Algae-lysing characteristics of an algicidal bacterium G2 from reservoir sediment
-
摘要: 铜绿微囊藻 (Microcystis aeruginosa) 可引起藻类水华，其大量繁殖会对水体环境造成严重威胁。微生物除藻技术具有良好的应用前景。从陕西省西安市某水库的底泥中分离出一株对铜绿微囊藻具有溶解作用的菌株G2，经16S rDNA序列分析鉴定为纤维弧菌属 (Cellvibrio sp.)，GenBank登录号为MW221316，并对G2溶解铜绿微囊藻的可行性进行了研究。结果表明，G2通过分泌胞外物质间接溶藻，稳定期的G2对藻类去除效果最佳；提高G2的投加比例 (>10%) 有助于提升溶藻效果；G2对温度的变化较敏感，5和25 ℃时除藻率分别可达 (59.42±0.88)%和 (63.10±1.42)%，温度高于75 ℃除藻效果不佳；pH和光照对除藻效果影响不显著，G2具有对酸碱耐受能力强 (pH 3~11) 的特点。综上，G2能有效地抑制铜绿微囊藻繁殖，可作为一种潜在的控制有害藻华的生物制剂。Abstract: Microcystis aeruginosa can cause algal blooms, which has been a serious threat to the water environment. Microbial algae removal is a technology with good application prospects. In this study, we isolated a new algae-dissolving bacterium G2 from the reservoir substrate of Xi'an of Shaanxi Province, identified as Cellvibrio sp. according to 16S rDNA sequence analysis (GenBank accession No.: MW221316), and investigated the feasibility of G2's solubilizing M. aeruginosa. Results show that G2 solubilized algae by secreting extracellular substances indirectly, and it had the best removal effect on algae during the stabilization period. Increasing G2 dosing ratio (>10%) contributed to the effect of algae dissolution. G2 was sensitive to the change of temperature, and the algae removal rate reached (59.42±0.88)% and (63.10±1.42)% at 5 and 25 ℃, respectively. The removal efficiency was poor at temperatures higher than 75 ℃. The pH and light had no significant influences on the algae removal effect, and G2 had strong tolerance to acid and alkali (pH 3−11). In conclusion, G2 can inhibit the growth of M. aeruginosa efficiently, so it is a promising biocontrol agent to mitigate cyanobacterial blooms.
-
Keywords:
- Microcystis aeruginosa /
- Algicidal bacteria /
- 16S rDNA /
- Algal bloom /
- Algae-lytic characteristics
-
鱼类生长激素(growth hormone，GH)是由脑垂体细胞合成和分泌的一种单链多肽，其分子量在22 kDa左右，可分为信号肽和成熟肽2个部分，信号肽一般由16~17个氨基酸残基组成，成熟蛋白由173~190个氨基酸组成。GH对鱼类最明显的作用是刺激鱼体重和体长的增长，促进发育，参与鱼体代谢调节，还可以调节海河洄游性鱼类的渗透压，并促进其对海水适应能力[1]。GH不但可以作为激素对鱼类的生长发育和生殖起重要作用，而且可以作为一种细胞分裂素，在免疫反应起作用，同时还参与调节蛋白质，糖和脂肪等的合成和释放，从而影响蛋白质、糖和脂肪的代谢[2-4]。深入研究鱼类生长激素的表达调控规律，弄清鱼类生长发育的调控机理，可为人工调控鱼类生长发育，促进水产养殖业的发展提供理论依据。
鲮(Cirrhinus molitorella)隶属鲤形目(Cypriniformes)鲤科(Cyprinidae)中的野鲮亚科(Labeoninae)，广泛分布于中国华南地区，东南亚和非洲的热带及亚热带地区[5]。鲮是中国华南地区重要的淡水养殖品种之一，其产量占广东、广西池塘养殖鱼类总产量的35%左右，具有产量高、抗病力强和肉质鲜美的特点，其适合制作罐装食品和鱼丸，是中国淡水鱼加工附加值最高的品种之一。但是鲮生长速度慢，且不耐低温，是目前制约鲮养殖产业发展的因素之一。与哺乳动物类似，鱼类生长发育主要受GH-IGF(胰岛素样生长因子)的调控，深入开展鲮生长激素表达调控机理的研究，以便为人工控制鲮的生长发育提供理论依据。目前该试验室已克隆了鲮生长激素cDNA并在大肠杆菌中进行了重组表达。为进一步研究在各种条件下鲮血液和脑垂体中生长激素蛋白的表达规律，必须要制备特异性强、灵敏度高的抗鲮生长激素抗体。因此，该研究在重组表达了鲮生长激素蛋白的基础上，制备了兔抗鲮生长激素多克隆抗体，并对其灵敏度和特异性进行了分析。
1. 材料和方法
1.1 材料
重组工程菌M15(pQE30-GH)由笔者实验室构建，新西兰大白兔(Oryctolagus cuniculus)购于广州中医药大学实验动物中心，鲮鱼购于广州鹭江市场，镍琼脂糖凝胶FF填料购自北京韦氏博慧色谱科技有限公司，HRP标记的羊抗兔IgG购于Amersham公司，DAB显色试剂盒购自武汉博士德生物工程有限公司，其它试剂均为分析纯。
1.2 方法
1.2.1 鲮生长激素的重组融合表达以及包涵体的分离
取含有500 mL LB(100 μg · mL-1 Amp和25 μg · mL-1 Km)及种菌的烧瓶，最佳诱导条件参照江世贵等[6]对鲮生长激素cDNA的克隆及其重组表达产物的促生长活性的研究。在37℃加入浓度为100 mmol · L-1的IPTG溶液使其终浓度1 mmol ·L-1 250 rpm振荡培养诱导5 h，4℃保存。菌体经超声波破碎后，4℃，8 000 rpm离心20 min，离心收集到的包涵体经TE1(Tris-Cl 10 mmol · L-1，pH 8.0，EDTA 1 mmol · L-1)，TE2[1%TritonX-100(V/V)，Tris-Cl 10 mmol · L-1，pH 8.0，EDTA 1 mmol · L-1]和TE3(尿素2 mol · L-1，Tris-Cl 10 mmol · L-1 pH 8.0，EDTA 1 mmol · L-1)洗涤后，即可得到初步纯化的包涵体蛋白，然后将包涵体蛋白溶解在变性液(尿素8 mol · L-1，Tris-Cl 20 mmol ·L-1 pH 8.0，0.5 mol · L-1 NaCl，5 mmol · L-1 imidazole，1 mmol · L-1 2-mercaptoethanol)中。
1.2.2 重组蛋白的纯化、复性和浓缩
经过包涵体分离得到的包涵体蛋白，在4℃，8 000 rpm离心10 min后，上清液用0.2 μm的过滤器过滤，然后上样经镍琼脂糖凝胶FF(装填后柱床长5 cm，直径1.6 cm)亲合层析。上柱后以含20 mmol · L-1，500 mmol · L-1的咪唑以及ddH2O进行阶段洗脱，流速1.5 mL · min-1，手工收集洗脱峰。将收集后的样品进行SDS-PAGE分析，同时将纯化后的蛋白用稀释变性液(尿素8 mol · L-1，Tris-Cl 20 mmol · L-1 pH8.0，0.5 mol · L-1 NaCl)稀释到1 mg · mL-1装入处理好的透析袋中，采用逐步稀释的方法复性。具体操作如下，将装有蛋白的透析袋放到等体积的复性液(氧化型谷胱甘肽0.1 mmol · L-1，还原型谷胱甘肽0.9 mmol · L-1，Tris-Cl 20 mmol ·L-1，pH 8.0)中，4℃搅拌过夜，使尿素浓度由4~2.5 mol · L-1，再到0.8 mol · L-1逐步稀释，然后在ddH2O(pH 8.0)透析过夜以除去剩余的变性剂。最后，将复性后的蛋白用超滤离心管过滤浓缩。
1.2.3 抗血清的制备
将浓缩后的重组鲮GH作为抗原，采用改进的方法[7]免疫新西兰大白兔。在第1天和第3天，将1 mL样品A(300 μg · 500 μL-1纯化浓缩蛋白和500 μL Freund′s完全佐剂)采用多点注射到兔子的背部和腿部；第28天将1 mL样品B(300 μg · 500 μL-1纯化浓缩蛋白和500 μL Freund′s不完全佐剂)加强免疫1次。第35天，颈动脉取血，37℃放置2 h，4℃过夜，离心收集血清。
1.2.4 ELISA分析
采用间接ELISA检测抗血清效价。用pH 9.6，0.05 mol · L-1的碳酸盐缓冲液将纯化的重组鲮生长激素稀释为20 μg · mL-1，包被酶标板，每孔100 μL，4℃包被过夜。次日每孔加入100 μL 5%的脱脂奶粉，37℃封闭1 h后，用pH 7.4的PBST洗涤3次。然后每孔加入200~51 200倍稀释的兔抗血清100 μL，阴性对照为1：50倍稀释的免疫前血清，空白对照为兔抗血清稀释液(PBS)，每份样品均做1平行，37℃孵育1 h后，同上洗涤3次。再次每孔加入100 μL HRP标记的羊抗兔IgG，37℃孵育1 h后，同上洗涤3次。接下来每孔加入100 μL TMB显色液，37℃避光反应20 min后，每孔再加入50 μL 2 mol · L-1硫酸终止液。最后，在酶标仪上测450 nm下的OD值。
1.2.5 Western blotting分析
将抗原稀释为0.5、1、2、4和10 ng，经15% SDS-PAGE电泳分离后转移到硝酸纤维素膜上。用稀释度1：500的抗血清作为一抗[8]，比例1：2 000作为二抗稀释度，DAB显色。标准分子量蛋白质转膜后用丽春红染色液染色。
鲮组织提取物中GH同源蛋白质的检测。取100 mg脑垂体组织加入到100 μL抽提液(4 M Urea，0.5% W/V SDS，10 mM EDTA和2 mM PMSF)中匀浆，94℃孵育10 min，10 000 g离心10 min后，用Bradford方法进行定量测定[9-10]。取鲮血4℃，6 500 rpm离心20 min分离血清，同样用Bradford方法进行定量测定。分别取1 μg脑垂体提取蛋白和1 μg血清蛋白进行Western blotting分析。
2. 结果和讨论
2.1 鲮生长激素的重组融合表达以及包涵体的分离、纯化和浓缩
如图 1所示，IPTG可诱导M15(pQE30-GH)在大肠杆菌中大量表达。SDS-PAGE凝胶电泳结果显示，1条24.5 kDa的诱导表达重组鲮GH带。经过包涵体分离、纯化、浓缩得到纯度很高的蛋白。
![]()
图 1 鲮鱼生长激素的重组融合表达，包涵体的分离，纯化和浓缩电泳图M. 低分子量蛋白标准；1. IPTG诱导生长激素的表达；2. 生长激素表达负对照；3. M15(pQE30)诱导表达；4. 包涵体分离后电泳图；5. 包涵体纯化后电泳图；6. 纯化蛋白浓缩后电泳图Fig. 1 The electrophoresis map of the recombinant expression and purification of mud carp growth hormoneM. low molecular weight protein marker; 1. the growth hormone induced by IPTG; 2. growth hormone expressed negative control; 3. M15(pQE30)expressed; 4. inclusion body; 5. purified inclusion body; 6. condensed protein2.2 ELISA分析结果
兔抗鲮生长激素的血清进行间接ELISA检测时，当(样品吸光值－空白吸光值)/(阴性吸光值－空白吸光值)＞2.1即认为是阳性[11]，经计算，此研究制备的兔抗血清效价为1 : 12 800(表 1)。
表 1 ELISA检测结果Table 1 The results of ELISA免疫血清稀释倍数
the antiserum dilution times免疫血清OD450
the antiserum OD450阴性对照血清OD450
normal rabbit serum OD450空白对照OD450
black control OD450P/N 1:200 1.186 0.336 0.175 + 1:400 1.138 0.336 0.175 + 1:800 1.180 0.336 0.175 + 1:1 600 1.029 0.336 0.175 + 1:3 200 0.872 0.336 0.175 + 1:6 400 0.656 0.336 0.175 + 1:12 800 0.533 0.336 0.175 + 1:25 600 0.464 0.336 0.175 － 1:51 200 0.379 0.336 0.175 － 2.3 Western blotting分析结果
将抗原稀释为0.5、1、2、4和10 ng，经15% PAGE电泳分离后，转移到硝酸纤维素膜上。用稀释度1：500的抗血清作为一抗，比例1：2 000作为二抗稀释度，DAB显色。标准分子量蛋白质转膜后用丽春红染色液染色。结果显示，可检测到10 ng抗原量，表明此抗体灵敏度较高(图 2)。
![]()
图 2 抗体灵敏度分析M. 低分子量蛋白标准；1. 10 ng抗原；2. 4 ng抗原；3. 2 ng抗原；4. 1 ng抗原；5. 0.5 ng抗原Fig. 2 The antibody sensitivety analysisM. low molecular weight protein marker; 1. 10 ng antigen; 2. 4 ng antigen; 3. 2 ng antigen; 4. 1 ng antigen; 5. 0.5 ng antigen为了解这一抗血清的特异性，取鲮脑垂体组织和血清进行Western blotting分析。结果显示，用此多抗可检测到1条大约为21.5 kDa的条带(图 3)，这说明这一多抗具有较好的免疫特性。
![]()
图 3 抗体特性性分析M. 低分子量蛋白标准；1. 血清；2. 脑组织Fig. 3 The antibody specificity analysisM. low molecular weight protein marker; 1. serum; 2. pituitary此试验所表达的重组鲮生长激素主要以包涵体形式存在。另外，包涵体中的杂蛋白较少、且50%以上为重组蛋白，给重组蛋白的纯化带来便利。经过3次TE缓冲液洗涤，包涵体达到了较好的纯化效果，洗涤后重组蛋白纯度达到85%以上。初步纯化后的包涵体重组蛋白经镍琼脂糖凝胶FF亲和层析后，由含20 mmol · L-1，500 mmol · L-1的咪唑以及ddH2O进行阶段洗脱，进一步纯化该重组蛋白，纯度可达到95%以上。由于GH基因内Cys含量较高，分子内可形成2个二硫键，在复性时容易形成蛋白质聚集体，所以笔者利用GSH/GSSG氧化交换系统促使二硫键的正确配对，同时采用稀释复性和透析复性相结合的方式对纯化蛋白进行复性。在复性过程中融合蛋白的再聚合是令人棘手的问题。姚燕等[12]中华绒鳌蟹(Eriocheir japonica sinensis)蜕皮抑制激素基因的表达及抗体制备研究表明在可在复性液中加入甘油增加粘度来减少蛋白分子间的相互作用，从而阻止透析复性过程中蛋白的再聚合，并且L-精氨酸作为小分子促溶剂，使整个透析过程中蛋白的聚合几率降到最低。张傅山等[13]研究表明在复性液中加入10%无水乙醇可提高复性效率。另外，蛋白质浓度也是影响蛋白质复性的重要因素。当蛋白浓度超过1 mg · mL-1时，即使复性液中加入甘油和L-精氨酸，复性后透析时仍会出现浑浊现象。笔者在试验中并没有加入促溶剂，直接将纯化后的蛋白用复性稀释液稀释到1 mg · mL-1再进行复性也得到了较好的复性效果。
经过包涵体分离的蛋白通过镍琼脂糖凝胶FF填料来分离带His标签的重组蛋白，其纯度可达95%以上。分离纯化的蛋白质大小为24.5 kDa，这比GH成熟蛋白大了约3 kDa左右，这是因为6xHis标签的分子量约为3 kDa，而GH成熟蛋白的分子量约为22 kDa，所以该蛋白质带大小与预期大小一致。纯化的方法有很多，此试验采用的是亲和层析，该纯化方法简便，分离效果好，其纯化产物可达95%以上，且经过SDS-PAGE和考马斯亮蓝染色呈现均一的1条带。这说明该纯化产物可用于抗体的制备和后续的生化实验的需要。
用经改良的方法进行免疫新西兰大白兔，经过35 d免疫注射后，用间接ELISA方法检测其抗体滴度为12 800，可以用来Western blotting分析。用改良后的方法来免疫新西兰大白兔在时间上由原来的3~4个月缩短到35 d，大大缩短了制备高效抗血清的时间，且所制备抗血清均能用于ELISA和Western blotting分析。胡志红等[14]用改良的方法制备了猴(Macaca mulatta)Esc-615基因多克隆抗体的制备，其抗血清滴度达到100 000。冯浩等[8]制备了青鱼(Mylopharyngodon piceus)生长激素多克隆抗血清也能用于ELISA和Western blotting分析。从而表明了上诉方法制备抗鲮GH的多克隆抗体不仅简便，而且行之有效，可为生长激素活性及功能的研究提供有效免疫学鉴定工具。
此试验制备的兔抗鲮生长激素多克隆抗体，经ELISA检测其滴度为12 800，经Western blotting分析，可以检测到10 ng的抗原量，而且可以在脑垂体提取物和血清中检测到大小为21.5 kDa的蛋白质，充分说明该抗体具有较强的灵敏性和免疫原性，为进一步研究在不同条件下鲮血液和脑垂体中生长激素蛋白的表达规律奠定了基础。
-
![]()
图 2 基于16S rDNA基因序列构建的菌株G2系统发育树
Figure 2. Constructed phylogenetic tree of Strain G2 based on 16S rDNA gene sequence
![]()
图 5 不同生长期下菌株G2的溶藻效果
Figure 5. Algicidal effect of Strain G2 at different growth stages
![]()
图 6 不同投加比例下菌株G2的溶藻效果
Figure 6. Algicidal effect of Strain G2 with different proportions
-
[1] XU D L, CAI Y, JIANG H, et al. Variations of food web structure and energy availability of shallow lake with long-term eutrophication: a case study from Lake Taihu, China[J]. Clean-Soil Air Water, 2016, 44(10): 1306-1314. doi: 10.1002/clen.201300837
[2] 朱广伟, 许海, 朱梦圆, 等. 三十年来长江中下游湖泊富营养化状况变迁及其影响因素[J]. 湖泊科学, 2019, 31(6): 1510-1524. doi: 10.18307/2019.0622 [3] 杨正健, 俞焰, 陈钊, 等. 三峡水库支流库湾水体富营养化及水华机理研究进展[J]. 武汉大学学报 (工学版), 2017, 50(4): 507-516. [4] MOHAMED M N, WELLEN C, PARSONS C T, et al. Understanding and managing the re-eutrophication of Lake Erie: knowledge gaps and research priorities[J]. Freshw Sci, 2019, 38(4): 675-691. doi: 10.1086/705915
[5] 中华人民共和国生态环境部. 2020中国环境生态环境质量简况[OL]. (2021-03-02). http://www.mee.gov.cn/xxgk2018/xxgk/xxgk15/202103/t20210302_823100.html. [6] KHAIRY H, EL-SHEEKH M. Toxicological studies on microcystin produced by Microcystis aeruginosa: assessment and management[J]. Egypt J Bot, 2019, 59(3): 551-566.
[7] DENG J M, QIN B Q, SARVALA J K, et al. Phytoplankton assemblages respond differently to climate warming and eutrophication: a case study from Pyhäjärvi and Taihu[J]. J Gt Lakes Res, 2016, 42(2): 386-396. doi: 10.1016/j.jglr.2015.12.008
[8] STEFFEN M M, DAVIS T W, MCKAY R M L, et al. Ecophysiological examination of the Lake Erie Microcystis bloom in 2014: linkages between biology and the water supply shutdown of Toledo, OH[J]. Environ Sci Technol, 2017, 51(12): 6745-6755. doi: 10.1021/acs.est.7b00856
[9] FAN G D, LIU D M, ZHU G C, et al. Influence factors in kinetics during removal of harmful algae by ultrasonic irradiation process[J]. Desalin Water Treat, 2014, 52(37/38/39): 7317-7322.
[10] LIN J L, HUA L C, HUNG S K, et al. Algal removal from cyanobacteria-rich waters by preoxidation-assisted coagulation-flotation: effect of algogenic organic matter release on algal removal and trihalomethane formation[J]. J Environ Sci, 2018, 63(1): 147-155.
[11] SAMARASINGHE N, FERNANDO S, LACEY R, et al. Algal cell rupture using high pressure homogenization as a prelude to oil extraction[J]. Renew Energ, 2012, 48: 300-308. doi: 10.1016/j.renene.2012.04.039
[12] 景二丹, 许小燕, 李丛宇, 等. 阳澄湖水源水中藻类的去除研究[J]. 中国给水排水, 2019, 35(13): 43-46. [13] MARŠÁLEK B, ZEZULKA Š, MARŠÁLKOVÁ E, et al. Synergistic effects of trace concentrations of hydrogen peroxide used in a novel hydrodynamic cavitation device allows for selective removal of cyanobacteria[J]. Chem Eng J, 2020, 382: 122383. doi: 10.1016/j.cej.2019.122383
[14] WANG M, CHEN S B, ZHOU W G, et al. Algal cell lysis by bacteria: a review and comparison to conventional methods[J]. Algal Res, 2020, 46: 101794. doi: 10.1016/j.algal.2020.101794
[15] LIU J Y, YANG C Y, CHI Y X, et al. Algicidal characterization and mechanism of Bacillus licheniformis Sp34 against Microcystis aeruginosa in Dianchi Lake[J]. J Basic Microbiol, 2019, 59(11): 1112-1124. doi: 10.1002/jobm.201900112
[16] ZHU B W, HUANG L S, TAN H D, et al. Characterization of a new endo-type polyM-specific alginate lyase from Pseudomonas sp.[J]. Biotechnol Lett, 2015, 37(2): 409-415. doi: 10.1007/s10529-014-1685-0
[17] SCHWENK D, NOHYNEK L, RISCHER H. Algae-bacteria association inferred by 16S rDNA similarity in established microalgae cultures[J]. MicrobiologyOpen, 2014, 3(3): 356-368. doi: 10.1002/mbo3.175
[18] CHEN Z R, ZHENG W, YANG L X, et al. Lytic and chemotactic features of the plaque-forming bacterium KD531 on Phaeodactylum tricornutum[J]. Front Microbiol, 2017, 8: 2581. doi: 10.3389/fmicb.2017.02581
[19] BARBEYRON T, ZONTA E, le PANSE S L, et al. Alteromonas fortis sp. nov., a non-flagellated bacterium specialized in the degradation of iota-carrageenan, and emended description of the genus Alteromonas[J]. Int J Syst Evol Microbiol, 2019, 69(8): 2514-2521. doi: 10.1099/ijsem.0.003533
[20] SUN H Y, ZHANG Y, CHEN H R, et al. Isolation and characterization of the marine algicidal bacterium Pseudoalteromonas S1 against the harmful alga Akashiwo sanguinea[J]. Mar Biol, 2016, 163(3): 1-8.
[21] SUN P F, ZHAO J Y, TANG J, et al. Algicidal activity recovery by a Li-doped up-conversion material converting visible light into UV[J]. Sci Total Environ, 2020, 720(1): 137596. doi: 10.1016/j.scitotenv.2020.137596
[22] CHI W J, SEO J W, HONG S K. Characterization of two thermostable β-agarases from a newly isolated marine agarolytic bacterium, Vibrio sp. S1[J]. Biotechnol Bioprocess Eng, 2019, 24(5): 799-809. doi: 10.1007/s12257-019-0180-9
[23] YU S, YUN E J, DONG H K, et al. Molecular and enzymatic verification of the dual agarolytic pathways in a marine bacterium, Vibrio sp. strain EJY3: molecular and enzymatic verification[J]. Appl Environ Microbiol, 2020, 86(6): e02724-19. doi: 10.1128/AEM.02724-19
[24] LIN Z H, CHEN B B, ZHAO L. Fluorescence-based bioassays with dose-response curve and relative potency in measuring algicidal virulence of Bacillus sp. B1 exudates against Heterosigma akashiwo[J]. Sci Total Environ, 2020, 724: 137691. doi: 10.1016/j.scitotenv.2020.137691
[25] 国家环境保护总局. 水和废水监测分析方法第4版[M]. 北京: 中国环境科学出版社, 2002: 670-671. [26] IMAI I, ITO H, ODA T, et al. Isolation and characterization of algicidal bacteria and its effect on a musty odor-producing cyanobacterium Dolichospermum crassum in a reservoir[J]. Water Supply, 2017, 17(3): 792-798. doi: 10.2166/ws.2016.179
[27] ZHANG S Y, FAN C, XIA Y S, et al. Characterization of a novel bacteriophage specific to Exiguobacterium indicum isolated from a plateau eutrophic lake[J]. J Basic Microbiol, 2019, 59(2): 206-214. doi: 10.1002/jobm.201800184
[28] 王琪, SIMON P, 刘锦钰, 等. 滇池中溶藻细菌的分离鉴定及其溶藻效应[J]. 微生物学通报, 2018, 45(12): 2614-2623. [29] LI Y, LEI X Q, ZHU H, et al. Chitinase producing bacteria with direct algicidal activity on marine diatoms[J]. Sci Rep, 2016, 6(1): 21984. doi: 10.1038/srep21984
[30] NISHU S D, KANG Y, HAN I, et al. Nutritional status regulates algicidal activity of Aeromonas sp. L23 against cyanobacteria and green algae[J]. PLOS ONE, 2019, 14(3): e0213370. doi: 10.1371/journal.pone.0213370
[31] YOU D S, LEE Y W, CHOI D, et al. Algicidal effects of thiazolinedione derivatives against Microcystis aeruginosa [J]. Kor J Chem Eng, 34(1): 139-149.
[32] 石新国, 李悦, 郑文煌, 等. 一株中肋骨条藻特异溶藻菌的分离鉴定及溶藻特性[J]. 微生物学通报, 2020, 47(11): 3527-3538. [33] WANG Y F, COYNE K J. Immobilization of algicidal bacterium Shewanella sp. IRI-160 and its application to control harmful dinoflagellates[J]. Harmful Algae, 2020, 94: 101798. doi: 10.1016/j.hal.2020.101798
[34] GUAN C W, GUO X Y, CAI G J, et al. Novel algicidal evidence of a bacterium Bacillus sp. LP-10 killing Phaeocystis globosa, a harmful algal bloom causing species[J]. Biol Control, 2014, 76: 79-86. doi: 10.1016/j.biocontrol.2014.05.007
[35] KONG Y, WANG Q, CHEN Y J, et al. Anticyanobacterial process and action mechanism of Streptomyces sp. HJC-D1 on Microcystis aeruginosa[J]. Environ Prog Sustain Energy, 2020, 39(4): 13392. doi: 10.1002/ep.13392
[36] AL-HAKIMI A A, ALMINDEREJ F, NOMAN E. Optimizing of Microcystis aeruginosa inactivation in freshwater using algicidal Bacillus subtilis by central composite design[J]. Desalin Water Treat, 2020, 181: 228-38. doi: 10.5004/dwt.2020.25117
[37] ZHANG B Z, CAI G J, WANG H T, et al. Streptomyces alboflavus RPS and its novel and high algicidal activity against harmful algal bloom species Phaeocystis globosa[J]. PLOS ONE, 2014, 9(3): e92907. doi: 10.1371/journal.pone.0092907
[38] YU Y, ZENG Y, LI J, et al. An algicidal streptomyces amritsarensis strain against Microcystis aeruginosa strongly inhibits microcystin synthesis simultaneously[J]. Sci Total Environ, 2019, 650: 34-43. doi: 10.1016/j.scitotenv.2018.08.433
[39] ZHANG C C, MASSEY I Y, LIU Y, et al. Identification and characterization of a novel indigenous algicidal bacterium Chryseobacterium species against Microcystis aeruginosa[J]. J Toxicol Env Health A, 2019, 82(15): 845-853. doi: 10.1080/15287394.2019.1660466
[40] 杨冰洁, 向文洲, 金雪洁, 等. 一株溶藻菌CBA02的分离鉴定及溶藻特性研究[J]. 生物技术通报, 2020, 36(11): 60-67. -
期刊类型引用(2)
1. 王庚申，颜懿，李彤，董鹏生，谢建军，许文军，张德民，张化俊. 漂白粉消毒后对虾养殖源水细菌群落的响应特征研究. 海洋与湖沼. 2024(01): 202-212 . 
百度学术
2. 郑仕夫，徐慧敏，陈曦，裘丽萍，宋超，范立民，李丹丹，孟顺龙，徐跑. 水产养殖尾水处理技术的研究现状和发展趋势. 中国农学通报. 2024(12): 159-164 . 百度学术
其他类型引用(1)
下载:
计量
- 文章访问数: 587
- HTML全文浏览量: 170
- PDF下载量: 44
- 被引次数: 3
粤公网安备 44010502001741号
