Effects and potential mechanism of oyster peptide on paroxetine-induced sexual dysfunction in male mice
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摘要:
牡蛎肽 (Oyster peptide, OP) 具有多种生物活性，然而，其对男性性功能障碍的作用效果仍知之甚少。以牡蛎肽为研究对象，探讨其对男性性功能障碍的作用效果及其潜在机制。每天灌胃帕罗西汀 (Paroxetine, PRX) 构建雄性小鼠性功能障碍模型，同时灌胃牡蛎肽 (500 mg·kg−1)，持续28 d。结果表明：与模型 (PRX) 组小鼠相比，牡蛎肽可显著提高雄性小鼠的性能力 (P<0.05)，恢复血清性激素水平 (P<0.01)，提高阴茎组织一氧化氮 (NO) 含量 (P<0.01)、环磷酸鸟苷 (cGMP) 含量 (P<0.05), 和一氧化氮合酶 (NOS) 活性 (P<0.05)，并降低磷酸二酯酶-5 (PDE-5) 活性 (P<0.01)；同时，牡蛎肽可增强睾丸标志性酶活性 (P<0.05) 和抗氧化能力 (P<0.01)，改善精子质量。此外，HE染色结果显示：牡蛎肽可恢复小鼠睾丸生精小管内生精细胞的数量与形态，减少生精小管空泡化现象。综上所述，牡蛎肽可有效减缓PRX导致的雄性小鼠性功能障碍，推测其对男性性功能障碍具有潜在的保护作用。
Abstract:Oyster peptide (OP) has various biological activities. However, its effects on male sexual dysfunction is still poorly understood. In this study, we explored its effects and potential mechanism on male sexual dysfunction. Besides, we established a paroxetine (PRX)-induced sexual dysfunction model by gavaging OP (500 mg·kg− 1) in mice for 28 d. The results show that compared with the model (PRX) group, OP could improve the sexual performance of male mice (P<0.05), restored serum sex hormone levels (P<0.01), increased penile tissue nitric oxide (NO) content (P<0.01), cyclic guanosine monophosphate (cGMP) content (P<0.05) and nitric oxide synthase (NOS) activity (P<0.05), and decreased phosphodiesterase-5 (PDE-5) activity (P<0.01). Meanwhile, OP enhanced testicular marker enzymes activities (P<0.05) and antioxidant capacity (P<0.01), and improved sperm quality. In addition, HE staining results show that OP could restore the number and morphology of spermatogenic cells in seminiferous tubules of mice, and reduced the vacuolization of seminiferous tubules. In conclusion, OP can alleviate PRX-induced sexual dysfunction effectively in male mice and has a potential protective effect on male sexual dysfunction.
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Keywords:
- Oyster peptide /
- Paroxetine /
- Sexual dysfunction /
- Erectile dysfunction /
- Sexual behavior
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奥尼罗非鱼(Oreochromis niloticus♀×O.aureus♂)是一种中小形鱼，为世界水产业重点科研培养的淡水养殖鱼类，被誉为未来动物性蛋白质的主要来源之一，在日本被称为“不需要蛋白质的蛋白源”。罗非鱼肉质细嫩，味道鲜美，富含人体所需的8种必需氨基酸，其中甘氨酸和谷氨酸含量特别高[1-2]。
国内外关于罗非鱼营养方面的研究多集中在通过饲料试验研究营养对罗非鱼生长或生物学特征的影响等方面[3-5]，但是对各种养殖模式罗非鱼肉品质的研究少见。笔者研究通过对池塘养殖和水库养殖罗非鱼的肌肉营养成分、感官特性、理化性质和游离氨基酸组成及含量进行分析与比较，探讨养殖模式对罗非鱼肉质的影响规律，为今后罗非鱼的健康、科学和高质养殖提供一定参考依据。
1. 材料与方法
1.1 材料
奥尼罗非鱼由佛山市某淡水养殖场提供，鱼体质量为(1 000±50)g。池塘养殖模式为罗非鱼与鲢(Hypophthalmichthys molitrix)、草鱼(Ctenopharyngodon idella)混养，定期投喂饲料，水深约1.5 m。水库养殖模式为网箱养殖，未投喂饲料，以浮游植物为食，水温常年在18~22 ℃，水深约50 m。
1.2 方法
鲜鱼覆冰保藏，及时送至实验室。取罗非鱼背部肌肉，先进行pH、质构、滴水损失、熟肉率、贮存损失及感官评定分析，剩余样品置于-18 ℃冷冻保存用于其余指标测定。
1.2.1 pH测定[6]
参考DUUN和RUSTAD[7]的方法，并稍加改动。称取碎鱼肉10 g，加入10 mL的0.15 mol·L-1氯化钾(KCl)溶液，用均质器13 000 r·min-1均质30 s，用pH计测定。
1.2.2 常规成分分析
水分测定采用恒温常压干燥法[8]；粗蛋白测定采用凯氏定氮法[8]；粗脂肪测定采用索氏提取法[8]；灰分测定采用常压干燥法[8]；总糖测定采用常规分析方法[9]。
1.2.3 肉质感官评定
取罗非鱼背部肌肉切成2 cm×2 cm×1 cm的块状，放入瓷碗里蒸煮8 min，邀请经过专业培训的9人同时参加品尝，采用“盲法”对罗非鱼的鲜味、口感、嫩度进行打分[10]，以1~5之间的分值表示(表 1)。3项评分之和为该样品的可接受度值。
表 1 罗非鱼感官评定标准Table 1. Sensory evaluation standard for tilapia muscle指标 index 1分 2分 3分 4分 5分 鲜味 umami 滋味差，无鲜甜味 滋味较差，略带鲜甜味 滋味一般，有鲜甜味 滋味较好，鲜甜味较浓 滋味佳，鲜味浓 口感 mouthfeel 无弹性，口感差 略带弹性，口感较差 有弹性，口感一般 弹性较好，口感较好 弹性好，口感好 嫩度 tenderness 组织浮软 组织较松软 组织有一定弹性 嫩度较好 嫩度适中 1.2.4 熟肉率、蒸煮损失的测定[11]
取背部肌肉，切成1 cm×1 cm×1 cm的块状，放在蒸格上用沸水蒸8 min，取出后晾15 min，称质量并计算。
$$ {\rm{熟肉率}}(\% ){\rm{ = }}\frac{{\rm{蒸煮后肉样质量}}}{{\rm{蒸煮前肉样质量}}} \times {\rm{100}} $$ $$ \text { 蒸煮损失(%) = } 100 \text { - 熟肉率 } $$ 1.2.5 滴水损失[11]
取背肌切成3 cm×1 cm×1 cm小块，称质量后置于充气的塑料袋中(使肉块悬于中心不接触薄膜)，在4 ℃冰箱中吊挂48 h后称质量，以样品质量损失百分比表示滴水损失。
$$ \text { 滴水损失 }(\%)=\frac{\text { 贮前质量 }- \text { 贮后质量 }}{\text { 贮前质量 }} \times 100 $$ 1.2.6 贮存损失测定
取背肌切成3 cm×1 cm×1 cm小块，装袋，在4 ℃冰箱中吊挂24 h后称质量并计算。
$$ \text { 贮存损失 }(\%)=\frac{\text { 贮前质量 }- \text { 贮后质量 }}{\text { 贮前质量 }} \times 100 $$ 1.2.7 肌内脂肪测定
参照郭焱芳[11]方法测定。取肉样绞成肉糜，取10 g置于广口瓶中，加入甲醇60 mL并盖好瓶盖，置于磁力搅拌器上搅拌30 min，加入三氯甲烷90 mL搅拌30 min，静置36 h。将浸提液过滤于刻度分液漏斗中，用约50 mL三氯甲烷分次洗涤残渣；加入30 mL蒸馏水，旋摇后静置待分层，上层为甲醇层，下层为三氯甲烷脂肪层，记录下层体积后缓慢打开分液漏斗弃去约2 mL后再缓慢放出下层液体于烧杯中，取4个已经干燥至恒质量的烧杯，用移液管移出50.00 mL下层液体于烧杯中烘干冷却，称质量并记录。
$$ \text { 肌内脂肪质量分数 }(\%)=\frac{\left(W_2-W_1\right) \times V_1}{W_0 \times 50} \times 100 $$ 其中W0为肉样质量(g)；W1为烧杯质量(g)；W2为烘干后烧杯和脂肪质量之和(g)；V1为下层液体总体积(mL)；50为下层液体取样量(mL)。
1.2.8 肌原纤维断裂指数(MFI)
测定参照雒莎莎等[12]和陆海霞[13]的方法并稍作修改。取2 g鱼肉加6倍体积的0.1 mol·L-1 KCl、0.02 mol·L-1三羟甲基氨基甲烷(Tris)-盐酸(HCl)(pH=7.5)缓冲液(A)和2倍体积的1% Triton、0.1 mol·L-1 KCl、0.02 mol·L-1 Tris-HCl缓冲液(B)，匀浆，纱布过滤，去结缔组织，8 000 r·min-1冷冻离心10 min，去上清，沉淀用8倍体积的A液离心3次，最后用A液清洗沉淀稀释至20 mL，待测。将肌原纤维悬浮液蛋白质量浓度调整为(0.5±0.05)mg·mL-1，立即取10 mL在540 nm下测吸光度(OD)，记为OD540 nm。
$$ \mathrm{MFI}=\mathrm{OD}_{540 \mathrm{~nm}} \times 200 $$ 1.2.9 肌红蛋白总量的测定
参照KRZYWICKI[14]方法，具体试验步骤见马汉军等[15]的方法。
1.2.10 游离氨基酸的测定
使用高效液相色谱仪进行分析[16]。
1.3 数据处理
所有数据采用统计软件SPSS 16.0进行分析处理。
2. 结果与分析
2.1 常规营养成分
2种模式养殖的罗非鱼肉粗脂肪、粗灰分质量分数分别为1.48%、0.74%，池塘养殖的总糖质量分数稍高于水库养殖，但两者均无显著差异(P＞0.05)(表 2)。水库养殖的水分质量为湿质量的80.22%，显著高于池塘养殖的77.04%(P＜0.05)。这是由于鱼体的水分质量分数和脂肪质量分数互成反比，水库养殖的粗蛋白质量分数(16.65%)和粗脂肪质量分数(1.37%)都低于池塘养殖(分别为18.82%和1.59%)，故其水分质量分数相对较高。
表 2 罗非鱼肉常规营养成分比较(X±SD，n=3)Table 2. Nutritional components in muscle of different tilapia% 营养成分
nutritive composition池塘养殖
pond culture水库养殖
reservoir culture水分 moisture 77.04±0.08b 80.22±0.09a 粗蛋白 crude protein 18.82±0.12a 16.65±0.08b 粗脂肪 crude fat 1.59±0.24 1.37±0.15 粗灰分 crude ash 0.72±0.02 0.75±0.02 总糖 total sugar 0.12±0.06 0.06±0.02 注：同行不同字母表示差异显著(P＜0.05)，后表同此
Note：Means in the same row with different letter are significantly different (P＜0.05), the same case in the following tables.2.2 感官评定
2种养殖模式罗非鱼肉的鲜味和口感值较接近，没有显著差异(P＞0.05)(表 3)。水库养殖的嫩度和可接受度分别为4.87和14.30，显著高于池塘养殖的4.53和13.47(P＜0.05)。
表 3 罗非鱼的感官评价分析(X±SD，n=9)Table 3. Muscle sensory evaluation of the different tilapia评定项目
assessment program池塘养殖
pond culture水库养殖
reservoir culture鲜味 umami 4.50±0.17 4.73±0.12 口感 mouthfeel 4.43±0.15 4.70±0.10 嫩度 tenderness 4.53±0.12b 4.87±0.12a 可接受度 acceptence 13.47±0.42b 14.30±0.26a 2.3 理化特性
表 4为不同养殖模式下罗非鱼肉质各项理化指标。2种养殖模式的熟肉率和蒸煮损失平均值分别为81.49%和18.51%，无显著差异(P＞0.05)。池塘养殖的pH显著低于水库养殖(P＜0.05)；与池塘养殖相比，水库养殖的滴水损失和贮存损失分别高出1.85%和0.69%，差异显著(P＜0.05)；水库养殖的肌内脂肪比池塘养殖的高0.35%，差异显著(P＜0.05)；池塘养殖的MFI比水库养殖高38，差异显著(P＜0.05)。肌红蛋白质量分数平均值为22.22 mg·kg-1，两者不存在显著差异(P＞0.05)。
表 4 罗非鱼肉理化特性比较(X±SD，n=3)Table 4. Physi-chemical characters comparison of the different tilapia理化指标
physi-chemical index池塘养殖
pond culture水库养殖
reservoir culturepH 6.28±0.06b 6.43±0.09a 熟肉率/% rate of cooked meat 82.00±0.98 80.97±0.50 蒸煮损失/% cooking loss 18.00±0.98 19.03±0.50 滴水损失/% drip loss 7.75±0.41b 9.60±0.36a 贮存损失/% storage loss 3.20±0.34b 3.89±0.19a 肌内脂肪/% intramuscular fat 0.51±0.16b 0.86±0.19a 肌纤维断裂指数 myofibrillar fragmentation index(MFI) 161±4.58a 123±22.07b 肌红蛋白/mg·kg-1 myoglobin 20.25±0.69 24.19±2.58 2.4 氨基酸质量分数的分析
从罗非鱼肌肉中检测并鉴定了18种常见的氨基酸(表 5)。其中包括8种必需氨基酸，2种半必需氨基酸和8种非必需氨基酸。比较2种模式中各氨基酸的平均值发现，甘氨酸的质量分数均为最高，分别占其总氨基酸的46.40%(池塘养殖)和55.49%(水库养殖)，池塘养殖模式中质量分数次之的是丙氨酸、苏氨酸、丝氨酸，水库养殖模式中质量分数次之的是苏氨酸、组氨酸、谷氨酸。两者间的天冬氨酸、谷氨酸、丝氨酸、甘氨酸、丙氨酸质量分数有显著差异(P＜0.05)，除此之外其他氨基酸不存在显著差异(P＞0.05)。
表 5 罗非鱼肉中主要游离氨基酸组成及质量分数(湿质量)(X±SD，n=3)Table 5. Muscle main free amino acids contents of the different tilapia(wet weight)μg·g-1 游离氨基酸
free amino acid池塘养殖
pond culture水库养殖
reservoir culture天冬氨酸ae Asp 61.74±3.09a 11.73±3.88b 谷氨酸ae Glu 97.06±0.72a 82.73±2.94b 鲜味氨基酸总量(∑UAA) total umami amino acids 158.80±2.87a 94.46±5.96b 丝氨酸be Ser 120.23±5.51a 66.61±4.10b 甘氨酸be Gly 1 194.12±25.19a 1 189.80±16.91b 苏氨酸bc Thr 126.57±12.05 103.46±15.62 丙氨酸be Ala 347.81±18.67a 22.19±9.38b 脯氨酸be Pro 48.41±7.13 63.22±23.32 甜味氨基酸总量(∑SAA) total sweet amino acids 1 837.13±54.55a 1 445.29±58.54b 组氨酸d His 115.21±6.91 100.32±9.58 精氨酸d Arg 59.34±10.56 56.45±17.05 酪氨酸e Tyr 43.53±20.87 35.21±11.21 蛋氨酸c Met 41.85±8.76 34.10±8.41 色氨酸c Trp 43.73±9.58 79.72±26.10 苯丙氨酸c Phe 41.38±2.32 41.15±4.93 异亮氨酸c Ile 26.65±1.16 18.68±4.78 亮氨酸c Leu 47.31±3.05 42.80±7.02 赖氨酸c Lys 68.28±1.19 81.07±4.61 缬氨酸c Val 44.47±7.48 39.99±15.73 半胱氨酸e Cys 45.73±22.56 74.82±41.76 氨基酸总量(∑AA) total amino acids 2 573.41±104.36 2 144.05±99.19 必需氨基酸总量(∑EAA) total essential amino acids 440.24±15.61 440.97±25.31 半必需氨基酸总量(∑HEAA) total half-essential amino acids 174.54±17.28 156.76±26.04 ∑UAA/∑AA/% 6.17 4.41 ∑SAA/∑AA/% 71.39 67.41 ∑EAA/∑AA/% 17.11 20.57 ∑HEAA/∑AA/% 6.78 7.31 注：a.鲜味氨基酸；b.甜味氨基酸；c.必需氨基酸；d.半必需氨基酸；e.非必需氨基酸
Note：a. umami amino acids；b. sweet amino acids；c. essential amino acids；d. half-essential amino acids；e. not essential amino acids罗非鱼的鲜美程度取决于其蛋白质中鲜味氨基酸的组成和质量分数，天冬氨酸和谷氨酸为呈鲜味的特征氨基酸，其中谷氨酸的鲜味更强。谷氨酸不仅是呈鲜味氨基酸，还在人体代谢中具有重要意义，是脑组织生化代谢中首要的氨基酸，参与多种生理活性物质的合成，具有健脑作用[17]。在2种模式中，谷氨酸质量分数(μg·g-1，湿基)分别为97.06(池塘养殖)和82.73(水库养殖)。2种养殖模式的鲜味氨基酸总量(μg·g-1，湿基)分别为158.80(池塘养殖)和94.46(水库养殖)，两者差异显著(P＜0.05)。甜味氨基酸总量(μg·g-1，湿基)分别为1 837.13(池塘养殖)和1 445.29(水库养殖)，分别占总氨基酸的71.39%(池塘养殖)和67.41%(水库养殖)，前者明显高于后者(P＜0.05)。必需氨基酸总量(μg·g-1，湿基)分别为440.24(池塘养殖)和440.97(水库养殖)，两者相近(P＞0.05)。组氨酸和精氨酸为半必需氨基酸，其总量(μg·g-1，湿基)分别为174.54(池塘养殖)和156.76(水库养殖)。精氨酸在人体饥饿、创伤或应激条件下会转变为必需氨基酸。
3. 讨论
1) 肌肉营养成分是评价养殖模式肌肉品质的重要指标。池塘养殖罗非鱼的粗蛋白质量分数较水库养殖的高，这可能与投喂的饲料有关。有关研究表明[18]，饲料蛋白质量分数越高，鱼体内的粗蛋白质量分数也越高。从试验结果看出，池塘养殖饲料供给及时，营养充足，则鱼体的粗蛋白和粗脂肪质量分数相对较高。在粗灰分和总糖质量分数上，两者相差不大，说明罗非鱼肌肉粗灰分和总糖质量分数受其养殖环境的影响较小。
2) 一般认为，肉品风味随肌内脂肪的增加而改善。BEJERHOLM和BARTON-GADE[19]发现随着肌内脂肪质量分数的增加，嫩度也相应改善。笔者试验中水库养殖罗非鱼的肌内脂肪质量分数高于池塘养殖，与感官评定中的嫩度评分一致，同时，水库养殖的肌原纤维断裂指数比池塘养殖小，即水库养殖的嫩度较好，这3个指标的检测结果是一致的，因此可推测这三者之间存在着一定相关性。同时，pH是反映鱼体死后肌糖原酵解速率的重要指标，pH越低，说明酵解速度越快，pH缓慢降低可保持肉的嫩度。水库养殖的pH显著高于池塘养殖，即水库养殖的嫩度优于池塘养殖，这与前面的3个指标检测结果一致。
3) 滴水损失和持水力能够反映肉类保持其原有水分的能力。滴水损失与肌肉持水力呈负相关，滴水损失越低，肌肉持水力越好，鱼体死后失重小。从试验结果可知，水库养殖的滴水损失和贮存损失都比池塘养殖的高，说明池塘养殖的持水力高于水库养殖。熟肉率是衡量烹调损失的指标，具有重要的经济意义。试验结果表明池塘养殖的熟肉率高于水库养殖。
4) 从对罗非鱼肌肉的品质分析可以看出，尽管属于同一鱼种，但是不同养殖模式的罗非鱼在品质方面存在着一定的差别。有研究表明，鱼类肌肉品质的遗传变异很低[20]，所以遗传变异的可能性不大。食物营养价值可以用多项指标来评价，蛋白质为重要的指标之一，尤其是氨基酸的组成及含量。这2种模式罗非鱼的蛋白质质量分数差异显著，其某些游离氨基酸的质量分数也存在显著差异。池塘养殖罗非鱼肌肉中谷氨酸的质量分数明显高于水库养殖，谷氨酸作为一种鲜味氨基酸，在脑组织生化代谢中具有重要作用，参与多种活性物质的合成。池塘养殖的呈味(鲜味和甜味)氨基酸质量分数都高于水库养殖，必需氨基酸总量虽相近，但氨基酸总量和半必需氨基酸总量均高于水库养殖。有研究表明，水产动物肌肉氨基酸组成与含量的不同，除了受到遗传因素的影响外，还与动物自身的生长发育、栖息环境、饵料种类与组成等密切相关[21-22]。此次采集的池塘养殖样品在养殖过程中定期投喂了饲料，而水库养殖样品主要以浮游植物为食，加上栖息环境的不同，因此造成了两者的差异。
从总体上看，水库养殖的罗非鱼嫩度要优于池塘养殖，但在营养成分及鲜甜味方面不及池塘养殖。
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图 1 牡蛎肽相对分子质量分布色谱图
Figure 1. Chromatogram of relative molecular mass distribution of oyster peptides
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图 2 牡蛎肽对小鼠交配行为的影响
注：与空白组相比，*. 差异显著 (P<0.05)，**. 差异非常显著 (P<0.01)，***. 差异极显著 (P<0.001)；与模型组相比，#. 差异显著 (P<0.05)；##. 差异非常显著 (P<0.01)，###. 差异极其显著 (P<0.001)，下同。
Figure 2. Effect of oyster peptid on sexual behavior in mice
Note: Compared with the blank group, *. Significant difference (P<0.05); **. Very significant difference (P<0.01); ***. Extremely significant difference (P<0.001). Compared with the model group, #. Significant difference (P<0.05); ##. Very significant difference (P<0.01); ###. Extremely significant difference (P<0.001). The same case in the following figures.
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图 4 牡蛎肽对阴茎组织一氧化氮、一氧化氮合酶、环磷酸鸟苷、磷酸二酯酶-5含量或活性的影响
Figure 4. Effect of OP on content or activity of NO, NOS, cGMP and PDE5 in penile tissue
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图 5 牡蛎肽对睾丸组织标志性酶的影响
Figure 5. Effect of oyster peptid on marker enzymes of testis tissue
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图 6 牡蛎肽对睾丸组织抗氧化能力的影响
Figure 6. Effect of oyster peptid on antioxidant capacity of testis tissue
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图 7 睾丸组织病理分析
注：a. 空白组；b. 模型组；c. 阳性组；d. 牡蛎肽组。
Figure 7. Pathological analysis of testicular tissue
Note: a. Control group; b. PRX group; c. PRX+SDF group; d. PRX+OP group.
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图 9 精子形态分析
注：a. 空白组；b. 模型组；c. 阳性组；d. 牡蛎肽组。
Figure 9. Sperm morphology analysis
Note: a. Control group; b. PRX group; c. PRX+SDF group; d. PRX+OP peptide group.
表 1 牡蛎肽游离氨基酸含量分析
Table 1 Analysis of free amino acid content of oyster peptid
序号
No.游离氨基酸
Free amino acid质量分数或含量
Mass fraction or content/%1 天门冬氨酸 Asp 0.39±0.032 2 苏氨酸 Thr① 0.41±0.031 3 丝氨酸 Ser 0.30±0.021 4 谷氨酸 Glu 0.86±0.052 5 脯氨酸 Pro② 0.07±0.015 6 甘氨酸 Pro 0.31±0.033 7 丙氨酸 Ala② 1.26±0.065 8 胱氨酸 Cys 0.04±0.000 9 缬氨酸 Val①②③ 0.57±0.145 10 蛋氨酸 Met②③ 0.26±0.036 11 异亮氨酸 Ile①②③ 0.76±0.111 12 亮氨酸 Leu①②③ 1.68±0.166 13 酪氨酸 Tyr 0.96±0.030 14 苯丙氨酸 Phe①② 1.13±0.267 15 赖氨酸 Lys① 2.14±0.248 16 组氨酸 His 0.29±0.019 17 精氨酸 Arg 2.68±0.142 氨基酸总量
Total amino acid, TAA14.10 疏水性氨基酸
Hydrophobic amino acid, HAA5.74 必需氨基酸
Essential amino acid, EAA6.95 支链氨基酸
Branched-chain amino acids, BCAA3.01 EAA/TAA (%) 49.29 BCAA/TAA (%) 21.35 HAA/TAA (%) 40.71 注：n=3；① 必需氨基酸；② 疏水性氨基酸；③ 支链氨基酸。 Note: n=3; ① Essential amino acid; ② Hydrophobic amino acid; ③ A branched-chain amino acid. 
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表 2 牡蛎肽对脏器系数的影响
Table 2 Effect of oyster peptid on organ coefficient
% 项目
Item空白组
CN模型组
PRX阳性组
PRX+SDF牡蛎肽组
PRX+OP心脏 Heart 0.599±0.067 0.581±0.072 0.597±0.082 0.622±0.079 胸腺 Thymus 0.11±0.029 0.104±0.021 0.116±0.46 0.113±0.022 脾 Lien 0.328±0.023 0.305±0.026 0.335±0.042 0.309±0.041 肝脏 Liver 5.106±0.586 4.798±0.351 5.004±0.581 5.018±0.306 肾脏 Ren 1.682±0.117 1.629±0.094 1.638±0.151 1.669±0.069 肺 Lung 0.657±0.061 0.637±0.048 0.641±0.034 0.652±0.039 阴茎 Penis 0.120±0.019 0.109±0.026 0.119±0.017 0.119±0.012 睾丸 Testis 0.759±0.083 0.629±0.061*** 0.699±0.069# 0.685±0.037# 精囊腺 Seminal vesicle 0.839±0.108 0.574±0.097*** 0.687±0.084# 0.731±0.061###
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[1] CHEN L, SHI G R, HUANG D D, et al. Male sexual dysfunction: a review of literature on its pathological mechanisms, potential risk factors, and herbal drug intervention[J]. Biomed Pharmacother, 2019, 112: 108585. doi: 10.1016/j.biopha.2019.01.046
[2] RAHMAN A U, ALAM F, REHMAN Z U, et al. Effects of Mirabilis jalapa L. root extract and sildenafil on paroxetine-induced sexual dysfunction in male rats and characterization of its phytoconstituents by UPLC-MS[J]. S Afr J Bot, 2023, 152: 240-246. doi: 10.1016/j.sajb.2022.12.004
[3] ERDEMIR F, ATILGAN D, FIRAT F, et al. The effect of sertraline, paroxetine, fluoxetine and escitalopram on testicular tissue and oxidative stress parameters in rats[J]. Int Braz J Urol, 2014, 40: 100-108. doi: 10.1590/S1677-5538.IBJU.2014.01.15
[4] NAJAFABADI B T, FARSINEJAD M, SHOKRAEE K, et al. Possible effects of saffron (Crocus sativus) in the treatment of erectile dysfunction: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial[J]. J Herb Med, 2022, 32: 100551. doi: 10.1016/j.hermed.2022.100551
[5] FARNIA V, ALIKHANI M, EBRAHIMI A, et al. Ginseng treatment improves the sexual side effects of methadone maintenance treatment[J]. Psychiat Res, 2019, 276: 142-150. doi: 10.1016/j.psychres.2019.05.004
[6] KOLOKO B L, BUSHRA I, WANKEU-NYA M, et al. In vivo effects of Rauvolfia vomitoria (Apocynaceae) ethanolic extract on sexual performance and reproductive activity in male rats[J]. Andrologia, 2020, 52(1): e13414.
[7] LI L, CHEN B B, AN T, et al. BaZiBuShen alleviates altered testicular morphology and spermatogenesis and modulates Sirt6/P53 and Sirt6/NF-κB pathways in aging mice induced by D-galactose and NaNO2[J]. J Ethnopharmacol, 2021, 271: 113810. doi: 10.1016/j.jep.2021.113810
[8] ALLOUH M Z, DARADKA H M, BARBARAWI M M A, et al. Fresh onion juice enhanced copulatory behavior in male rats with and without paroxetine-induced sexual dysfunction[J]. Exp Biol Med, 2014, 239(2): 177-182. doi: 10.1177/1535370213508360
[9] TEIXEIRA T M, BOEFF D D, de OLIVEIRA CARVALHO L, et al. The traditional use of native Brazilian plants for male sexual dysfunction: evidence from ethnomedicinal applications, animal models, and possible mechanisms of action[J]. Biomed Pharmacother, 2023: 116876.
[10] 郑环宇, 高加龙, 章超桦, 等. 华贵栉孔扇贝肉及其酶解产物对半去势雄性大鼠生殖能力的影响[J]. 南方水产科学, 2021, 17(3): 94-101. [11] QIONG L, JUN L, JUN Y, et al. The effect of Laminaria japonica polysaccharides on the recovery of the male rat reproductive system and mating function damaged by multiple mini-doses of ionizing radiations[J]. Environ Toxicol Phar, 2011, 31(2): 286-294. doi: 10.1016/j.etap.2010.11.006
[12] IBRAHIM N M, IBRAHIM S R, ASHOUR O H, et al. The effect of red seaweed (Chondrus crispus) on the fertility of male albino rats[J]. Saudi J Biol Sci, 2021, 28(7): 3864-3869. doi: 10.1016/j.sjbs.2021.03.059
[13] JE J G, KIM H S, LEE H G, et al. Low-molecular weight peptides isolated from seahorse (Hippocampus abdominalis) improve vasodilation via inhibition of angiotensin-converting enzyme in vivo and in vitro[J]. Process Biochem, 2020, 95: 30-35. doi: 10.1016/j.procbio.2020.04.016
[14] RYU B M, KIM M J, HIMAYA S W A, et al. Statistical optimization of high temperature/pressure and ultra-wave assisted lysis of Urechis unicinctus for the isolation of active peptide which enhance the erectile function in vitro[J]. Process Biochem, 2014, 49(1): 148-153. doi: 10.1016/j.procbio.2013.09.019
[15] 张雪妍, 秦小明, 高加龙, 等. 牡蛎酶解工艺优化及其酶解产物对小鼠睾酮分泌的影响[J]. 广东海洋大学学报, 2019, 39(3): 96-102. [16] 章超桦. 牡蛎营养特性及功能活性研究进展[J]. 大连海洋大学学报, 2022, 37(5): 719-731. [17] 朱国萍, 章超桦, 曹文红, 等. 牡蛎酶解产物对小鼠学习记忆的影响[J]. 广东海洋大学学报, 2021, 41(4): 84-92. [18] ZHANG C, LV J T, QIN X M, et al. Novel antioxidant peptides from crassostrea hongkongensis improve photo-oxidation in UV-induced HaCaT Cells[J]. Mar Drugs, 2022, 20(2): 100. doi: 10.3390/md20020100
[19] ZHANG Z R, SU G W, ZHOU F B, et al. Alcalase-hydrolyzed oyster (Crassostrea rivularis) meat enhances antioxidant and aphrodisiac activities in normal male mice[J]. Food Res Int, 2019, 120: 178-187. doi: 10.1016/j.foodres.2019.02.033
[20] 张婷, 秦小明, 章超桦, 等. 牡蛎酶解产物改善睡眠作用效果研究[J]. 大连海洋大学学报, 2021, 36(3): 430-436. [21] ZHANG W W, WEI Y F, CAO X X, et al. Enzymatic preparation of Crassostrea oyster peptides and their promoting effect on male hormone production[J]. J Ethnopharmacol, 2021, 264: 113382. doi: 10.1016/j.jep.2020.113382
[22] LUO X L, LIU W X, ZHONG H, et al. Synergistic effect of combined oyster peptide and ginseng extracts on anti-exercise-fatigue and promotion of sexual interest activity in male ICR mice[J]. J Funct Foods, 2021, 86: 104700. doi: 10.1016/j.jff.2021.104700
[23] 黄艳球. 牡蛎肉及其酶解产物对半去势雄性大鼠性功能的影响[D]. 湛江: 广东海洋大学, 2019: 12-19. [24] ZHANG X Y, PENG Z L, ZHENG H N, et al. The potential protective effect and possible mechanism of peptides from oyster (Crassostrea hongkongensis) hydrolysate on triptolide-induced testis injury in male mice[J]. Mar Drugs, 2021, 19(10): 566. doi: 10.3390/md19100566
[25] ADEMOSUN A O, ADEBAYO A A, OBOH G. Anogeissus leiocarpus attenuates paroxetine-induced erectile dysfunction in male rats via enhanced sexual behavior, nitric oxide level and antioxidant status[J]. Biomed Pharmacother, 2019, 111: 1029-1035. doi: 10.1016/j.biopha.2019.01.022
[26] 张锴佳, 张雪妍, 秦小明, 等. 香港牡蛎酶解产物对雷公藤甲素诱导雄性小鼠生精障碍的影响[J]. 大连海洋大学学报, 2022, 37(6): 941-948. [27] KHALID M, ALQARNI M H, WAHAB S, et al. Ameliorative sexual behavior and phosphodiesterase-5 inhibitory effects of Spondias mangifera fruit extract in rodents: in silico, in vitro, and in vivo study[J]. J Clin Sleep Med, 2022, 11(13): 3732. doi: 10.3390/jcm11133732
[28] CANPOLAT S, ULKER N, YARDIMCI A, et al. Irisin ameliorates male sexual dysfunction in paroxetine-treated male rats[J]. Psychoneuroendocrino, 2022, 136: 105597. doi: 10.1016/j.psyneuen.2021.105597
[29] 方磊, 张瑞雪, 陈亮, 等. 牡蛎肽对TM3细胞性功能的影响[J]. 中国食品学报, 2021, 21(5): 140-147. [30] HOU Y Q, WU G Y. Nutritionally essential amino acids[J]. Adv Nutr, 2018, 9(6): 849-851. doi: 10.1093/advances/nmy054
[31] 陈义明, 孙瑞坤, 张帅, 等. 圆舵鲣暗色肉酶解物5 ku组分的抗氧化活性与抗疲劳作用[J]. 广东海洋大学学报, 2017, 37(4): 92-97. doi: 10.3969/j.issn.1673-9159.2017.04.014 [32] 葛晓鸣, 顾伟, 徐永健. 海马水解蛋白的氨基酸组成与抗氧化能力的关系[J]. 核农学报, 2019, 33(2): 322-329. doi: 10.11869/j.issn.100-8551.2019.02.0322 [33] 陈悦, 李路, 闫朝阳, 等. 小分子牡蛎多肽对雄性小鼠性功能的影响[J]. 基因组学与应用生物学, 2019, 38(1): 109-116. doi: 10.13417/j.gab.038.000109 [34] SCHULSTER M, BERNIE A M, RAMASAMY R. The role of estradiol in male reproductive function[J]. Asian J Androl, 2016, 18(3): 435. doi: 10.4103/1008-682X.173932
[35] SAIKIA Q, HAZARIKA A, KALITA J C. Isoliquiritigenin ameliorates paroxetine-induced sexual dysfunction in male albino mice[J]. Reprod Toxicol, 2023: 108341.
[36] EL-GAAFARAWI I, HASSAN M, FOUAD G, et al. Toxic effects of paroxetine on sexual and reproductive functions of rats[J]. Egypt J Hosp Med, 2005, 21(1): 16-32. doi: 10.21608/ejhm.2005.18045
[37] YAKUBU M T, JIMOH R O. Carpolobia lutea roots restore sexual arousal and performance in paroxetine-induced sexually impaired male rats[J]. Rev Int Androl, 2014, 12(3): 90-99.
[38] AJIBOYE T O, NURUDEEN Q O, YAKUBU M T. Aphrodisiac effect of aqueous root extract of Lecaniodiscus cupanioides in sexually impaired rats[J]. J Basic Clin Physiol Pharmacol, 2014, 25(2): 241-248.
[39] ZHANG Y F, YANG J Y, MENG X P, et al. L-arginine protects against T-2 toxin-induced male reproductive impairments in mice[J]. Theriogenology, 2019, 126: 249-253. doi: 10.1016/j.theriogenology.2018.12.024
[40] BOLNICK J M, KILBURN B A, BOLNICK A D, et al. Sildenafil stimulates human trophoblast invasion through nitric oxide and guanosine 3', 5'-cyclic monophosphate signaling[J]. Fertil Steril, 2015, 103(6): 1587-1595.e2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2015.02.025
[41] DEGIONI A, CAMPOLO F, STEFANINI L, et al. The NO/cGMP/PKG pathway in platelets: the therapeutic potential of PDE5 inhibitors in platelet disorders[J]. J Thromb Haemost, 2022, 20(11): 2465-2474. doi: 10.1111/jth.15844
[42] PACHER P, BECKMAN J S, LIAUDET L. Nitric oxide and peroxynitrite in health and disease[J]. Physiol Rev, 2007, 87(1): 315-424. doi: 10.1152/physrev.00029.2006
[43] YAKUBU M T, JIMOH R O. Aqueous extract of Carpolobia lutea root ameliorates paroxetine-induced anti-androgenic activity in male rats[J]. Middle East Fertil S, 2015, 20(3): 192-197. doi: 10.1016/j.mefs.2014.10.001
[44] OGUNRO O B, YAKUBU M T. Fadogia agrestis (Schweinf. Ex hiern) stem extract restores selected biomolecules of erectile dysfunction in the testicular and penile tissues of paroxetine-treated wistar rats[J]. Reprod Sci, 2023, 30(2): 690-700. doi: 10.1007/s43032-022-01050-6
[45] ADEFEGHA S A, OYELEYE S I, DADA F A, et al. Modulatory effect of quercetin and its glycosylated form on key enzymes and antioxidant status in rats penile tissue of paroxetine-induced erectile dysfunction[J]. Biomed Pharmacother, 2018, 107: 1473-1479. doi: 10.1016/j.biopha.2018.08.128
-
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1. 薛尊，石建高，张文阳. 中国重力式深水网箱研究进展和展望. 渔业研究. 2024(04): 393-402 . 
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