deacetylation[J]. Food Hydrocoll, 2019, 91: 275-282. doi: 10.1016/j.foodhyd.2019.01.038
[44] 王秋野. 豌豆蛋白基植物肉的研制及特性分析[D]. 哈尔滨: 东北农业大学, 2021: 44-45. [45] STANIC-VUCINIC D, PRODIC I, APOSTOLOVIC D, et al. Structure and antioxidant activity of β-lactoglobulin-glycoconjugates obtained by high-intensity-ultrasound-induced Maillard reaction in aqueous model systems under neutral conditions[J]. Food Chem, 2013, 138(1): 590-599. doi: 10.1016/j.foodchem.2012.10.087
[46] 张燕鹏, 张曼君, 齐玉堂, 等. 微波-超声波协同影响菜籽蛋白糖基化改性[J]. 食品科学, 2017, 38(17): 114-119. [47] 齐宝坤, 李杨, 王中江, 等. 不同品种大豆分离蛋白Zeta电位和粒径分布与表面疏水性的关系[J]. 食品科学, 2017, 38(3): 114-118. [48] LILIENTHAL S, DROTLEFF A M, TERNES W. Changes in the protein secondary structure of hen's egg yolk determined by Fourier transform infrared spectroscopy during the first eight days of incubation[J]. Poultry Sci, 2015, 94(1): 68-79. doi: 10.3382/ps/peu051
[49] KUCHLYAN J, KUNDU N, BANIK D, et al. Spectroscopy and fluorescence lifetime imaging microscopy to probe the interaction of bovine serum albumin with graphene oxide[J]. Langmuir, 2015, 31(51): 13793-13801. doi: 10.1021/acs.langmuir.5b03648
[50] KIM J, LEE Y. Effect of reaction pH on enolization and racemization reactions of glucose and fructose on heating with amino acid enantiomers and formation of melanoidins as result of the Maillard reaction[J]. Food Chem, 2008, 108(2): 582-592. doi: 10.1016/j.foodchem.2007.11.014
[51] 赵新淮等. 食品蛋白质[M]. 北京: 科学出版社, 2009: 138-139. [52] 闫雨洁. 超声结合糖基化反应改性卵白蛋白及其理化性质与乳化性能研究[D]. 南宁: 广西大学, 2021: 19-20. [53] 张玥, 李芳, 李菊梅, 等. 葡萄糖修饰苦杏仁粕谷蛋白糖基化反应条件的优化[J]. 食品研究与开发, 2022, 43(3): 94-101. [54] XUE F, LI C, ZHU X W, et al. Comparative studies on the physicochemical properties of soy protein isolate-maltodextrin and soy protein isolate-gum acacia conjugate prepared through Maillard reaction[J]. Food Res Int, 2013, 51(2): 490-495. doi: 10.1016/j.foodres.2013.01.012
[55] 刘杰. 糖基化明胶的制备及其在藻油微胶囊中的应用[D]. 重庆: 西南大学, 2023: 24-25. [56] WANG Y Y, ZHANG A Q, WANG Y X, et al. Effects of irradiation on the structure and properties of glycosylated soybean proteins[J]. Food Funct, 2020, 11(2): 1635-1646. doi: 10.1039/C9FO01879D
[57] 刘鑫慧. 蛋白酶对面筋蛋白糖基化产物特性及饼干品质的影响[D]. 郑州: 河南工业大学, 2023: 26-28.
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