Effects of Chinese herbal compound on intestinal microbiota and non-specific immune function of Pelodiscus sinensis
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摘要:
研制一种可提高中华鳖 (Pelodiscus sinensis) 免疫力的复方中草药，探究其对肠道微生物菌群的调节作用，以为中华鳖病害防治提供参考。将平均体质量为 (44.59±9.23) g的100只中华鳖分为两组，对照组投喂基础饲料，实验组投喂含2% (质量分数) 复方中草药的饲料，连续投喂42 d。结果显示，两组优势菌门相同，但其所占比例存在差异：实验组中华鳖肠道中软壁菌门、浮霉菌门和乳杆菌属 (Lactobacillus) 等有益菌群丰度分别是对照组的32、2.25和4.12倍。利用107 CFU·mL−1浓度的嗜水气单胞菌 (Aeromonas hydrophila) 攻毒，测定中华鳖血清内的溶菌酶 (LZM)、总超氧化物歧化酶 (T-SOD)、碱性磷酸酶 (AKP) 和酸性磷酸酶 (ACP) 的活性。结果显示，对照组和实验组的T-SOD、LZM、ACP及AKP活性均在第72小时达到峰值，且实验组中华鳖血清中的4种酶在正常状态下及攻毒后的活性几乎均显著高于对照组，除LZM在攻毒12 h后两组差异不显著外。研究表明，复方中草药可有效优化中华鳖肠道微生物菌群结构，具有一定的免疫增强效果，应用前景良好。
Abstract:We developed a Chinese herbal compound to improve the immunity of Chinese soft-shelled turtle (Pelodiscus sinensis) and invetigated its effect on the regulation of intestinal microflora, so as to provide references for its disease control. In this study, we divided 100 individuals of P. sinensis with an average body mass of (45.53±3.89) g into two groups. The control group (CG) was fed with a basal diet and the experimental group (CPG) was fed with a diet supplemented with 2% of compound herbs for 42 d. The results show that the dominant phylum was the same in both groups, but the proportion of each dominant bacterial phylum differed: the beneficial flora of Tenericutes, Planctomycetes and Lactobacillus in the intestine of the CPG group was 32, 2.25 and 4.12 times higher than that of the CG group, respectively. After being challenged by 107 CFU·mL−1 of Aeromonas hydrophila, the activity of lysozyme (LZM), total superoxide dismutase (T-SOD), alkaline phosphatase (AKP) and acid phosphatase (ACP) in serum of P. sinensis were determined. The results show that the activities of T-SOD, LZM, ACP and AKP in the CG and CPG groups reached the peak values at 72nd hour, and activities of the four enzymes in the serum of CPG group were significantly higher than those in CG group under the normal conditions and after the challenge , except for LZM, which was not significantly different when the two groups were challenged for 12 h. In conclusion, this Chinese herbal compound can effectively optimize the intestinal microflora of P. sinensis and has certain immune enhancing effects, which shows a application prospect.
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三角帆蚌 (Hyriopsis cumingii) 所产珍珠占中国珍珠产量的80%以上[1]，且品质良好、经济价值较高。但三角帆蚌培育珍珠的大小、光泽度等均与性别有关，在产珠性能方面雄性优于雌性[2]，而人工雌雄分养情况下能促进雌性三角帆蚌的个体发育及产珠性能[3]。三角帆蚌属于雌雄异体，不存在异型染色体，目前性别决定无法从染色体层面进行研究，所以性别分化与决定相关基因的研究成为性别调控的热点，对揭示复杂的性别决定与分化机制研究及创造经济效益具有重大意义[4]。
丝裂原活化蛋白激酶 (MAPK) 也称为细胞外信号调节激酶，受各种细胞外生长因子及受体的相互作用而被激活，会影响许多组织特异性生物活性，如细胞增殖、存活和分化[5-6]。然而，MAPK在雌性生殖细胞中不遵循这种传统的模式[7]。在卵母细胞中，MAPK独立于生长因子和酪氨酸激酶受体而被激活，独立于转录调控发挥作用[8]，受特殊上游调节剂激酶 MOS的控制，在卵母细胞减数分裂中起关键作用[9-10]。Mos/MAPK通路在脊椎动物中启动卵母细胞的成熟发育[10]，C-MOS基因在Mos/MAPK通路中位于MAP2K1基因的上游。MAP2K1基因作为MAPK家族的一分子，参与细胞增殖、分化、基因转录调控和发育过程[11-13]。在脊椎动物中，MAP2K1基因参与小鼠 (Mus musculus) 的卵巢发育[14]，促进水牛 (Bubalus) 卵母细胞的表达与发育[15]，对鹅 (Anser cygnoides orientalis) 的卵泡发育起到支持与促进作用[5]。在无脊椎动物中，MAP2K1基因对斑节对虾 (Penaeus monodon) 卵母细胞的生长发育起促进作用[14]；能促进果蝇 (Drosophilid) 的卵母细胞成熟[16]。
在贝类中，紫贻贝 (Mytilus galloprovincialis)、虾夷扇贝 (Mizuhopecten yessoensis) 的MAP2K1基因均有报道[17-18]。本文对三角帆蚌MAP2K1基因进行了克隆，分析了该基因在性腺不同阶段和雌雄性腺组织中的表达模式，探讨了该基因在三角帆蚌性腺发育中的作用。
1. 材料与方法
1.1 实验材料
从浙江省金华市武义实验基地选取健康的1—8月龄和1、2、3龄三角帆蚌，暂养1周后对1—8月龄个体的性腺组织、1龄和2龄个体各组织 (性腺、闭壳肌、肝胰腺、鳃、外套膜、斧足)、3龄个体的性腺组织进行取样，样本立刻放入液氮，速冻后用镊子放入样本盒，−80 ℃保存。
1.2 总RNA提取与cDNA合成
按TRIzol法提取总RNA，利用NanoDrop 2000分度计进行核酸检测，通过1%琼脂糖凝胶电泳[19] (电压180 V，电流200 mA) 检查RNA完整性情况 (3条条带5.8S、18S、28S）。检查合格后将RNA保存于−80 ℃。将RNA进行反转录 (Prime ScriptTM RT reagent Kit with gDNA Eraser试剂盒，TaKaRa, 日本) 得到cDNA模板，cDNA保存于−40 ℃。
1.3 基因序列的获取
通过转录组库[20]中得到的序列设计3'RACE的inner和outer引物 (表1)，并参照SMART 3'RACE试剂盒 (Clontech, America) 说明书进行MAP2K1基因的3'端PCR扩增。电泳 (电压180 V，电流200 mA) 检测产物，割胶回收纯化。用PMD19-T (TaKaRa，大连) 载体连接纯化产物，16 ℃下连接4 h。准备冰盒，在冰上将连接产物转化入大肠杆菌DH5α (TaKaRa，大连) 中 30 min。准备含氨苄的固体培养基 (4 ℃冰箱保存)，将所得菌液均匀地涂在上面，37 ℃培养10 h。挑选白色菌株送至生工 (上海) 测序。
表 1 本实验所需引物Table 1. Primers for this study引物名
Primer's name引物序列 (5'—3')
Primer sequence (5'−3')用途
PurposeK1-O TATTCCTACAGCAGACTCGTGATTG 3'RACE outer K1-I GACCTGGATTTGATAATAGATGTGGG 3'RACE inner K1-YG-F AACAAGCTGAATCTGACGCTG 荧光定量正向引物 K1-YG-R GCTCCTTCAGTTTCTTGGTCAGT 荧光定量反向引物 EFl-αF GGAACTTCCCAGGCAGACTGTGC 内参正向引物 EFl-αR TCAAAACGGGCCGCAGAGAAT 内参反向引物 K1-YW-F AACAAGCTGAATCTGACGCTG 原位杂交正向引物 K1-YW-R TAATACGACTCACTATAGGGGCTCCTTCAGTTTCTTGGTCAGT 原位杂交反向引物 M-GR-1F TTGGGTATGGTTCGCAGTT 干扰链1正向引物 M-GR-1R GCCCTTGTAAGCTCATGTTT 干扰链1正向引物 T7+M-GR-1F TAATACGACTCACTATAGGGTTGGGTATGGTTCGCAGTT T7+干扰链1正向引物 T7+M-GR-1R TAATACGACTCACTATAGGGGCCCTTGTAAGCTCATGTTT T7+干扰链1反向引物 M-GR-2F TATGAACGAACATCGGAGGC 干扰链2正向引物 M-GR-2R CCCATACGCAACAACCC 干扰链2反向引物 T7+M-GR-2F TAATACGACTCACTATAGGGTATGAACGAACATCGGAGGC T7+干扰链2正向引物 T7+M-GR-2R TAATACGACTCACTATAGGGCCCATACGCAACAACCC T7+干扰链2反向引物 M-GR-3F TAACGCCTCACGACGAC 干扰链3正向引物 M-GR-3R CCGGCTCTTGCATTCC 干扰链3反向引物 T7+M-GR-3F TAATACGACTCACTATAGGGTAACGCCTCACGACGAC T7+干扰链3正向引物 T7+M-GR-3R TAATACGACTCACTATAGGGCCGGCTCTTGCATTCC T7+干扰链3反向引物 1.4 基因生物信息学分析
使用NCBI (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/) 中的ORF finder预测MAP2K1基因的开放阅读框 (ORF)、Blast得到不同物种MAP2K1基因序列、Premier设计引物；蛋白基本理化性质利用ProtParam tool (https://web.expasy.org/aprotparam/) 分析；二级结构利用SOPMA (https://npsa-prabi.ibcp.fr/NPSA/npsa_sopma.html) 预测；三级结构利用I-TASSER (https://zhanglab.ccmb.med.umich.edu/I-TASSER/) 预测；跨膜结构域利用TMHMM Serverv 2.0程序 (http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/) 预测并用 (http://www.genedenovo.com/news/582.html) 解读结果；信号肽利用SignalP-5.0 (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/) 预测并用 (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP-3.0/output.php) 解读结果，基因表达量差别利用SPSS 18.0软件分析；表达量差别条形图利用SigmaPlot 12.5绘制；NJ (邻接法) 系统进化树利用MEGA 7.0构建，Bootstrap分析其可靠性，重复1 000次。
1.5 荧光定量分析
选取EF-1α为内参基因，使用CFX96 TouchTM Real-Time PCR Detection System (Bio-Rad) 仪器进行定量分析。定量体系 (20 μL) 为cDNA (使用前混合均匀) 1.6 μL，2×TB Green Premix ExTaq 10 μL，F (上游引物) 0.8 μL，R (下游引物) 0.8 μL，RNase Free Water 6.8 μL。定量程序为95 ℃ 3 min；95 ℃ 5 s，60 ℃ 30 s，循环40次。
1.6 原位杂交
原位杂交的引物具有特异性，上游引物保持不变，将T7启动子序列 (TAATACGACTCACTATAGGG) 加入到下游引物5'端前。三角帆蚌性腺cDNA作为模板进行扩增，得到目的条带割胶回收，纯化后作为模板，使用T7 (T7 High Efficiency Transcription) 试剂盒和DIG RNA Labeling Mix得到标记探针，cDNA 1 µL，4 μL 5×T7 Transcription Reaction、8 μL 10 mmol·L−1 NTP Mix，2 μL T7 Transcription Enzyme Mix，RNase-free water 5 μL。反应程序为37 ℃，2 h。将所得探针纯化后保存于−80 ℃。
取2龄健康雌、雄三角帆蚌的性腺组织 (组织上连带少许表皮)，将其在4%多聚甲醛与DEPC中固定2 h，转移至70%乙醇中，在乙醇中可保存约10 d。进而进行组织梯度脱水、组织透明、浸蜡、包埋、切片 (厚度控制在6~8 μm)、粘片。利用DIG nucleic acid detection kit进行原位杂交，并进行封片处理，在显微镜下观察杂交信号并拍照。
1.7 RNA干扰
1.7.1 dsRNA的合成
使用Primer Premier 5.0软件在C-MOS基因的ORF区设计3对引物，在上下游引物前加上T7序列，将每组中正常引物与加有T7序列的引物交叉重组，共形成6对引物，分别进行PCR扩增，扩增后回收纯化cDNA序列 (质量浓度≥167 ng·μL−1)。利用T7 High Efficiency Transcription 试剂盒 (全式金，北京) 将cDNA逆转录成单链RNA，混匀，37 ℃ PCR孵育2 h。将同一片段的两管单链RNA在冰上等量混匀，将混匀物放置在70 ℃ PCR仪中反应10 min，反应结束立刻取出后室温静置20 min。向每20 μL的反应液加入1 μL RNase A (用无酶水稀释200倍) 和1 μL DNase I，放置在37 ℃ PCR仪中反应30 min。这一步骤是为了去除DNA，使之退火合成dsRNA。将所得溶液中加入1/10体积的3 mol·L−1醋酸铵和等量异丙醇，冰中静置5 min；放置离心机中12 000 r·min−1、4 ℃、10 min。弃上清，70%乙醇洗涤沉淀；12 000 r·min−1、4 ℃离心10 min。超净工作台内风干15 min；加入100 μL RNase-free water溶解。检测dsRNA的质量和浓度，−80 ℃保存。
1.7.2 dsRNA干扰链注射
取1龄三角帆蚌按照每组15只分为4组 (干扰链1、干扰链2、干扰链3和对照组)，实验组每只注射50 μL (200 ng·μL−1) 干扰链，阴性对照组每只注射50 μL (200 ng·μL−1) 生理盐水 (Normal saline, NS)。在第12、第24和第48小时提取性腺组织并立刻放置于液氮中。利用TRIzol法提取总RNA，试剂盒将其反转为cDNA，将反转后的cDNA作为模板进行荧光定量实验，检测直接干扰C-MOS基因后在性腺中的表达量情况及下游基因MAP2K1的表达量情况。
2. 结果
2.1 MAP2K1基因cDNA的克隆及序列特征
本实验克隆得到三角帆蚌MAP2K1基因cDNA的序列，其中5' 非编码区 (UTR) 为145 bp，3'UTR为2 070 bp，开放阅读框 (ORF) 1 194 bp，编码397个氨基酸 (图1)。预测相对分子质量44.24 kD，等电点为6.81，平均亲水系数为−0.379，推测为亲水蛋白。根据MAP2K1蛋白既不具备跨膜结构、也不具备信号肽的特点，推测其不属于膜蛋白，而属于胞内蛋白。通过SOPMA分析得到MAP2K1基因具有S-TKC结构域 (72—372 aa，图2-a)，通过I-TASSER预测MAP2K1基因的蛋白质三级结构 (图2-b)。
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图 1 三角帆蚌MAP2K1基因核苷酸序列及氨基酸序列Figure 1. MAP2K1 gene nucleotide sequence and amino acid sequence of H. cumingii![]()
图 2 三角帆蚌MAP2K1基因二级、三级结构预测Figure 2. Secondary and tertiary structure prediction of MAP2K1 gene in H. cumingii2.2 MAP2K1基因系统进化
利用GeneDoc进行不同物种之间的序列比对，结果显示来自多种物种的MAP2K1基因结构域重合度很高 (图3)，说明在多种物种之间，MAP2K1基因进化和结构具有保守性，推断其具有功能相似性。
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图 3 三角帆蚌与其他物种MAP2K1基因的蛋白序列比对Figure 3. Protein sequence comparison of MAP2K1 gene between H. cumingii and others根据同源性比对结果分析，三角帆蚌MAP2K1基因与紫贻贝、虾夷扇贝、泥蚶 (Tegillarca granosa) 的同源性较高，同源性分别为85.52%、82.65%、80.59%。与智人 (Homo sapiens)、北美属兔 (Ochotona princeps) 等同源性较低，同源性分别为72.27%、72.53%。系统进化树显示三角帆蚌与紫贻贝、虾夷扇贝、泥蚶聚为一支，亲缘关系较近 (图4)。
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图 4 不同物种MAP2K1基因的氨基酸序列构建的NJ系统进化树Figure 4. NJ phylogenetic trees constructed from amino acid sequences of MAP2K1 gene in different species2.3 MAP2K1基因在各组织和各时期的表达量差异
在雌雄三角帆蚌的不同组织中，MAP2K1基因均有一定的表达量，但是MAP2K1基因在雌性性腺中的相对表达量高于另5个组织，雌雄差异也比较显著 (P<0.05，图5)。
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在三角帆蚌幼龄 (1—8月) 性腺发育阶段过程中，MAP2K1基因均有一定程度的表达 (图6)。说明MAP2K1基因在三角帆蚌幼龄性腺发育阶段起到一定作用。
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图 6 三角帆蚌MAP2K1基因在早期性腺组织中的表达注：柱上不同字母表示存在显著性差异 (P<0.05) ；相同字母表示无显著性差异。Figure 6. Expression of MAP2K1 in various tissues of female and male adults of H. cumingiiNote: Different letters indicate significant difference (P<0.05), while the same letters indicate insignificant difference.三角帆蚌1龄性腺中，雌性相对表达量显著高于雄性 (P<0.01)，但在雄性中也有一定表达 (图7)；等到2龄左右，性腺相对表达量雌雄差异极显著 (P<0.01)，雄性中几乎不表达；在3龄性腺中，雌雄表达量均处于非常低的水平。结果表明，MAP2K1基因在三角帆蚌2龄卵巢发育过程中起到非常重要的作用。
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图 7 MAP2K1基因在1—3龄三角帆蚌性腺中的相对表达Figure 7. Relative expression of MAP2K1 gene in gonads ofH. cumingii of 1−3 years old2.4 性腺组织原位杂交
结果显示，实验组中三角帆蚌雌性性腺的卵母细胞、卵子上，蓝紫色杂交信号非常显著。实验组中三角帆蚌雄性性腺的精原细胞、精母细胞上，蓝紫色杂交信号存在极少，雌性及雄性阴性对照组中均未出现杂交信号 (图8)。根据结果推测，MAP2K1基因可能参与三角帆蚌的卵巢发育过程。
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图 8 三角帆蚌MAP2K1基因在2龄三角帆蚌性腺原位杂交注：a. 雌性阴性对照组；b. 雌性实验组；c. 雄性阴性对照组；d. 雄性实验组。Figure 8. MAP2K1 in situ hybridization in gonads of 2-year-old H. cumingiiNote: a. Female of negative control group; b. Female of experimental group; c. Male of negative control group; d. Male of experimental group.2.5 RNA干扰结果
三条干扰链的干扰结果为，干扰链1在雌性和雄性中的干扰率分别为88.43%和77.90%；干扰链2在雌性和雄性中的干扰率分别为93.10%和78.10%；干扰链3在雌性和雄性中的干扰率分别为96.39%和86.26% (图9)。干扰率结果显示干扰链3对C-MOS基因的干扰效果最佳，为此选择干扰链3进行实验，检测C-MOS基因在12、24和48 h干扰后在性腺中的表达情况，结果显示干扰链3在第24小时的干扰效率最佳 (图10)。
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图 9 三角帆蚌C-MOS基因干扰后表达情况Figure 9. Expression of C-MOS gene of H. cumingii after interference干扰C-MOS基因后，荧光定量检测其下游基因MAP2K1的表达量情况 (图11)。结果显示，MAP2K1基因在雌性中的表达量下降了82.31%，在雄性中的表达量下降了73.60%。说明在三角帆蚌中，C-MOS基因对MAP2K1基因有显著的调控作用。
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图 11 三角帆蚌C-MOS基因干扰后MAP2K1基因表达情况Figure 11. Expression of MAP2K1 gene of H. cumingii after C-MOS gene interference3. 讨论
本研究克隆了三角帆蚌MAP2K1基因的cDNA序列，编码一个长为1 194 bp的ORF。蛋白质结构预测分析显示，MAP2K1基因中含有S-TKC催化结构域。蛋白苏氨酸/丝氨酸激酶是十分常见的一类蛋白激酶[21]，主要作用是蛋白磷酸化、去磷酸化，有利于细胞内活性[22]。S-TKC是这类激酶中一个位于核心部位重要的催化结构域[23]。在S-TKC中有一个极其保守的区域，在催化结构域它已被证明是涉及ATP的结合，即赖氨酸残基附近N-末端的一个富含甘氨酸的残基。在S-TKC的中间区域，存在一个天冬氨酸残基，在催化结构域它已被证明对酶的催化活性起显著作用[24-26]。拥有S-TKC催化结构域的基因通常参与许多生理生化过程[27-30]，若其构造折叠或变化，会对丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶产生影响，从而对个体的生殖发育过程造成极大损害[31]，这说明MAP2K1基因可能参与了三角帆蚌个体的生殖发育过程。
不同物种之间的序列比对结果显示，MAP2K1基因在三角帆蚌中的氨基酸序列与其他物种结构域重合度较高，说明与其他物种相似度较高，尤其与虾夷扇贝等软体动物相似度更高，由此推断在进化过程中，MAP2K1基因呈现高度保守状态。各组织、早期发育阶段、不同发育时期的定量结果说明，MAP2K1基因在卵巢中特异性高表达，在1—8月龄时期均有不同程度的表达，在1、2、3龄卵巢中的表达量均高于睾丸，对小鼠[14]、水牛[15]、鹅[5]、斑节对虾[14]及果蝇[16]MAP2K1基因的研究中，均发现雌性表达量高于雄性，与本实验结果相近，由此推测MAP2K1基因是三角帆蚌中的偏雌性基因，既参与了三角帆蚌的早期发育阶段，也参与了卵巢发育过程。根据原位杂交的探针定位显示，MAP2K1基因在卵母细胞及卵子上存在明显的信号，推测MAP2K1基因可能参与了三角帆蚌的卵巢发育过程。
RNA干扰结果显示，3条干扰链中干扰链2和干扰链3对C-MOS基因起到抑制作用，但是干扰链3的干扰效果最佳，在雌性和雄性中的干扰率分别为84.21%和96.87%。在选取干扰链3观察干扰C-MOS基因后MAP2K1基因的表达情况中，MAP2K1基因在雌性中的表达量下降了82.31%，在雄性中的表达量下降了73.60%。结果显示在三角帆蚌中，C-MOS基因对MAP2K1基因有显著的调控作用。在脊椎动物卵母细胞MAPK信号通路中，MAPK独立于生长因子和酪氨酸激酶受体而被激活，受特殊上游调节剂激酶MOS的控制，在卵母细胞减数分裂中起关键作用[9]。综上，推测在三角帆蚌中，MAP2K1基因可能参与了三角帆蚌的卵巢发育过程，是偏雌性基因。
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图 1 Alpha 多样性指数 box 图
注：对照组投喂基础饲料；实验组投喂添加2%的复方中草药的饲粮。后图同此。
Figure 1. Alpha diversity index box chart
Note: CG. Feeding basal diet; CPG. Feeding diet with 2% of Chinese herbal compound. The same case in following figures.
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图 2 对照组和实验组肠道菌群组成丰度差异 (门水平)
Figure 2. Relative abundance of intestinal microflora composition of CG and CPG at genus level
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图 3 对照组和实验组肠道菌群组成丰度差异 (属水平)
Figure 3. Relative abundance of intestinal microflora composition of CG and CPG at genus level
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图 4 对照组和实验组肠道菌群 LEfSe 差异分析图
注：无显著差异的物种统一着色为黄色，差异物种跟随组进行着色，红色节点表示在红色组别中起到重要作用的微生物类群，绿色节点表示在绿色组别中起到重要作用的微生物类群；圆圈大小与微生物相对丰度成正比例关系。
Figure 4. LEfSe variance analysis of intestinal microflora of CG and CPG
Note: Species without significant differences are uniformly colored in yellow, and differential species are colored following the group; red nodes represent microbial taxa that play an important role in the red group, and green nodes represent microbial taxa that play an important role in the green group; the size of the circle is proportional to the relative abundance of microorganisms.
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图 5 对照组和实验组肠道菌群功能预测 STAMP 差异分析
注：左图所示为不同微生物功能预测在两组样本中的丰度比例，右图为95%置信度区间内微生物功能预测丰度的差异比例；左边纵坐标轴为不同的微生物功能预测分类。
Figure 5. STAMP variance analysis of functional prediction of intestinal microflora of CG and CPG
Note: The left panel shows the proportion of abundance of different microbial functional predictions in the two groups of samples, and the right panel shows the proportion of differences in the abundance of microbial functional predictions within the 95% confidence interval; the left vertical axis shows different microbial functional prediction classifications.
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图 6 复方中草药对嗜水气单胞菌刺激前后中华鳖血清中总超氧化物歧化酶、溶菌酶、酸性磷酸酶和碱性磷酸酶活性的影响
注：误差线用标准误值 (n=6) 表示；*. P<0.05，**. P<0.01，***. P<0.001，ns表示无显著性差异。
Figure 6. Effect of Chinese herbal compound on T-SOD, LZM, ACP and AKP activity in serum of P. sinensis before and after A. hydrophila challenge
Note: The error bar is expressed by the SEM value (n=6); *. P<0.05, **. P<0.01, ***. P<0.001; ns. No significant differences.
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[1] SERRANO P H. Responsible use of antibiotics in aquaculture[M]. Rome: Information Division FAO, 2005: 3-4.
[2] HOELZER K, WONG N, THOMAS J, et al. Antimicrobial drug use in food-producing animals and associated human health risks: what, and how strong, is the evidence?[J]. BMC Vet Res, 2017, 13(1): 1-38.
[3] REVERTER M, BONTEMPS N, D LECCHINI, et al. Use of plant extracts in fish aquaculture as an alternative to chemotherapy: current status and future perspectives[J]. Aquaculture, 2014, 433: 50-61. doi: 10.1016/j.aquaculture.2014.05.048
[4] CUNHA J A D, HEINZMANN B M, BALDISSEROTTO B. The effects of essential oils and their major compounds on fish bacterial pathogens: a review[J]. Appl Microbiol Biot, 2018, 125(2): 56-72.
[5] GIANNENAS I, SIDIROPOULOU E, BONOS E, et al. The history of herbs, medicinal and aromatic plants, and their extracts: past, current situation and future perspectives science direct[M]. London: Academic Press, 2020: 1-18.
[6] KURALKAR P S, KURALKAR S V. Role of herbal products in animal production-an updated review[J]. J Ethnopharmacol, 2021, 278(1): 42-46.
[7] AWAD E, AWAAD A. Role of medicinal plants on growth performance and immune status in fish[J]. Fish Shellfish Immunol 2017, 13(9): 1-22.
[8] YANG Y B, AI X H, SONG Y, et al. Effect of astragalus polysaccharide on growth, immunity and disease resistance of Trionyx sinensis[J]. Chin Fish Qual Stand, 2018, 8(4): 58-65.
[9] KHATTAB M S A, EL-ZAIAT H M, ABDELTAWAB A M, et al. Impact of lemongrass and galangal as feed additives on performance of lactating Barki goats[J]. J Dairy Sci, 2017, 12(2): 184-189.
[10] KHOLIF A E, HASSAN A A, EL ASHRY G M, et al. Phytogenic feed additives mixture enhances the lactational performance, feed utilization and ruminal fermentation of Friesian cows[J]. Anim Biotechnol, 2021, 32(6): 708-718. doi: 10.1080/10495398.2020.1746322
[11] ELCOSO G, ZWEIFEL B, BACH A. Effects of a blend of essential oils on milk yield and feed efficiency of lactating dairy cows[J]. Appl Anim Behav, 2019, 35(3): 304-311.
[12] 王吉桥, 孙永新, 张剑诚. 金银花等复方草药对牙鲆生长、消化和免疫能力的影响[J]. 水产学报, 2006, 30(1): 90-96. [13] 曲木, 黄成, 张宝龙, 等. 复方中草药对黄颡鱼生长、肉质及血清中补体C3、补体C4 含量的影响[J]. 中国饲料, 2018, 19: 74-79. [14] TAKAOKA O, JI S C, ISHIMARU K, et al. Effect of rotifer enrichment with herbal extracts on growth and resistance of red sea bream, Pagrus major (Temminck et Schlegel) larvae against Vibrio anguillarum[J]. Aquac Res, 2011, 42(12): 1824-1829. doi: 10.1111/j.1365-2109.2010.02783.x
[15] du PASQUIER L. The immune system of invertebrates and vertebrates[J]. Comp Biochem, 2001, 129(1): 1-15.
[16] ROCH P. Defense mechanisms and disease prevention in farmed marine invertebrates[J]. Aquaculture, 1999, 172(1/2): 125-145.
[17] ZHANG S C, WANG Z P, WANG H M. Maternal immunity in fish[J]. Dev Comp Immunol, 2013, 39(1/2): 72-78.
[18] 王文军. 青岛文昌鱼碱性磷酸酶基因的克隆、表达与生物信息学分析[D]. 烟台: 鲁东大学, 2021: 46-48. [19] CHEN Q S, SU Z H, CHEN X W. Morphological studies on cells involved in mucosal immunity of the intestine in the Chinese soft-shelled turtle[J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2005, 29(6): 65-81.
[20] CHEN L G, HU C Y, LAI N L S, et al. Acute exposure to PBDEs at an environmentally realistic concentration causes abrupt changes in the gut microbiota and host health of zebrafish[J]. Environ Pollut Control, 2018, 240: 17-26. doi: 10.1016/j.envpol.2018.04.062
[21] OTT S J, MUSFELDT M, WENDEROTH D F, et al. Reduction in diversity of the colonic mucosa associated bacterial microflora in patients with active inflammatory bowel disease[J]. Gut, 2004, 53(5): 685-693. doi: 10.1136/gut.2003.025403
[22] GHANBARI M, KNEIFEL W, DOMIG K J. A new view of the fish gut microbiome: advances from next-generation sequencing[J]. Aquaculture, 2015, 448: 464-475. doi: 10.1016/j.aquaculture.2015.06.033
[23] GOMEZ D, SUNYER J O, SALINAS I. The mucosal immune system of fish: the evolution of tolerating commensals while fighting pathogens[J]. Fish Shellfish Immunol, 2013, 35(6): 1729-1739. doi: 10.1016/j.fsi.2013.09.032
[24] JIN W Y, HAN K N, DONG S Y, et al. Modifications in gut microbiota and fermentation metabolites in the hindgut of rats after the consumption of galactooligosaccharide glycated with a fish peptide[J]. Food Funct, 2018, 9(5): 2853-2864. doi: 10.1039/C7FO02002C
[25] GRAÇA A P, CALISTO R, LAGE O M. Planctomycetes as novel source of bioactive molecules[J]. Front Microbiol, 2016, 7: 1241.
[26] FOYSAL M J, FOTEDAR R, SIDDIK M A B, et al. Lactobacillus acidophilus and L. plantarum improve health status, modulate gut microbiota and innate immune response of marron (Cherax cainii)[J]. Sci Rep, 2020, 10(1): 59-72. doi: 10.1038/s41598-019-56749-5
[27] LARSEN A. Studies on the microbiota of fishes and the factors influencing their composition[D]. Auburn: Auburn University, 2014: 67-68.
[28] NELSON W C, STEGEN J C. The reduced genomes of Parcubacteria (OD1) contain signatures of a symbiotic lifestyle[J]. Front Microbiol, 2015, 6: 713.
[29] NARUSHIMA S, SUGIURA Y, OSHIMA K, et al. Characterization of the 17 strains of regulatory T cell-inducing human-derived Clostridia[J]. Gut Microbes, 2014, 5(3): 333-339. doi: 10.4161/gmic.28572
[30] MARTÍNEZ CRUZ P, IBÁÑEZ A L, MONROY H O A, et al. Use of probiotics in aquaculture[J]. Int Sch Res Notices, 2012, 1: 34-52.
[31] GATESOUPE F J. Updating the importance of lactic acid bacteria in fish farming: natural occurrence and probiotic treatments[J]. Adv Microb Physiol, 2008, 14(1/2/3): 107-114.
[32] LARA F M, OLVERA N M A, GUZMÁN M B E, et al. Use of the bacteria Streptococcus faecium and Lactobacillus acidophilus, and the yeast Saccharomyces cerevisiae as growth promoters in Nile tilapia (Oreochromis niloticus)[J]. Aquaculture, 2003, 216(1/2/3/4): 193-201.
[33] IBRAHIM A, RAMATU A S, ADEWALE Y A. Effect of Lactobacillus acidophilus as a dietary supplement on nonspecific immune response and disease resistance in juvenile common carp, Cyprinos carpio[J]. J Northeast Agric Univ (English Edition), 2018, 25(2): 33-42.
[34] WANG Y B, GU Q. Effect of probiotics on white shrimp (Penaeus vannamei) growth performance and immune response[J]. Mar Biol Res, 2010, 6(3): 327-332. doi: 10.1080/17451000903300893
[35] TORRECILLAS S, TEROVA G, MAKOL A, et al. Dietary phytogenics and galactomannan oligosaccharides in low fish meal and fish oil-based diets for European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles: effects on gut health and implications on in vivo gut bacterial translocation[J]. PLoS One, 2019, 14(9): 20-22.
[36] COTTER P D, ROSS R P, HILL C. Bacteriocins: a viable alternative to antibiotics?[J]. Nat Rev Microbiol, 2013, 11(2): 95-105. doi: 10.1038/nrmicro2937
[37] 刘红柏, 张颖, 杨雨辉, 等. 5种中草药作为饲料添加剂对鲤肠内细菌及生长的影响[J]. 大连水产学院学报, 2004, 19(3): 16-17. [38] PAWLIKOWSKA-WARYCH M, DEPTUŁA W. Characteristics of chlamydia-like organisms pathogenic to fish[J]. J Appl Genet, 2016, 57(1): 135-141. doi: 10.1007/s13353-015-0303-8
[39] LEE W J, HASE K. Gut microbiota-generated metabolites in animal health and disease[J]. Nat Chem Biol, 2014, 10(6): 416-424. doi: 10.1038/nchembio.1535
[40] CURTIS H, BLASER M J, DIRK G, et al. Structure, function and diversity of the healthy human microbiome[J]. Nature, 2012, 486(7402): 207-214. doi: 10.1038/nature11234
[41] YE Q, FENG Y Y, WANG Z L, et al. Effects of dietary Gelsemium elegans alkaloids on intestinal morphology, antioxidant status, immune responses and microbiota of Megalobrama amblycephala[J]. Fish Shellfish Immunol, 2019, 94: 464-478. doi: 10.1016/j.fsi.2019.09.048
[42] 丁鉴锋, 包鹏云, 刘学森. 复方中草药添加剂对仿刺参 (Stichopus japonicus) 幼参免疫机能的影响[J]. 饲料工业, 2011, 32(18): 14-17. [43] YIN X L, LI Z J, YANG K, et al. Effect of guava leaves on growth and the non-specific immune response of Penaeus monodon[J]. Fish Shellfish Immunol, 2014, 40(1): 190-196. doi: 10.1016/j.fsi.2014.07.001
[44] TAEE H M, HAJIMORADLOO A, HOSEINIFAR S H, et al. Dietary Myrtle (Myrtus communis L. ) improved non-specific immuneparameters and bactericidal activity of skin mucus in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fingerlings[J]. Fish Shellfish Immunol, 2017, 64: 320-324. doi: 10.1016/j.fsi.2017.03.034
[45] SHALUEI F, NEMATOLLAHI A, NADERI F H R, et al. Effect of ethanolic extract of Zingiber officinale on growth performance and mucosal immune responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)[J]. Aquac Nutr, 2017, 23(4): 814-821. doi: 10.1111/anu.12448
[46] YAHFOUFI N, ALSADI N, JAMBI M, et al. The immunomodulatory and anti-inflammatory role of polyphenols[J]. Nutrients, 2018, 10(11): 11-34.
[47] QUINTANS J S S, SHANMUGAM S, HEIMFARTH L, et al. Monoterpenes modulating cytokines: a review[J]. Food Chem Toxicol, 2019, 123: 233-257. doi: 10.1016/j.fct.2018.10.058
[48] JIANG M, LI Z N, ZHU G X. Immunological regulatory effect of flavonoid baicalin on innate immune toll-like receptors[J]. Pharmacol Res, 2020, 158: 104-155.
[49] CHEN F, HUANG G L. Preparation and immunological activity of polysaccharides and their derivatives[J]. Int J Biol Macromol, 2018, 112: 211-216. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2018.01.169
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1. 路俊怡，姜立妍，龙凯，王韬，吴正理，李艳红. HcTLR1通过MyD88-NF-κB信号通路参与三角帆蚌抗菌免疫应答. 南方水产科学. 2024(06): 19-30 . 
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