大鳍鳠胚胎及仔稚鱼发育观察

陈思奇, 朱永久, 吴兴兵, 杨德国, 李晓莉

陈思奇, 朱永久, 吴兴兵, 杨德国, 李晓莉. 大鳍鳠胚胎及仔稚鱼发育观察[J]. 南方水产科学, 2023, 19(6): 60-70. DOI: 10.12131/20230087
引用本文: 陈思奇, 朱永久, 吴兴兵, 杨德国, 李晓莉. 大鳍鳠胚胎及仔稚鱼发育观察[J]. 南方水产科学, 2023, 19(6): 60-70. DOI: 10.12131/20230087
CHEN Siqi, ZHU Yongjiu, WU Xingbing, YANG Deguo, LI Xiaoli. Morphological development of embryos and larvae of Mystus macropterus[J]. South China Fisheries Science, 2023, 19(6): 60-70. DOI: 10.12131/20230087
Citation: CHEN Siqi, ZHU Yongjiu, WU Xingbing, YANG Deguo, LI Xiaoli. Morphological development of embryos and larvae of Mystus macropterus[J]. South China Fisheries Science, 2023, 19(6): 60-70. DOI: 10.12131/20230087

大鳍鳠胚胎及仔稚鱼发育观察

基金项目: 湖北省长江野生鱼类繁育驯化科技攻关项目;国家现代农业产业技术体系 (CARS-46);中国水产科学研究院基本科研业务费专项资金(2023TD61)
详细信息
    作者简介:

    陈思奇 (1998—),女,硕士研究生,研究方向为水生生物学。E-mail: csq170912040@163.com

    通讯作者:

    李晓莉 (1981—),女,副研究员,硕士,研究方向为鱼类驯养繁殖与池塘养殖。E-mail: lxl@yfi.ac.cn

  • 中图分类号: S 961.2+3

Morphological development of embryos and larvae of Mystus macropterus

  • 摘要:

    大鳍鳠 (Mystus macropterus) 是一种亟待开发的优质养殖品种。探明养殖大鳍鳠早期发育阶段的特征和规律,可为其人工催产和苗种培育提供理论依据。采用显微镜观察法,对其胚胎及仔稚鱼发育各时期的形态特征和发育特点进行了研究,并对其形态学指标进行了测量,推算出仔稚鱼阶段生长特性的回归方程。结果表明:大鳍鳠受精卵呈椭圆形、黄褐色,卵径为 (3.46±0.3) mm;平均水温26.2 ℃下,大鳍鳠胚胎发育历时79 h,积温为2065.26 h·℃,根据发育时胚胎的典型外部形态特征,将其分为受精卵、胚盘期、卵裂期、囊胚期、原肠期、神经胚期、器官分化期和出膜期共8个阶段28个时期;初孵仔鱼全长 (7.31±0.52) mm,仔鱼期历时10 d,仔鱼前期卵黄囊大部分被吸收,全长特定生长率 (SGRL) 为9.79%,体质量特定生长率 (SGRm) 为12.31%,出膜后7~8 d仔鱼大部分开口,9 d卵黄囊消失,仔鱼后期SGRL为4.15%,SGRm为12.25%。稚鱼期历时11 d,各鳍基本长成,体型和体色接近成鱼,SGRL为4.30%,SGRm为13.17%,全长22~24 mm。统计模型显示,大鳍鳠仔稚鱼的生长属于异速生长类型。

    Abstract:

    Mystus macropterus is a high-quality aquaculture variety that urgently needs to be developed. Exploring the characteristics and patterns of early developmental stages of cultured M. macropterus can provide basic data for its seedling cultivation and large-scale efficient seed production. We studied the morphological characteristics and developmental features of its embryos and juveniles by microscopic observation, and measured the morphological indicators to derive regression equations for the growth characteristics of juveniles. The results show that the fertilized eggs of the fish were oval and yellowish brown, with a diameter of (3.46±0.3) mm. At incubation temperature of 26.2  ℃, the embryos took 79 h to develop for eight stages with 28 periods, including fertilization, cleavage, blastocyst, gastrula, neuroembryo, organ differentiation and hatching, and the total accumulative temperature was 2065.26 h·℃. The total length of the larvae was (7.31±0.52) mm, the larvae stage lasted for 10 d, and most of the yolk sac was absorbed at early stage of larvae. The full-length specific growth rate (SGRL) was 9.79%, and the weight-specific growth rate (SGRm) was 12.31%. Most of the larvae opened 7–8 d after membrane emergence, and the yolk sac disappeared on 9th day. The SGRL and SGRm were 4.15% and 12.25% at later stage of larvae, respectively. The juvenile stage lasted for 11 d. The fins were basically mature, and the body size and body color were close to those of adult fish. SGRL was 4.30%, SGRm was 13.17%, and the total length was 22–24 mm. The statistical model shows that the growth of the larvae and juveniles is of allometric type.

  • 弧菌广泛存在于养殖水体,是海水养殖动物的主要病原菌,弧菌病是目前为止对养殖鱼虾危害最大,造成损失最严重的细菌性疾病之一。弧菌病可以发生在养殖的各个时期,因此防治对虾弧菌病是养殖成败的关键因素。防治细菌性疾病最常用的方法是使用抗菌素,但频繁无节制的使用药物,导致耐药性菌株的产生并且造成环境的污染,因此,抗菌素的有效替代品的研究显得尤为迫切,应用生物及生态法防治疾病日益受到重视。大量的研究表明[1-7],乳酸菌能够调节机体肠道正常菌群,保持微生态平衡,提高食物消化率和生物价,增强机体的免疫功能,提高机体的抗病能力,产生抑菌活性代谢产物,如乳酸菌肽、细菌素、乳酸、过氧化氢、乙酸等,对许多革兰氏阳性菌李斯特氏菌、芽孢菌、梭菌等及革兰氏阴性菌大肠杆菌等有强烈的抑制作用,可抑制肠道内腐败菌的生长繁殖和腐败产物的产生,乳酸菌被作为饲料添加剂而广泛应用于禽畜养殖中,防治腹泻、下痢、肠炎等肠道功能紊乱的许多疾病。乳酸菌益生素作为鱼、虾饲料添加剂也受到广泛的研究,有提高养殖动物的免疫力,抵御病原菌的侵袭,提高养殖成活率的效果。体外拮抗实验是筛选益生菌的重要步骤,本实验通过乳酸菌体外对致病弧菌的拮抗作用研究,旨在筛选乳酸菌有益菌株,为进一步在养殖生产中应用益生素产品防治病害提供理论基础及水产养殖动物的病害防治提供一种生物防治方法。

    测试菌:乳酸杆菌L1是经点接种法初步筛选出的对弧菌有拮抗作用的菌株。

    指示菌:溶藻弧菌T1是由本所鱼病室提供的从患病军曹鱼中分离,并经回归感染确认有致病性的菌株。鲨鱼弧菌T2也是从患病军曹鱼中分离。

    乳酸菌培养基为改良的MRS培养基:蛋白胨10 g,酵母膏5 g,牛肉膏10 g,葡萄糖20 g,无水乙酸钠3 g,柠檬酸三铵2 g,K2HPO4 2 g,MgSO4 · 7H2O 0.2 g,MnSO4 · H2O 0.05 g,水1 000 mL,pH 6.8。

    弧菌培养基为2216E培养基。

    检测弧菌培养基为TCBS培养基。

    抑菌活性检测采用平板打孔抑菌圈测定法。

    平板打孔抑菌圈测定法:制作2216E培养基,无菌操作倒平板,每个平板的培养基厚度为6 mm,取指示菌弧菌菌悬液0.1 mL,涂布于2216E培养基表面,选择一定的位置,在无菌条件下,用无菌打孔器打孔,孔径为10 mm,将乳酸杆菌发酵液注入孔内(不能溢出),于30℃培养24 h,检测抑菌圈直径的大小。以相同pH值的HCl水作对照。

    表 1为L1接种MRS培养液,经24 h培养后的发酵液及发酵液经5 000 rpm,15 min离心后取得的上清液,采用平板打孔法测定抑菌圈的大小。

    表  1  L1菌发酵液及离心后上清液对指示菌T1、T2的抑菌圈大小
    Table  1  Size of zone plate inhibitory of fermentation liquid and supernatant liquid of L1 strain to indicator strains T1 and T2  (mm)
    指示菌
    indicator strains
    发酵液(pH 3.5)
    fermentation liquid
    上清液(pH 3.5)
    supernatant liquid
    对照HCl水组(pH 3.5)
    HCl diluted liquid
    T1 23 20 0
    T2 18 16 0
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    表 1试验可看出发酵液与上清液对指示菌T1、T2都有抑菌圈,而相同pH值的HCl水却没有,可见发酵液与上清液的抑菌效果并不是pH值低造成的。试验结果表明发酵液比上清液对弧菌的抑菌圈大,说明发酵液的抑菌活性强于上清液,乳酸杆菌及其代谢产物对弧菌有协同抑制作用。发酵液对弧菌T1、T2的抑菌圈大小不同,上清液也是如此,表明L1发酵液的代谢产物对不同种类弧菌的抑菌活性不同。

    L1接种MRS,30℃培养24 h,发酵液用无菌生理盐水释稀1、2、3倍,其稀释液对弧菌的抑菌能力见表 2。其发酵液经5 000 rpm,15 min离心,取得上清液,上清液用无菌生理盐水释稀1、2、3倍,其稀释液对弧菌的抑菌能力见表 3

    表  2  不同稀释倍数L1菌发酵液对指示菌T1、T2的抑菌圈大小
    Table  2  Size of zone plate inhibitory of diluted fermentation liquid of L1 strain to indictor strains T1 and T2 (mm)
    指示菌
    indicator strains
    发酵液稀释倍数 times of dilution for fermentation liquid
    0 1 2 3
    T1 25 23 21.5 13.5
    T2 23 21 19
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格
    表  3  不同稀释倍数L1菌发酵液对指示菌T1、T2的抑菌圈大小
    Table  3  Size of zone plate inhibitory of diluted supernatant liquid of L1 strain to indictor strains T1 and T2  (mm)
    指示菌
    indicator strains
    上清液稀释倍数 times of dilution for supernatant liquid
    0 1 2 3
    T1 18 14.5
    T2 15
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    表 23可看出发酵液经3倍稀释对弧菌T1仍有抑制作用,上清液经1倍稀释后对弧菌T1的抑菌圈大小与发酵液3倍稀释液抑菌圈的大小相近。

    L1接种MRS培养基,30℃培养,培养18 h、24 h、36 h、48 h、72 h、5 d的发酵液的抑菌圈大小见表 4

    表  4  不同培养时间的L1菌发酵液对指示菌T1、T2的抑菌圈大小
    Table  4  Size of zone plate inhibitory to indictor strains T1 and T2 of fermentation liquid of L1 strain under different time  (mm)
    指示菌
    indicator strains
    不同培养时间的发酵液 fermentation liquid of different culture time
    18 h 24 h 36 h 48 h 72 h 5 d
    T1 22.5 24 24 25 28
    T2 20 22 23 24 25
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    表 4可看出,在菌生长的对数期18 h时的发酵液对两种指示菌都无抑菌圈,随培养时间的延长,抑菌圈越来越大,生长衰退期(36 h)比稳定期(24 h)的抑菌圈大,5 d的陈培养液的抑菌圈最大。原因可能是随着培养时间的延长,乳酸杆菌的生长及代谢产物抑菌物质的积累提高了其杀菌作用;陈培养物和衰退期的发酵液的抑菌圈大于生长期及稳定期的抑菌圈,可能是一些抗菌活性物质在乳酸菌死亡后释放出来。

    将MRS 24 h的发酵液,于60、80℃恒温水浴中保温15 min,及沸水浴中保温5、10、15 min,与原发酵液一起作抑菌活性试验,试验结果见表 5

    表  5  不同温度及时间处理的L菌发酵液对指示菌T1、T2的抑菌圈大小
    Table  5  Size of zone plate inhibitory to indictor strains T1 and T2 of fermentation liquid of L1 strain treated under different temperature and time (mm)
    指示菌
    indictor strains
    60℃ 80℃ 100℃ 未处理组
    control group
    15 min 15 min 5 min 10 min 15 min
    T1 23 23 23 23 23 23
    T2 22 22 22 22 22 22
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    表 5的试验结果可见,发酵液经60、80℃恒温水浴处理15 min,及沸水浴中处理5、10、15 min,其抑菌圈大小与未作温度处理的发酵液的抑菌圈大小无差异,可见代谢抑菌物质具有很好的耐热性。对虾饲料制作过程有高温制粒这一步骤,瞬间温度可达100℃,益生菌代谢抑菌物质具有良好的耐热性,可避免对虾饲料制作过程瞬间高温的破坏,而保持其活性。

    体外抑菌试验是筛选益生菌的手段,通过L1菌株体外对弧菌抑制试验,结果表明L1菌株对致病弧菌T1、T2有较强的抑制作用,而且生长速度快,有望成为微生态制剂的候选菌种,但能否成为益生菌,还需做一系列的的工作如进一步确定其对宿主有否致病作用,对被选菌株进行致病性评估;对宿主潜在效果的评价等。

    黄沧海等报导乳酸杆菌的代谢产物对不同血清型的大肠杆菌的抑制作用存在一定的差别,本试验的结果也表明,乳酸杆菌L1对不同的弧菌有不同的抑菌活性。水产养殖动物不同的疾病因病原不同,因此,实际在应用益生素制剂时,如果没有了解清楚益生菌的适用对象和范围就可能就会有不同的效果。Gatesoupe(1999)[8]通过每天添加乳杆菌在大菱鲆幼体活体食物的轮虫的培养基中,大大提高了鱼的成活率,当病原性弧菌侵袭幼体时,添加的乳杆菌能够大大降低幼体在9 d前的死亡率。因此认为乳杆菌可以防御病原菌-弧菌入侵大比目鱼的幼体。而Gildberg等(1997)[9-10]用添加了产乳酸细菌的饲料喂养大西洋鳕,将它们与经腹膜内感染了气单胞菌(Aeromonas salmonicida)的鱼苗一起养殖,在以后4周时间内记录鱼的死亡率,结果表明产乳酸细菌作为鱼苗饲料的添加成分可以促进肠微生物的定植,但未出现防止气单胞菌感染的现象,与预想相反,在饲料中添加了产乳酸细菌的鱼苗的死亡率最高。

    本试验的结果表明乳酸杆菌与代谢产物有协同抑菌作用。因此在评价乳酸菌的抑菌效果时,以乳酸杆菌与代谢产物的协同抑菌效果作为衡量指标应当是更科学合理。在使用乳酸菌益生素产品时,不应当只是利用其菌体,菌体及其代谢产物能一起使用效果可能会更好。

  • 图  1   大鳍鳠胚胎发育各时期

    注:a. 受精卵;b. 胚盘期;c. 2细胞期;d. 4细胞期;e. 8细胞期;f. 16细胞期;g. 32细胞期;h. 多细胞期;i. 囊胚早期;j. 囊胚中期;k. 囊胚晚期;l. 原肠早期;m. 原肠中期;n. 原肠晚期;o. 神经胚期;p. 胚孔封闭期;q. 体节出现期;r. 原肾出现期;s. 耳囊形成期;t. 尾芽分离期;u. 肌肉效应期;v. 心脏跳动期;w. 眼囊形成期;x. 耳石出现期;y. 第二对须原基出现期;z. 胸鳍原基出现期;aa. 眼色素出现期;ab. 出膜仔鱼;标尺=500 μm。

    Figure  1.   Embryonic development of M. macropterus

    Note: a. Fertilized egg; b. Blastodisc stage; c. 2-cell stage; d. 4-cell stage; e. 8-cell stage; f. 16-cell stage; g. 32-cell stage; h. Multicellular stage; i. Early blastula stage; j. Middle blastula stage; k. Late blastula stage; l. Early gastrula stage; m. Middle gastrula stage; n. Late gastrula stage; o. Neurula stage; p. Blastopore closed stage; q. Appearance of myomere; r. Proto-renal stage; s. Appearance of otic capsule; t. Tail bud separation period; u. Muscular effect stage; v. Heart pulsation; w. Optic capsule stage; x. Otolith formation stage; y. The second pair of whisker primordia; z.Thoracic fin primordium; aa. Occupation of ocular pigment; ab. Hatching stage; Bar=500 μm.

    图  2   大鳍鳠仔稚鱼发育

    注:a. 出膜1 d;b. 出膜2 d;c. 出膜3 d;d. 出膜4 d;e. 出膜5 d;f. 出膜6 d;g. 出膜7d;h. 出膜8 d;i. 出膜9 d;j. 出膜10 d;k. 出膜 11 d;l. 出膜12 d;m. 出膜13 d;n. 出膜14 d;o. 出膜16 d;p. 出膜17 d;q. 出膜18 d;r. 出膜19 d;s. 出膜20 d;t. 出膜21 d;标尺=1 mm。

    Figure  2.   Development of M. macropterus larva and juvenile

    Note: a. 1 d post hatching; b. 2 d post hatching; c. 3 d post hatching; d. 4 d post hatching; e. 5 d post hatching; f. 6 d post hatching; g. 7 d post hatching; h. 8 d post hatching; i. 9 d post hatching; j. 10 d post hatching; k. 11 d post hatching; l. 12 d post hatching; m. 13 d post hatching; n. 14 d post hatching; o. 16 d post hatching; P. 17 d post hatching; q. 18 d post hatching; r. 19 d post hatching; s. 20 d post hatching; t. 21 d post hatching; Bar=1 mm.

    图  3   大鳍鳠早期生长曲线

    Figure  3.   Early growth curve of M. macropterus

    表  1   大鳍鳠胚胎发育时序

    Table  1   Process of embryonic development of M. macropterus

    发育时期
    Developmental stage
    受精后时间
    Time after
    fertilization/
    h
    持续时间
    Duration/
    h
    平均卵径
    Average egg
    diameter/
    mm
    平均水温
    Average
    temperature/
    积温
    Accumulative
    temperature/
    (h·℃)
    图1
    Fig. 1
    受精卵
    Fertilized egg
    受精卵
    Fertilized egg
    0 2.00 3.46±0.30 26.1 52.20 a
    胚盘期
    Blastodisc stage
    胚盘期
    Blastodisc stage
    2.00 1.35 3.44±0.16 26.2 35.37 b
    卵裂期
    Cleavage stage
    2 细胞期
    2-cell stage
    3.35 3.15 3.52±0.12 26.3 82.85 c
    4 细胞期
    4-cell stage
    d
    8 细胞期
    8-cell stage
    e
    16 细胞期
    16-cell stage
    f
    32 细胞期
    32-cell stage
    g
    多细胞期
    Multicellular stage
    h
    囊胚期
    Blastula stage
    囊胚早期
    Early blastula stage
    6.50 12.65 3.53±0.17 26.3 332.70 i
    囊胚中期
    Middle blastula stage
    j
    囊胚晚期
    Late blastula stage
    k
    原肠期
    Gastrula stage
    原肠早期
    Early gastrula stage
    19.15 7.05 3.42±0.18 26.3 185.42 l
    原肠中期
    Middle gastrula stage
    m
    原肠晚期
    Late gastrula stage
    n
    神经胚期
    Neurula stage
    神经胚期
    Neurula stage
    26.20 13.47 3.40±0.05 26.0 350.22 o
    胚孔封闭期
    Blastopore closed stage
    p
    器官形成期
    Organogenesis stage
    体节出现期
    Appearance of myomere
    39.67 32.25 3.57±0.28 26.1 841.73 q
    原肾出现期
    Proto-renal stage
    r
    耳囊形成期
    Appearance of otic capsule
    s
    尾芽分离期
    Tail bud separation period
    t
    肌肉效应期
    Muscular effect stage
    u
    心脏跳动期
    Heart pulsation
    v
    眼囊形成期
    Optic capsule stage
    w
    耳石出现期
    Otolith formation stage
    x
    第二对须原基出现
    The second pair of whisker primordia
    y
    胸鳍原基出现期
    Thoracic fin primordium
    z
    眼色素出现期
    Occupation of ocular pigment
    aa
    出膜期
    Hatching stage
    出膜仔鱼
    Hatching stage
    71.90 7.08 26.1 184.79 ab
    下载: 导出CSV

    表  2   大鳍鳠不同日龄仔、稚鱼生长变化情况

    Table  2   Growth variation of larval and juvenile M. macropterus at different time

    日龄
    Days post
    hatching/d
    全长
    Total
    length/mm
    体质量
    Body
    mass/g
    全长特定
    增长率
    SGRL/%
    体质量特定
    增长率
    SGRm/%
    1 7.31±0.52 0.011±0.005 9.79 12.31
    2 10.01±0.96 0.013±0.001
    3 10.19±0.42 0.016±0.001
    4 10.85±1.76 0.018±0.003
    5 11.58±0.22 0.018±0.003
    6 11.93±1.19 0.020±0.001
    7 12.96±1.80 0.021±0.001 4.15 12.25
    8 13.74±3.45 0.021±0.002
    9 13.92±0.45 0.024±0.003
    10 14.68±1.08 0.030±0.001
    11 15.81±2.16 0.033±0.002 4.30 13.17
    12 17.00±3.87 0.034±0.013
    13 18.26±2.95 0.037±0.011
    14 18.38±3.72 0.055±0.003
    15 19.19±2.60 0.056±0.013
    16 21.65±2.25 0.061±0.001
    17 22.65±3.79 0.062±0.007
    18 23.06±2.93 0.089±0.004
    19 23.11±4.08 0.100±0.011
    20 24.11±0.21 0.115±0.032
    21 24.32±0.05 0.122±0.019
    22 25.00±0.23 0.125±0.001 2.28 12.13
    23 25.32±1.23 0.127±0.007
    24 26.02±0.78 0.130±0.004
    25 27.28±2.55 0.140±0.011
    26 27.98±0.56 0.163±0.032
    27 28.36±1.78 0.189±0.019
    28 29.50±2.21 0.227±0.005
    29 29.72±0.66 0.227±0.019
    30 30.02±1.68 0.230±0.035
    下载: 导出CSV

    表  3   大鳍鳠与其他鲶形目鱼类胚胎发育比较

    Table  3   Comparison of embryonic developmental characteristics between M. macropterus and other Siluriformes fish

    种类
    Specis
    卵径
    Egg diameter/
    mm
    吸水后卵径
    Egg diameter
    after water
    absorption/
    mm
    出膜方式
    Hatching
    pattern
    出膜长度
    Hatching
    length/mm
    胚胎发育水温
    Temperature/
    胚胎发育历时
    Embryonic
    development
    文献
    Reference
    大鳍鳠
    M. macropterus
    2.72±0.2 3.46±0.30 尾部破膜 7.31±0.52 26 79 h 本文
    黄颡鱼
    Pelteobagrus fulvidraco
    1.86~2.26 尾部破膜 4.8~5.5 24~27.5 62 h 50 min [18]
    长吻鮠
    Leiocassis longirostris
    2.18~2.35 2.51~2.58 尾部破膜 5.33~6.62 21~27 59 h 5 min [19]
    瓦氏黄颡鱼
    Pelteobagrus vachelli
    1.67 2.04 尾部破膜 4.2~4.35 20~24.5 49 h 15 min [20]
    24~28 64 h
    乌苏里鮠
    Pseudobagrus ussuriensis
    2.0 2.5 尾部破膜 7 25.5~26 49 h 26 min [21]
    斑鳠
    Mystus guttatus
    3.1~3.8 4.0~4.2 尾部破膜 27.5±0.5 55 h [22]
    兰州鲶
    Silurus lanzhouensis
    2.07~2.4 3.44~3.46 尾部破膜 4.5 21.5~22.5 53 h 10 min [23]
    24~25 39 h 37 min
    27~28 30 h 20 min
    南方大口鲶
    S. soldatovi meridionalis
    2.089 3.055 尾部破膜 5.0~7.05 16.5~18.5 53 h 25 min [24]

    S. asotus
    1.4~1.7 4.05~5.7 尾部破膜 4.64~5.32 27.5~31 29.5 h [25]
    胡子鲶
    Claris fuscus
    1.7~1.9 1.9~2.1 腹部卵黄囊破膜 4.8~5.1 28.5~31 28 h 25 min [26]
    革胡子鲶
    C. gariepinus
    1.23~1.36 1.34~1.43 尾部破膜 3.12~3.62 26.4~29.2 23 h 45 min [27]
    下载: 导出CSV
  • [1] 葛玲瑞, 刘金凤, 刘科均, 等. 大鳍鳠流水养殖技术要点[J]. 水产养殖, 2022, 43(11): 51-52. doi: 10.3969/j.issn.1004-2091.2022.11.013
    [2] 杨德国, 周剑光, 吴国犀, 等. 长江大鳍鳠的人工繁殖[J]. 中国水产科学, 1998, 5(2): 27-31.
    [3] 朱成科, 郑永华, 高元彧, 等. 大鳍鳠的生物学特性和人工繁养殖前景研究[J]. 水利渔业, 2007, 27(5): 86-89. doi: 10.3969/j.issn.1003-1278.2007.05.037
    [4] 许倩, 刘良国, 黄文轩, 等. 沅水五强溪水库大鳍鳠的遗传多样性分析[J]. 四川农业大学学报, 2019, 37(2): 253-258.
    [5] 杨德国, 吴国犀, 周剑光, 等. 大鳍鳠亲鱼池塘驯养和培育技术[J]. 淡水渔业, 1996, 26(2): 3-6.
    [6] 马跃岗, 朱杰, 陈元坤, 等. 大鳍鳠的人工繁殖与苗种培育研究[J]. 重庆水产, 2012(2): 20-22.
    [7] 李晓莉, 朱永久, 杨德国, 等. 大鳍鳠人工繁殖研究进展及前景展望[J]. 水产科技情报, 2023, 50(2): 128-132.
    [8] 殷名称. 鱼类早期生活史研究与其进展[J]. 水产学报, 1991, 15(4): 348-358.
    [9]

    PUVANESWARI S, MARIMUTHU K, KARUPPASAMY R, et al. Early embryonic and larval development of Indian catfish, Heteropneustes fossilis[J]. Eurasian J Biosic, 2009, 3: 84-96.

    [10] 王德寿, 杨松林. 大鳍鳠的可量性状、长重关系和肥满度[J]. 西南师范大学学报(自然科学版), 1992, 17(4): 510-515. doi: 10.13718/j.cnki.xsxb.1992.04.018
    [11]

    CHATAKONDI N G, TORRANS E L. The influence of ovarian fluid pH of stripped unfertilized channel catfish, Ictalurus punctatus, eggs on the hatching success of channel catfish [female]×blue catfish, Ictalurus furcatus[male], hybrid catfish eggs[J]. J World Aquac Soc, 2012, 43(4): 585-593. doi: 10.1111/j.1749-7345.2012.00577.x

    [12]

    NAHIDUZZAMANA M, HASSAN M M, ROY P K, et al. Sperm cryopreservation of the Indian major carp, Labeo calbasu: effects of cryoprotectants, cooling rates and thawing rates on egg fertilization[J]. Anim Report Sci, 2012, 136(1/2): 133-138.

    [13] 林红军, 刘莎, 曾玲. 黄颡鱼人工授精及胚胎发育研究[J]. 黑龙江畜牧兽医, 2019(12): 138-140, 170. doi: 10.13881/j.cnki.hljxmsy.2018.09.0099
    [14] 韩军军, 贺疆滔, 陈朋, 等. 扁吻鱼胚胎发育及仔稚鱼形态与生长观察研究[J]. 南方水产科学, 2021, 17(1): 59-66.
    [15] 许静, 谢从新, 邵俭, 等. 雅鲁藏布江尖裸鲤胚胎和仔稚鱼发育研究[J]. 水生态学杂志, 2011, 32(2): 86-95. doi: 10.15928/j.1674-3075.2011.02.019
    [16] 王亚利, 刘玥, 田佳佳, 等. 温度对四川华鳊仔、稚鱼生长发育及存活率的影响[J]. 渔业科学进展, 2021, 42(5): 47-54. doi: 10.19663/j.issn2095-9869.20200308002
    [17] 钟全福, 樊海平, 薛凌展, 等. 大刺鳅仔、稚鱼的生长及摄食节律[J]. 广东海洋大学学报, 2020, 40(2): 28-34.
    [18] 王令玲, 仇潜如, 邹世平, 等. 黄颡鱼胚胎和胚后发育的观察研究[J]. 淡水渔业, 1989(5): 9-12.
    [19] 苏良栋, 何学福, 张耀光, 等. 长吻鮠 Leiocassis longirostris Gunther胚胎发育的初步观察[J]. 淡水渔业, 1985, 15(4): 2-4.
    [20] 袁伦强. 温度对瓦氏黄颡鱼 (Pelteobagrus vachelli)胚胎和仔鱼发育的影响[D]. 重庆: 西南师范大学, 2005: 8-9.
    [21] 崔宽宽, 李贺密, 苗建春, 等. 乌苏里鮠胚胎发育观察[J]. 河北渔业, 2012(2): 32-36, 44. doi: 10.3969/j.issn.1004-6755.2012.02.013
    [22] 焦宗垚, 陈赛, 陈昆慈, 等. 珠江斑鳠的早期胚胎发育观察[J]. 广东海洋大学学报, 2007, 27(3): 20-23. doi: 10.3969/j.issn.1673-9159.2007.03.005
    [23] 吴旭东, 李力, 张锋, 等. 兰州鲇胚胎发育初步研究[J]. 当代水产, 2011, 36(1): 65-67. doi: 10.3969/j.issn.1674-9049.2011.01.021
    [24] 谢小军. 南方大口鲶的胚胎发育[J]. 西南师范大学学报 (自然科学版), 1986, 13(3): 72-78.
    [25] 魏刚, 罗学成. 鲶胚胎和幼鱼发育的研究[J]. 四川师范学院学报 (自然科学版), 1994, 15(4): 350-355.
    [26] 潘炯华, 郑文彪. 胡子鲶的胚胎和幼鱼发育的研究[J]. 水生生物学集刊, 1982, 7(4): 437-444.
    [27] 潘炯华, 郑文彪. 革胡子鲇的胚胎和仔、稚鱼发育的研究[J]. 华南师范大学学报 (自然科学版), 1987(1): 19-28.
    [28] 张耀光, 王德寿, 罗泉笙. 大鳍鳠的胚胎发育[J]. 西南师范大学学报 (自然科学版), 1991, 16(2): 223-229.
    [29] 牛建功, 张涛, 沙文军, 等. 斑重唇鱼胚胎及早期仔鱼发育的初步观察[J]. 河北渔业, 2021(11): 7-12. doi: 10.3969/j.issn.1004-6755.2021.11.003
    [30]

    HANSE T K, FALK-PETERSEN I B. The influence of rearing temperature on early development and growth of spotted wolffish Anarhichas minor (Olafsen)[J]. Aquac Res, 2002, 32(5): 369-378.

    [31]

    THORN M W, MORBEY Y E. Egg size and the adaptive capacity of early life history traits in chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha)[J]. Evol Appl, 2018, 11(2): 205-219. doi: 10.1111/eva.12531

    [32]

    HAN M Y, LUO M, YANG R, et al. Impact of temperature on survival and spinal development of golden pompano Trachinotus ovatus (Linnaeus 1758)[J]. Aquac Rep, 2020, 18: 100556. doi: 10.1016/j.aqrep.2020.100556

    [33]

    TSUJI M, ABE H, HANYUU K, et al. Effect of temperature on survival, growth and malformation of cultured larvae and juveniles of the seven-band grouper Epinephelus septemfasciatus[J]. Fish Sci, 2014, 80(1): 69-81. doi: 10.1007/s12562-013-0680-z

    [34] 王志强, 庞守忠. 黄颡鱼仔稚鱼发育和摄食习性研究[J]. 江苏农业科学, 2009(6): 311-313. doi: 10.3969/j.issn.1002-1302.2009.06.131
    [35] 刘明鉴, 郭华阳, 高杰, 等. 尖翅燕鱼早期胚胎发育及仔稚鱼形态观察[J]. 南方水产科学, 2022, 18(4): 103-111.
    [36] 乔晔. 长江鱼类早期形态发育与种类鉴别[D]. 武汉: 中国科学院研究生院 (水生生物研究所), 2005: 13-17.
    [37] 徐滨, 朱祥云, 魏开金, 等. 拉萨裂腹鱼的胚胎及仔稚鱼发育特征[J]. 大连海洋大学学报, 2020, 35(5): 663-670. doi: 10.16535/j.cnki.dlhyxb.2019-215
    [38]

    KAJIWARA K, NAKAYA M, SUZUKI K, et al. Effect of egg size on the growth rate and survival of wild walleye pollock Gadus chalcogrammus larvae[J]. Fish Oceanogr, 2022, 31(3): 238-254. doi: 10.1111/fog.12575

    [39]

    RIDEOUT R M, TRIPPEL E A, LITVAK M K. Effects of egg size, food supply and spawning time on early life historysuccess of haddock Melanogrammus aeglefinus[J]. Mar Ecol Prog Ser, 2005, 285: 169-180. doi: 10.3354/meps285169

    [40] 杨建, 耿龙武, 王雨, 等. 拟赤梢鱼的胚胎发育和仔稚鱼生长特性观察[J]. 水生生物学报, 2021, 45(3): 643-651. doi: 10.7541/2021.2020.017
    [41] 张呈祥, 徐钢春, 徐跑, 等. 美洲鲥仔、稚、幼鱼的形态发育与生长特征[J]. 中国水产科学, 2010, 17(6): 1227-1235.
    [42] 赵红雪, 吴旭东, 李力, 等. 兰州鲇仔稚鱼发育的初步研究[J]. 当代水产, 2010, 35(12): 59-62. doi: 10.3969/j.issn.1674-9049.2010.12.014
    [43]

    ÇELIK P, CIRILK Ş. Embryonic and larval development of serpae tetra Hyphessobrycon eques (Steindachner, 1882)[J]. Aquac Res, 2020, 51(1): 292-306. doi: 10.1111/are.14375

    [44] 李晓莉, 朱永久, 杨德国, 等. 大规格大鳍鳠对隐蔽所的选择及其行为特征[J]. 中国水产科学, 2022, 29(12): 1768-1777. doi: 10.12264/JFSC2022-0270
    [45] 张耀光, 何学福. 长吻鮠幼鱼发育的研究[J]. 水生生物学报, 1991, 15(2): 153-160.
    [46] 李萍, 庹云. 岩原鲤早期行为习性的初步观察[J]. 安徽农业科学, 2008, 36(2): 565-566. doi: 10.3969/j.issn.0517-6611.2008.02.078
    [47] 黄小林, 杨育凯, 李涛, 等. 黄斑篮子鱼仔、稚、幼鱼形态观察与生长研究[J]. 南方水产科学, 2018, 14(5): 88-94. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2018.05.011
    [48] 施兆鸿, 彭士明, 罗海忠, 等. 人工育苗条件下舟山牙鲆仔稚鱼的摄食与生长[J]. 上海水产大学学报, 2007, 16(6): 566-557.
    [49] 王亚利, 刘玥, 田佳佳, 等. 四川华鳊仔稚鱼生长与形态发育研究[J]. 渔业科学进展, 2020, 41(4): 58-67. doi: 10.19663/j.issn2095-9869.20190627001
    [50] 王雨福, 肖志忠, 刘清华, 等. 斑石鲷早期发育的异速生长模式[J]. 海洋科学, 2016, 40(5): 43-48. doi: 10.11759//hykx20141216005
  • 期刊类型引用(0)

    其他类型引用(1)

推荐阅读
多线盘鮈人工繁殖和胚胎发育规律研究
王岳松 et al., 南方水产科学, 2025
尖翅燕鱼早期色素细胞发育与体色变化
庾楚霞 et al., 南方水产科学, 2025
高温胁迫对克氏原螯虾肠道组织形态与转录组的影响
包志明 et al., 南方水产科学, 2025
横带髭鲷早期发育阶段消化系统组织学观察
平洪领 et al., 南方水产科学, 2025
大鳍鳠人工繁殖技术优化
李晓莉 et al., 水产学报, 2025
花鲈仔稚鱼视觉、消化和运动等器官发育组织学观察
HAN Feng et al., CHINESE JOURNAL OF FISHERIES, 2023
Mycobacterium tuberculosis-macrophage interaction: molecular updates
Bo, Haotian et al., FRONTIERS IN CELLULAR AND INFECTION MICROBIOLOGY, 2023
Macrophages and bone remodeling
Weivoda, Megan M., JOURNAL OF BONE AND MINERAL RESEARCH, 2023
Three-dimensional culture model to study the biology of vacuolated notochordal cells from mouse nucleus pulposus explants
EUROPEAN CELLS & MATERIALS, 2023
Magnetic soft microrobot design for cell grasping and transportation
CYBORG AND BIONIC SYSTEMS, 2024
Powered by
图(3)  /  表(3)
计量
  • 文章访问数:  247
  • HTML全文浏览量:  52
  • PDF下载量:  48
  • 被引次数: 1
出版历程
  • 收稿日期:  2023-04-24
  • 修回日期:  2023-06-27
  • 录用日期:  2023-07-19
  • 网络出版日期:  2023-07-31
  • 刊出日期:  2023-12-04

目录

/

返回文章
返回