Study on purification effect of shellfish and algae coupling on intensive aquaculture tailwater
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摘要:
为探讨贝、藻偶合方式对集约化养殖尾水的净化作用，研究分析了香港牡蛎 (Crassostrea hongkongensis) 和钝顶螺旋藻 (Spirulina platensis) 耦合对富含氮 (N)、磷 (P) 营养盐的生物絮团养殖尾水的处理效果。实验共设置5组，小规格组 (S)、中规格组 (M) 和大规格组 (L) 添加的牡蛎个体均质量分别为 (50.99±7.01)、(100.25±8.87) 和 (148.81±15.61) g，阴性对照组 (NC) 只添加螺旋藻，空白对照组 (BC) 不添加牡蛎和螺旋藻，实验组中螺旋藻密度约为 8×105 个·mL−1，牡蛎生物量为3 kg·m−3。记录牡蛎的成活率及生长情况，显微镜计数螺旋藻密度，测定水体氨氮 (
${\rm{NH}}_4^{\text{+}} $ -N)、亚硝酸盐 (${\rm{NO}}_2^{\text{−}} $ -N)、硝酸盐 (${\rm{NO}}_3^{\text{−}}$ -N)、活性磷酸盐 ($ {\rm{PO}}_4^{3{\text{−}}}$ -P)、总无机氮 (TIN)、总氮 (TN)、总磷 (TP)、总悬浮物 (TSS) 等的浓度。结果显示，成活率S组>M组>L组，M组体质量增长率最高；NC组的螺旋藻密度最高 [(1.30±0.25)×107 个·mL−1]；M组能去除30.61%的TSS；NC组的TIN和${\rm{PO}}_4^{3{\text{−}}} $ -P去除率最高，分别为89.29%和98.93%；M组的TN和TP去除率最高，分别为38.91%和55.10%。研究表明螺旋藻净化无机氮、无机磷效果明显，牡蛎能有效摄食水体中的螺旋藻，将个体均质量 (100.25±8.87) g的牡蛎与螺旋藻耦合，对去除养殖尾水中TN、TP和TSS的效果最佳。Abstract:To explore the purification effect of shellfish and algae coupling on intensive aquaculture tailwater, we analyzed the coupling effects of oyster (Crassostrea hongkongensis) and microalgae (Spirulina platensis) on tailwater treatment of biological flocs which are rich in nitrogen and phosphorus nutrients. A total of five groups were set up. The average mass of oysters added to the small (S), medium (M) and large (L) size groups was (50.99±7.01), (100.25±8.87) and (148.81±15.61) g, respectively. The negative control group (NC) was only added with spirulina, and the blank control group (BC) was not added with oysters and spirulina. The density of spirulina was about 8×105 cell·mL−1 and oyster biomass was 3 kg·m−3. The survival rate and growth of oysters were recorded, and the cell density of spirulina in water was counted under a microscope. The concentrations of
${\rm{NH}}_4^{\text{+}} $ -N,${\rm{NO}}_2^{\text{−}} $ -N,${\rm{NO}}_3^{\text{−}} $ -N,${\rm{PO}}_4^{3{\text{−}}} $ -P, TIN, TN, TP and TSS in water were detected. The results show that the survival rate of oysters in the experimental group followed a descending order of S>M>L. The highest rate of weight gain was observed in Group M. The highest density of spirulina was (1.30±0.25)×107 cells·mL−1 in Group NC. The highest TSS removal rate in Group M was 30.61%. The NC group had the highest TIN and${\rm{PO}}_4^{3{\text{−}}} $ -P removal rates of 89.29% and 98.93%, respectively. Group M had the highest TN and TP removal rates of 38.91% and 55.10%, respectively. The results suggest that spirulina has a significant effect on purifying inorganic nitrogen and phosphorus. Oysters can feed on spirulina in water effectively. Coupling oysters of average mass of (100.25±8.87) g with spirulina has the best effect on removing TN, TP and TSS from aquaculture tail water. -
方斑东风螺 (Babylonia areolata)，隶属于软体动物门、腹足纲、新腹足目、蛾螺科、东风螺属，是一种经济价值较高的浅海底栖贝类，主要分布于东南亚、日本以及我国东南沿海地区[1-3]。方斑东风螺因贝壳上具有漂亮的方形斑纹又被称为“花螺”，其味道鲜甜、肉质紧实有嚼劲，被誉为21世纪最具开发前景的养殖良种之一[4-5]。近年来，东风螺养殖产业发展迅速，养殖规模进一步扩大[6]。随着人们生活水平的不断提高，在追求产量的同时，对螺的品质和外观也提出了更高的要求，清晰而明艳的方形斑纹更受消费者青睐。
在水产动物健康养殖过程中，为水产动物提供适宜的栖息环境，不仅可以减少环境应激反应，对提高养殖成活率、增加养殖效益也具有重要意义[7]。环境与生物是相互适应的，底质类型往往对潜沙型生物的生长、存活和生理状态产生更强的影响[8]。已有研究表明，双壳贝类Mysella vitrea、Telline deltoidalis和Timoclea scabra在砂质环境中的生长情况更好[9-10]；管角螺 (Hemifusus tuba Gemlin) 在泥沙质或无底质环境中的生长率较高，而在沙质中较差[11]；缢蛏 (Sinonovacula constricta) 稚贝在砂或掺有贝壳的泥质砂中的成活率较高[12]；青蛤 (Cyclina sinensis) 在泥沙质中生长较好[13]。而对于水泥池养殖的东风螺，相较于无砂环境，铺砂更利于其存活，且底质中含泥量在10%以内对东风螺无显著影响[14]。除了不同的底质材质，水环境的颜色对水生生物生长也有显著影响。三疣梭子蟹 (Portunus trituberculatus) 在红色或黄色环境下，成活率较高，生长较快[15]；而河鲈(Perca fluviatilis) 则是在浅色环境下生长较快[16]；红螯螯虾 (Cherax quadricarinatus) 在人工调配的蓝色水体中，成活率较高，生长较快，体色有较高的观赏价值[17]。可见，底质环境对水产动物的影响是多方面的[18-19]，可以通过改变养殖底质环境达到促进生长和改善外观的目的。
当前方斑东风螺的养殖底质多为砂砾[3]，在养殖过程中需要经常洗砂和换砂，不仅导致生产效率低下，还增加了养殖风险。陶粒为目前工厂化养殖的常用人工材料，由陶土烧制而成，具有质量轻、多气孔、比表面积及孔隙率大、含氧量高、可培育硝化细菌等特点，具有广阔的应用前景[20-22]。本文以河砂为对照组，选择4种不同颜色的陶粒底质 (棕色、黑色、黄色和白色) 开展为期30 d的养殖对比实验，研究不同底质类型及颜色对方斑东风螺稚螺生长、壳色及抗氧化能力的影响，探讨其较适宜的养殖底质，以期筛选出传统河砂的替代物，为新型工厂化循环水养殖模式探索、东风螺健康养殖和壳色调控提供理论依据和技术支持。
1. 材料与方法
1.1 实验材料
实验于2022年1—2月在海南省琼海市海洋与渔业科学院科研基地进行，方斑东风螺稚螺由海南省文昌市坤田水产有限公司提供，在养殖系统中暂养7 d后，选取大小均匀、潜沙正常、活力较好的稚螺作为实验材料，其平均壳高、壳宽和体质量分别为 (10.40 ± 0.39) mm、(6.90±0.27) mm和 (0.231±0.020) g。
河砂购自淘宝城固山货特产店，棕色、黑色、黄色、白色陶粒均购自淘宝灵寿县磊诚矿产品加工厂，粒径均为1 mm。
1.2 实验设计与养殖管理
实验设置河砂、棕色陶粒、黑色陶粒、黄色陶粒、白色陶粒共5个实验组，各实验组分别设置3个平行组，每个平行组放置100粒实验稚螺，底质厚度控制为2.5 cm，实验周期为30 d。
实验采用微流水养殖系统[23]，使用经沉淀、沙滤及滤袋过滤后的新鲜海水 (盐度29‰)，控制水位高度30 cm，水温在 (24.3±1.6) ℃，盐度稳定在29‰，pH介于8~8.1，养殖系统24 h连续充氧并保证水体溶解氧质量浓度>7.0 mg·L−1，每个处理组养殖水体的面积为0.48 m2，流速为70 L·h−1。每天早上 (8:00) 投喂剪碎的新鲜牡蛎肉，日投喂量为体质量的25%，每天投喂1次。
1.3 样品的采集与处理
1.3.1 动物组织样品处理
实验结束时，从每个处理组3个重复中各取15粒螺，称量后去壳取完整软体组织，混合后按质量 (g)∶体积 (mL) 为 1∶9加入生理盐水，机械匀浆，3 000 r·min−1离心10 min，取上清液于−80 ℃冰箱储藏，用于后续抗氧化酶活性测定。
1.3.2 底质样品处理
实验结束时，在每个处理组3个重复中各称取新鲜底质10 g (精确至0.1 g)，混合后放入三角瓶中，加入100 mL 2 mol· L−1氯化钾 (KCl) 溶液，放入摇床常温下振荡30 min，立即过滤至水样瓶中用于底质氨氮 (NH4 +-N) 含量的测定。每组3个重复中各称取新鲜底质10 g，混合后放入三角瓶中，加入0.1 g硫酸钙 (CaSO4) 和50 mL水，放入摇床常温下振荡10 min，静置5 min后，上清液过滤用于底砂亚硝酸盐 (NO2 −-N) 含量的测定。
1.4 检测指标与计算
1.4.1 底质指标的检测
对底质样品进行 NH4 +-N 和 NO2 −-N 含量分析 (SmartChem-140化学分析仪)。NH4 +-N 和 NO2 −-N 的测定分别采用靛酚蓝法和重氮耦合法。
1.4.2 生长指标及成活率
实验结束后，每个处理组的3个重复各随机挑选30粒螺用于生长指标的测定。使用游标卡尺对样品进行壳高 (SH) 和壳宽 (SW) 的测量 (图1)，用分析天平进行体质量的称量。
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图 1 方斑东风螺外壳形态指标测量模式图Figure 1. Measurement of shell morphology indicators of juvenile B. areolata成活率按下列公式计算：
$$ R_{\mathrm{s}}= N_t / N_1\times 100 {\text{%}}$$ (1) 式中：Rs为成活率(%)；N1和Nt分别为实验开始时和结束后的成活个数。
1.4.3 外壳颜色指标检测
实验结束后，在每个处理组3个重复中各挑选30粒螺进行拍照，用于后期壳色分析。壳色测定采用图片分析法[17]，在摄影箱 (22 cm×22 cm×22 cm) 上方8 cm处对稚螺进行拍摄，随后采用Adobe Photoshop CS3软件测量不同实验组稚螺整个壳部的CIE (1976)-Lab表色系参数。颜色参数换算公式如下：
$$ L^*=(L / 255) \times 100 $$ (2) $$ a^*=(240 a / 255) \times 120 $$ (3) $$ b^*=(240 b / 255) \times 120 $$ (4) 式中：L、a、b是通过Adobe Photoshop CS3软件获得的图片颜色参数直接数值。L*代表明度；a*表示红度，表示从绿到红的变化，数值介于−120~120；b*代表黄度，表示从蓝到黄的变化，数值介于−120~120。
1.4.4 组织抗氧化能力及膜脂过氧化物含量的检测
采用南京建成生物科技有限公司的生化试剂盒进行总抗氧化能力 (T-AOC)、超氧化物歧化酶 (SOD)、过氧化氢酶 (CAT) 活性及丙二醛 (MDA) 含量的测定，操作方法严格按照说明书进行。
1.5 数据处理
实验数据均以“平均值±标准差 (
$\bar x $ ±s)”表示，所有数据采用DPS 14.5软件进行数据处理，采用单因素方差分析 (One-way ANOVA) 对各实验组进行显著性检验, 利用Turkey法进行多重比较，以0.05为显著性阈值。2. 结果
2.1 不同底质的氨氮和亚硝酸盐含量分析
实验结束后，不同底质下的NH4 +-N和NO2 −-N质量浓度存在差异 (图2)。黄色和白色陶粒组的NH4 +-N、NO2 −-N质量浓度分别为 (0.234±0.008)、(0.029±0.000) mg·L−1和 (0.225±0.014)、(0.029±0.001) mg·L−1，均显著低于其他实验组 (P<0.05)；河砂组中NH4 +-N质量浓度最高 [(0.382±0.010) mg·L−1]，显著高于4种颜色的陶粒组 (P<0.05)；黄色和白色陶粒组间无显著性差异 (P>0.05)。
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图 2 不同底质中氨氮和亚硝酸盐质量浓度注：不同字母代表不同养殖底质各实验组之间存在显著性差异 (P<0.05)，下同。Figure 2. Mass concentrations of NH4 +-N and NO2 −-N in different substrate groupsNote: Different letters indicate significant differences among different groups (P<0.05). The same below.2.2 不同底质环境下的成活率
不同底质环境显著影响方斑东风螺稚螺的成活率 (图3，P<0.05)。黄色和白色陶粒组稚螺的成活率显著低于河砂组、棕色和黑色陶粒组 (P<0.05)，而棕色和黑色陶粒组稚螺的成活率显著高于河砂组 (P<0.05)。实验结束时，棕色陶粒组的成活率最高 [(62.00±2.00)%]，白色陶粒组最低 [(42.50±3.00)%]，且各实验组的成活率均小于65%。
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图 3 不同底质养殖的方斑东风螺稚螺成活率Figure 3. Survival rate of juvenile B. areolata in different substrate groups2.3 不同底质环境下的生长情况
随着养殖时间的推移，养殖在不同底质环境中的稚螺在壳高、壳宽、体质量等生长指标上表现出差异 (图4)。实验结束时，河砂组稚螺的壳高、壳宽、体质量分别为 (14.22±0.03) mm、(9.37±0.04) mm、(0.541±0.022) g，显著高于黑色、黄色和白色陶粒组 (P<0.05)，但与棕色陶粒组之间无显著性差异 (P>0.05)；白色陶粒组稚螺平均体质量最小，仅 (0.427±0.024) g。
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图 4 不同底质养殖的方斑东风螺稚螺生长差异Figure 4. Growth differences of juvenile B. areolata in different substrate groups2.4 不同底质环境下的壳色分析
不同底质环境会显著影响方斑东风螺稚螺的壳色 (图5)。各实验组稚螺壳的L*、a*和b*具有一致的规律性；棕色陶粒组的L*、a*、b*最高，分别为45.86±0.11、7.38±0.12、26.53±0.01，显著高于其他组 (P<0.05)；黑色陶粒组方斑东风螺的L*、a*、b*次之，分别为43.67±0.32、7.09±0.06、24.35±0.32，显著高于河砂组、黄色和白色陶粒组 (P<0.05)；而河砂组、黄色和白色陶粒组的L*、a*、b*无显著性差异 (P>0.05)。
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图 5 不同底质养殖的方斑东风螺稚螺贝壳的明度、红度和黄度Figure 5. Lightness, redness and yellowness of juvenile B. areolata in different substrate groups2.5 抗氧化酶活性和膜脂过氧化物含量分析
不同底质环境下稚螺抗氧化酶活性和膜脂过氧化物含量见图6。各组间稚螺的总抗氧能力存在显著性差异(图6-a，P<0.05)，由高到低分别为：棕色陶粒组[(0.297±0.009) mmol·g−1]>黑色陶粒组[(0.246±0.004) mmol·g−1]>河砂组[(0.220±0.007) mmol·g−1]>黄色陶粒组[(0.168±0.004) mmol·g−1]>白色陶粒组 [(0.141±0.002) mmol·g−1]。
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图 6 不同底质养殖的方斑东风螺稚螺总抗氧化能力、过氧化氢酶、超氧化物歧化酶活性及丙二醛含量Figure 6. T-AOC, CAT and SOD activities and MDA molality of juvenile B. areolata in different substrate groups对CAT活性的影响见图6-b，白色陶粒组稚螺的CAT活性为 (30.864±0.623) U·mg−1，显著高于其他实验组；黄色陶粒组次之，显著高于另外3组；棕色陶粒组稚螺的CAT活性最低 [(12.614±0.378) U·mg−1]，显著低于其他组 (P<0.05)。
黄色和白色陶粒组稚螺的SOD活性显著高于其他实验组 (P<0.05)，其中河砂组的SOD活性最低 [(7.008±0.817) U·mg−1，图6-c]。
方斑东风螺稚螺膜脂过氧化物含量受底质环境影响显著 (图6-d)，黄色和白色陶粒组稚螺MDA质量摩尔浓度分别为 (1.539±0.045) 和 (1.580±0.015) nmol·mg−1，显著高于其他3组 (P<0.05)。
3. 讨论
3.1 底质对养殖环境的影响
在养殖过程中，底质不仅是底栖贝类的栖息场所，还承担了大部分营养物质和有机物的沉积。饵料残渣、排泄物以及动物尸体倾向于在底部聚集。当沉积物超出了底质自身的承载量，这些有毒物质会被释放到养殖水体中，间接对养殖动物造成影响[24]。在水体中，NH4 +-N以NH4 + 和NH3的形式存在，NH3可直接进入细胞膜，破坏膜结构、影响蛋白质代谢，甚至造成DNA损伤[25]。在养殖水体和底质中，NH4 +-N与NO2 −-N是微生物利用含氮有机物进行硝化作用过程中产生的重要中间产物，其含量可作为判断养殖环境好坏的重要指标[26]。本研究发现，不同底质环境中NH4 +-N和NO2 −-N的含量存在差异，河砂组中NH4 +-N含量高，陶粒组中NH4 +-N含量低。这可能与陶粒多孔、比表面积大的结构有关[27]，有利于硝化细菌的繁殖，且陶粒间空隙较大有利于底质中的水体流动、物质交换。已有研究表明，陶粒能有效去除NH4 +-N，去除率高达80% [28]。本实验棕色陶粒组的NO2 −-N含量与河砂组无显著性差异，黄色和白色陶粒组NH4 +-N含量较低，这可能与底质颜色影响养殖生物有关。在黄色和白色陶粒环境下，浅色或更透亮的环境使稚螺受到较强的环境胁迫，摄食减少，排泄量降低，从而导致NH4 +-N含量低。且在实验后期黄色和白色陶粒组稚螺成活个数较少，通过流水可以充分地将残饵与粪便排出养殖系统。Abed和Zeng[29]研究表明深色背景能够明显促进生物摄食，减轻生理压力，而浅色背景下 (白色) 锯缘青蟹 (Scylla serrata) 的成活率最低。
3.2 底质对方斑东风螺存活与生长的影响
方斑东风螺具有潜埋习性，对底质类型有一定要求，且长时间生活在底质中，受底质环境的影响久。而底质作为一种外界环境，与温度、盐度、溶解氧共同影响着水生生物的生长发育、基因表达、能量积累、物质代谢等各个方面，甚至威胁其生存[30-32]。一般而言，生物长期接受某种 (类) 不适刺激会导致其消耗大量能量用于抵御外界胁迫、维持内稳态和机体组织损伤修复，进而影响其生长[33-34]。在水产动物养殖过程中，为其提供适宜的栖息环境，有利于减少其因不适刺激而引起的能量消耗，从而促进其健康生长。本研究发现，不合适的底质不仅会加速方斑东风螺稚螺的死亡速率，同时也会降低存活个体的生长性能。在本实验条件下，棕色陶粒和河砂更利于方斑东风螺的成活与生长，而白色陶粒组生长最慢，成活率最低。究其原因可能是由于方斑东风螺为海洋底栖生物，浅色 (黄色和白色) 陶粒底质与东风螺自然栖息环境相差大，造成了较强的环境胁迫，使得稚螺处于应激状态，这可从浅色陶粒组的T-AOC较低，CAT、SOD、MDA较高得到证实。而这种对浅色陶粒底质环境的不适应使得稚螺长期处于应激状态，将更多的能量用于抵御外界的环境应激，导致其生长缓慢。而持续的胁迫使能量的重分配失衡[34]，最终导致死亡，造成白色陶粒组的死亡率高。已有研究也得出相似结果，如底质环境较符合原来的生境时，利于管角螺生长[35]；在黑色和红色背景环境下，红鳌螯虾成活率最高[36]。腹足类软体动物由于运动能力较差，日间通常埋栖于海底或躲藏于礁石中，避免被捕获[37-40]，当养殖环境与其自然栖息地的环境差异较大时，其生理会受到较大影响，所以在养殖过程中应注意底质环境对方斑东风螺的影响。此外，本实验结束时方斑东风螺稚螺的成活率总体不高，主要由于实验在冬季进行 (1—2月)，温度相对较低 [(24.3±1.6) ℃]，导致成活率普遍不高，这与生产经验相符。方斑东风螺为热带种，刘永等[41]研究发现当水温超过26 ℃时，方斑东风螺的活力好、摄食快且摄食量大，生长速度也较快；当水温在24 ℃左右时，其摄食能力下降，活力也相对减弱，随着温度的下降，部分稚螺出现死亡。温度会影响生物的生长、存活、免疫、代谢等多个方面[32,34]。因此，在方斑东风螺养殖过程中底质与水质环境都应得到重视。
3.3 底质对方斑东风螺外观的影响
外观与色泽作为重要的经济性状，是影响消费者购买经济动物的重要评判标准之一[42-44]。漂亮的外观不仅给消费者带来视觉享受，还能显著提高其市场价值。贝类的壳色受遗传与环境调控，相较于生长发育、营养成分的影响，壳色变化与环境的关系更为紧密[45]。而L*、a*、b* 作为评价经济动物色泽最直观的重要指标，在水产动物的体色研究中得到广泛应用[46]，如红螯螯虾[17]，锦鲤 (Cyprinus carpio)[47]等。本研究利用L*、a*、b* 对不同底质条件下的壳色进行测定，发现棕色陶粒组养殖的稚螺贝壳更加鲜亮，其L*、a*、b* 均显著高于其他实验组。同时深色组 (河砂组、棕色和黑色陶粒组) 相较于浅色组，稚螺壳上斑点的颜色更深、更明显。这可能是在不同环境下，生物体倾向于选择与环境更相近的体色，从而在多变的环境下保存自己。Manriquez等[48]研究发现智利鲍 (Concholepas concholepas) 的壳色会随着个体生长不断趋同于周围环境的颜色；Siegenthaler等[19]发现褐虾 (Crangon crangon) 能够通过快速改变体色以适应周围环境；Stevens等[49]研究指出角眼沙蟹 (Ocypode ceratophthalmus) 会根据每天色彩的变化节奏来调整在沙滩上的伪装。同样，在方斑东风螺的养殖过程中，可以通过改变底质颜色来培育特定壳色，以提高其经济价值。
3.4 不同底质对方斑东风螺抗氧化性能的影响
T-AOC是机体内抗氧化能力的总体体现[50]，是酶促和非酶促因子抗氧化能力的总合。本研究发现棕色陶粒组的T-AOC最高，表明在该养殖环境下稚螺具有更强的抗氧化能力。而CAT、SOD是机体内重要的抗氧化酶，CAT和SOD的协同作用可维持自由基的动态平衡，进而减少机体的氧化损伤[51]。SOD活性间接反映了机体清除活性氧自由基的能力，它能够让活性氧发生歧化，生成过氧化氢 (H2O2) 和氧气 (O2) [52]，而CAT能催化H2O2生成水 (H2O)和O2。因此CAT、SOD活性的变化在一定程度上能反映出机体在环境胁迫下抗氧化系统的变化[53]。本研究中，棕色陶粒组的CAT、SOD较低，表明在该养殖环境中东风螺的应激反应较小。MDA是脂质过氧化物分解后的重要产物，是研究脂质过氧化作用的重要生物标志物，也可间接反映细胞的受损程度，其测定常与SOD和CAT测定配合使用[54]。MDA的检测结果同样显示棕色陶粒组的水平较低，细胞受损程度较小，进一步证实该养殖环境对东风螺稚螺的影响较小。而浅色陶粒的底质环境中，T-AOC较低，CAT、SOD、MDA较高，均表明稚螺处于较强的应激状态。其原因可能是背景色对养殖生物的生理水平产生了影响，相似的结果在其他生物中也有发现，如红鳌螯虾在黑色环境下具有较高的生长速度和成活率[55]；拟穴青蟹 (S. paramamosain) 在红色环境下产生更强的氧化应激[56]；牙鲆 (Paralichthys olivaceus) 在较亮的环境中皮质醇含量增加[57]。
4. 结论
本研究通过对不同底质条件下的底质环境指标、生长成活情况、壳色变化、抗氧化能力以及氧化损伤程度的检测，发现不同底质类型和颜色可显著影响方斑东风螺稚螺的生长、壳色及抗氧化能力。在以棕色陶粒为底质的养殖条件下稚螺的成活率最高，生长速度较快，壳色更为艳丽，底质NH4 +-N含量较低，总抗氧化能力最高，氧化损伤较低。可见，在生产中选择棕色陶粒作为方斑东风螺稚螺养殖底质替代河砂，具有广泛的应用前景。
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图 1 螺旋藻密度变化
注：组内不同上标字母表示差异显著 (P<0.05)；图中螺旋藻密度用以 10 为底的对数形式表示。
Figure 1. Quantity change of spirulina
Note: Values with different letters within the same group indicate significant differences (P<0.05). Spirulina densities are shown in logarithmic form with a base of 10.
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图 2 香港牡蛎胃内容物中的藻类 (400×)
Figure 2. Algae in stomach contents of C. hongkongensis (400×)
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图 4 养殖尾水中氮磷营养盐浓度变化
Figure 4. Concentration variation of nitrogen and phosphorus nutrients in aquaculture tail water
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图 7 对照组卵囊藻密度变化
注：不同小写字母表示差异显著 (P<0.05)。
Figure 7. Change in density of oocysts in control group
Note: Different lowercase letters indicate significant difference (P<0.05).
表 1 牡蛎的生长及存活
Table 1 Growth and survival of C. hongkongensis
项目
Item时间
t/d小规格组
Small size (S)中规格组
Medium size (M)大规格组
Large size (L)成活率
Survival rate/%35 93.33±2.25a 93.33±6.93a 70.00±8.16b 70 57.78±8.40a 37.78±3.87b 26.67±5.77b 体质量增长率
Weight gain rate/%35 0.35±0.60a 0.07±0.93a −3.91±5.01a 70 −0.08±1.78b 2.57±0.24a 1.44±0.34b 注：同行数据的不同上标字母表示差异显著 (P<0.05)，后表同此。 Note: Values with different letters within the same line indicate significant differences (P<0.05). The same case in the following tables. 
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表 2 养殖尾水水质净化效果 (以去除率计)
Table 2 Purification effect of aquaculture tail water (Calculated by removal rate)
% 水质指标
Water quality indicator小规格组
Small size (S)中规格组
Medium size (M)大规格组
Large size (L)阴性对照组
Negative control (NC)空白对照组
Blank control (BC)总悬浮颗粒物 TSS −38.89±13.35ab 30.61±19.93a −75.01±36.35bc −124.52±22.10c −325.86±50.91d 硝酸盐 NO3 −-N 83.85±6.78b 54.88±4.29d 74.50±2.09c 90.67±0.36a 48.54±1.21d 总无机氮 TIN 77.30±5.87a 49.05±5.89c 73.07±1.93b 89.29±1.93a 47.23±0.83c 磷酸盐 PO4 3−-P 95.52±0.14a 69.36±10.25b 98.37±0.28a 98.93±0.53a 59.13±2.70c 总氮 TN 42.64±9.32a 38.91±0.90ab 33.46±2.87bc 18.23±2.99d 29.63±3.17c 总磷 TP 46.04±3.50b 55.10±4.91a 39.43±5.22b 20.63±0.40c 41.54±4.23b 化学需氧量 COD −9.94±5.03a 5.95±0.70a −20.35±5.69a −28.49±6.54b −155.94±3.12c
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表 3 水体常规理化指标变化
Table 3 Changes of physical and chemical indicators in water
组别
Group温度
Temperature/℃溶解氧
Dissolved oxygen/(mg·L−1)pH 盐度
Salinity/‰小规格组 Small size (S) 18.3±4.3 5.2±0.4 8.3~8.7 17±1 中规格组 Medium size (M) 18.3±4.3 5.2±0.4 8.3~8.7 17±1 大规格组 Large size (L) 18.3±4.3 5.2±0.4 8.3~8.7 17±1 阴性对照组 Negative control (NC) 18.3±4.3 5.3±0.4 8.3~8.9 17±1 空白对照组 Blank control (BC) 18.3±4.3 5.1±0.3 8.3~8.7 17±1
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