干露对克氏原螯虾成虾存活、相关代谢酶及组织结构的影响

王源源, 成永旭, 李晨露, 刘明明, 奚业文, 朱传忠, 李嘉尧

王源源, 成永旭, 李晨露, 刘明明, 奚业文, 朱传忠, 李嘉尧. 干露对克氏原螯虾成虾存活、相关代谢酶及组织结构的影响[J]. 南方水产科学, 2021, 17(5): 34-44. DOI: 10.12131/20210092
引用本文: 王源源, 成永旭, 李晨露, 刘明明, 奚业文, 朱传忠, 李嘉尧. 干露对克氏原螯虾成虾存活、相关代谢酶及组织结构的影响[J]. 南方水产科学, 2021, 17(5): 34-44. DOI: 10.12131/20210092
Yuanyuan WANG, Yongxu CHENG, Chenlu LI, Mingming LIU, Yewen XI, Chuanzhong ZHU, Jiayao LI. Effects of desiccation on survival, metabolism-related enzymes and histological structure of adult red swamp crayfish (Procambarus clarkii)[J]. South China Fisheries Science, 2021, 17(5): 34-44. DOI: 10.12131/20210092
Citation: Yuanyuan WANG, Yongxu CHENG, Chenlu LI, Mingming LIU, Yewen XI, Chuanzhong ZHU, Jiayao LI. Effects of desiccation on survival, metabolism-related enzymes and histological structure of adult red swamp crayfish (Procambarus clarkii)[J]. South China Fisheries Science, 2021, 17(5): 34-44. DOI: 10.12131/20210092

干露对克氏原螯虾成虾存活、相关代谢酶及组织结构的影响

基金项目: 国家重点研发计划项目 (2019YFD0900304);安徽省中央引导地方科技发展专项资金 (201907d06020008);农业农村部和国家发改委产业强镇项目 (发改农经2019-245);财政部和农业农村部国家产业技术体系建设资助 (CARS-48)
详细信息
    作者简介:

    王源源 (1995—),女,硕士研究生,研究方向为克氏原螯虾干露胁迫。E-mail: 821184285@qq.com

    通讯作者:

    成永旭 (1964—),男,博士,教授,从事河蟹品质和品种选育、营养调控研究。E-mail: yxcheng@shou.edu.cn

    李嘉尧 (1983—),男,博士,副教授,从事稻渔种养模式和虾蟹类营养饲料研究。E-mail: jy-li@shou.edu.cn

  • 中图分类号: S 917.4

Effects of desiccation on survival, metabolism-related enzymes and histological structure of adult red swamp crayfish (Procambarus clarkii)

  • 摘要: 为研究干露对克氏原螯虾 (Procambarus clarkii) 成虾的影响,在 (16±1) ℃和相对湿度 (Relative humidity, RH) (55±5)%的条件下,对成虾进行0、3、6、12、24、36、48、60、72、96、132和144 h干露处理。结果显示,雄虾半致死时间 (LT50) 为148.36 h,雌虾LT50为144.01 h,两者体质量消耗率随干露时间的延长逐渐升高,雄虾在干露144 h后体质量消耗率达16.09%,雌虾在132 h后达15.87%。鳃、肝胰腺和肌肉组织结构随干露时间的延长损伤逐渐加剧。肝胰腺和肌肉乳酸脱氢酶 (LDH) 活力呈先上升后下降的趋势,雌、雄虾肝胰腺LDH分别在第24和第36小时达到最大活力值,肌肉LDH分别在第36和第48小时达到最大活力值,肌肉乳酸 (LA) 浓度呈现相似的变化趋势,雌、雄虾LA分别在干露第60和第48小时达到最大浓度。琥珀酸脱氢酶 (SDH) 活力在胁迫期间呈下降趋势。成虾在干露约第48 小时耐受能力达到极限,呼吸代谢由有氧呼吸逐步转换到以无氧呼吸为主,并伴有组织损伤。雌、雄虾的抗干露胁迫能力存在差异,在进行成体运输时干露时间不宜超过36 h。
    Abstract: To investigate the effects of desiccation on adult red swamp crayfish (Procambarus clarkii), we designed a desiccation stress for crayfish for 0, 3, 6, 12, 24, 36, 48, 60, 72, 96, 132 and 144 h under the conditions of (16±1) ℃ and (55±5) % relative humidity (RH). The results show that the half-lethal time (LT50) of male and female crayfish were 148.36 and 144.01 h, respectively. The mass consumption rate increased gradually with the extension of desiccation time; the weight consumption of male reached 16.09% of body mass after 144 h desiccation, while that of female reached 15.87% of body mass after 132 h desiccation. Besides, the histological structure damage of gill, hepatopancreas and muscle was gradually aggravated. Moreover, the activity of lactate dehydrogenase (LDH) in hepatopancreas and muscle first increased and then decreased. The maximum LDH activities of hepatopancreas in female and male were observed at 24th and 36th hour, while those of muscle in female and male were observed at 36th and 48th hour, respectively. The lactic acid (LA) content of muscle showed similar trend, with LA contents of female and male being the highest after 60 and 48 h desiccation stress, respectively. The succinate dehydrogenase (SDH) activity reduced significantly during desiccating. Furthermore, the desiccation tolerance of adult crayfish reached the limit after 48 h, and the respiratory metabolism gradually transformed from aerobic respiration to anaerobic respiration, accompanied by histological damage. In conclusion, the ability of resist desiccation between male and female is different. Thus, the desiccation time should not exceed 36 h when transporting adult crayfishes.
  • 卵形鲳鲹(Trachinotus ovatus)俗称金鲳、黄腊鲳、红三等,隶属鲈形目、鲈亚目、鲹科、鲳鲹亚科、鲳鲹属,广泛分布于太平洋、大西洋和印度洋热带及温带海域[1-3]。该鱼体型较大、生长快、食性简单、肉质细嫩鲜美,广受养殖户和消费者喜爱。随着其繁育技术获得突破,且养殖过程中可全程使用人工配合饲料,出口加工市场大等;近年来,卵形鲳鲹养殖产业在我国发展迅速,已成为广东、广西、海南等华南沿海地区网箱主养海水鱼类之一,2017年全国养殖产量超10×104 t[4-6]

    开展鱼类摄食节律研究,通过调整鱼类的摄食活动时间,使其摄食节律与大多数体细胞的生长增殖周期同步,是一种重要的时间生物学策略[7-11]。目前已有多种鱼类的摄食节律被研究,如大鳞副泥鳅(Paramisgurnus dabryanus)[12]、高体革䱨(Scortum barcoo)[13]、牙鲆(Paralichthys olivaceus)[14]、鬼鲉(Inimicus japonicus)[11]、双棘黄姑鱼(Nibea diacanthus)[15]、大口胭脂鱼(Ictiobus Cyprinellus)[16]和塞内加尔鳎(Solea senegalensis)[17]等,但对卵形鲳鲹的相关研究尚未见报道。

    鱼类的耗氧率是有氧代谢强度的重要指标之一,耗氧率高低通常与鱼类的大小和摄食水平相对应,鱼类摄食活动的旺盛期通常也是高耗氧率时期。耗氧节律能直接反映出鱼类的新陈代谢规律和生理反应[18-20],耗氧率低时鱼多处在静止或缓慢运动状态,能量代谢强度低;耗氧率高时多处在剧烈运动状态,能量代谢强度高。胃肠排空是指食物从鱼摄食后至分别经胃、肠消化后排出体外的过程,胃肠排空影响着鱼类的食欲,鱼类胃肠饱满度和胃肠排空速率决定摄食量[21-23]。研究表明,不同鱼类的摄食、耗氧节律和胃肠排空时间存在较大差异。本研究以卵形鲳鲹为实验对象,探究其摄食、耗氧节律和胃肠排空时间的规律性,为确定卵形鲳鲹适宜投喂时间提供理论依据,也为其他水产动物的摄食节律研究和投喂策略提供参考。

    本研究实验鱼为深圳大鹏澳海域中国水产科学研究院南海水产研究所深圳试验基地抗风浪网箱养殖的4月龄卵形鲳鲹,2018年9月30日,将实验鱼在露天高位池塘过渡驯养15 d,实验开始前1周,挑选大小一致、活力好且体表无伤的个体暂养于室内养殖桶中,使实验鱼适应实验环境,能在实验条件下正常摄食。养殖和暂养全程使用广东越群海洋生物研究开发有限公司生产的浮性卵形鲳鲹专用配合饲料。实验时挑选60尾用于摄食节律实验,9尾用于耗氧节律实验,90尾用于胃肠排空实验。实验期间水温为25.1~26.3 ℃、盐度32.5、pH 7.6~8.5。

    摄食节律实验采用分段式连续投喂法[10, 12],实验于2018年10月22日,将一昼夜分为12个时间段(00:00、02:00、04:00、06:00、08:00、10:00、12:00、14:00、16:00、18:00、20:00、22:00),每时段连续投喂,实验设3个平行组,每组20尾实验鱼,总质量(1 532.57±20.64) g,养殖密度约为40尾·m−3。分组后实验鱼停料1 d,从10月23日14:00开始投喂,为尽量排除实验鱼补偿摄食的影响,前3次投喂数据舍去。每次投喂前准确称取过量饲料,确保达到表观饱食,1 h后将残余饵料捞出,收集到各平行组各时段对应的小盒中,−20 ℃冰柜保存,待实验完成后,经60 ℃烘干获得实验鱼实际摄食量。测定残饵的溶失率以校正实验鱼的摄食量,即在实验完成后,将实验鱼捞出,向每组养殖桶中投入10 g实验用饲料,1 h后收集,与10 g未浸泡饲料同时放60 ℃烘干并称质量,求得溶解掉的饲料质量,计算溶失率。实验周期为3.5 d。

    耗氧节律实验采用流水呼吸法[18,20],随机挑9尾卵形鲳鲹,设3个平行组,每组3尾,总质量(227.49±6.04) g,分别放入自制透明玻璃鱼缸中,用封口膜密封,玻璃缸规格为长×宽×高=40 cm×40 cm×50 cm,养殖密度约为38尾·m−3。提前用1 t水体的养殖桶备满沙滤自然海水,确保桶中水溶氧大于6 mg·L−1,调整流速,使流出实验玻璃鱼缸的水溶氧大于4 mg·L−1,实验持续1昼夜,分12次取样读取溶氧数据,取样时间与摄食节律实验相同(00:00、02:00、04:00、06:00、08:00、10:00、12:00、14:00、16:00、18:00、20:00、22:00),溶解氧用校准后的德国WTW多参数分析仪测定。

    胃肠排空实验采用一次饱食投喂法[10,22],将一昼夜等分为12个时间段,每隔2 h取样1次作为一个处理组,设3个平行组,每组30尾,总质量(2 295.6±48.26) g,养殖密度约为60尾·m−3。分组后实验鱼停料2 d,确保实验鱼胃肠内容物充分排空,实验桶内无其他可食用物,投入的饲料为唯一食物来源。实验鱼饱食投喂后捞出剩饵,分别在饱食后第1、第3、第5、第7、第9、第11、第13、第15、第17、第19、第21和第23小时随机捞出2尾进行解剖取样。解剖前先用丁香酚将实验鱼深度麻醉,以减少胃肠蠕动而造成的实验误差。分别取出胃和肠中内含物并收集到各平行组各时段对应的小盒中,−20 ℃冰柜保存,待实验完成后,经60 ℃烘干称质量,实验均持续1昼夜。

    $$ \begin{array}{*{20}{c}} {{K_{\rm{p}}} = {W_{\rm{f}}} \times {W_0}^{ - 1} \times 100\% }\\ {{K_{\rm{a}}} = {W_{\rm{f}}} \times {W_0}^{ - 1} \times {D^{ - 1}} \times 100\% }\\ {{R_{\rm{s}}} = {W_{\rm{s}}} \times {W_{\rm{w}}}^{ - 1} \times 100\% }\\ {{R_{\rm{b}}} = {W_{\rm{b}}} \times {W_{\rm{w}}}^{ - 1} \times 100\% }\\ {{R_{{\rm{OCR}}}} = A \times V \times {W_{\rm{w}}}^{ - 1}\times {t^{ - 1}} \times 100\% } \end{array} $$

    式中Kp为日摄食率;Ka为平均摄食率;Rs为胃内含物比率;Rb为肠内含物比率;ROCR为耗氧率;Wf为摄食量(g);W0为初始体质量(g);D为实验天数(d);Ws为胃内含物干质量(g);Wb为肠内含物干质量(g);Ww为鱼体湿质量(g);A为消耗水溶解氧质量浓度(mg·L−1);V为容积(L);t为呼吸时间(h)。

    所有统计分析由Excel 2016和SPSS 20.0软件完成,实验数据先做方差齐性检验,然后进行单因素方差分析(One-Way ANOVA),再对不同处理组进行Duncan's多重比较,取P<0.05为差异显著。

    在一昼夜的分段式连续投喂下,卵形鲳鲹在上午10:00和下午14:00—16:00期间表现出2个摄食高峰(P<0.05),凌晨02:00—08:00摄食水平显著低于其他时段(P<0.05),06:00摄食水平最低(P<0.05),属于典型的白天摄食类型。第1天的摄食最高峰出现在晚上22:00,之后在上午10:00和下午16:00各出现1个摄食高峰。第2天的摄食率波动较小,凌晨06:00天亮后摄食率逐渐升高,在傍晚18:00出现1个摄食高峰。第3天的摄食节律比前2 d相对稳定,分别在晚上20:00和上午10:00出现2个摄食高峰(图1)。

    图  1  在分段式连续投喂下卵形鲳鲹的昼夜摄食节律变化 ($ \overline X \pm {\rm{SE}}$n=3)
    图中不同英文字母表示每个取样时间点所得数据之间达到显著差异水平(P<0.05);后图同此
    Figure  1.  Variation of diet feeding rhythm of T. ovatus by a continuous feeding at a fixed interval
    The values with different lowercase letters are significantly different at P<0.05 at each sampling time; the same case in the following figures.

    实验测得饲料的溶失率为6.3%,卵形鲳鲹的昼夜平均摄食率为2.33%,算出实验中卵形鲳鲹饲料的日摄食量为鱼体体质量的2.49%。

    水温25.1~26.3 ℃,卵形鲳鲹昼夜耗氧率波动较大,凌晨00:00—08:00,耗氧率逐渐升高,08:00达第1个耗氧高峰,之后迅速下降,在10:00—12:00时间段耗氧率达一天的最低值[0.413 mg·(g·h)−1](P<0.05),午后又迅速上升,在16:00达到第2个耗氧高峰,也是一天耗氧率最高值[0.702 mg·(g·h)−1](P<0.05),之后逐渐下降,至00:00耗氧率接近最低水平[0.417 mg·(g·h)−1] (P<0.05,图2)。

    图  2  卵形鲳鲹昼夜耗氧节律
    Figure  2.  Circadian rhythm on oxygen consumption rate of T. ovatus

    卵形鲳鲹在白天(8:00—18:00)平均耗氧率为(0.571±0.14) mg·(g·h)−1,夜间(18:00—08:00)平均耗氧率为(0.546±0.07) mg·(g·h)−1,白天与夜间相近(P>0.05)。

    卵形鲳鲹摄食后24 h内胃和全肠排空时间见图3。饱食后胃内含物比率下降迅速(P<0.05),7 h下降近50%,第15小时出现极低值(P<0.05),19 h后胃内含物为0。摄食后胃内含物比率呈阶梯下降趋势明显,通过与摄食后时间拟合后获得公式y=0.018 5x2−0.394x+2.071 5 (R2=0.995 5),y为胃内含物比率,x为摄食后时间。

    图  3  卵形鲳鲹摄食后胃肠内含物比率变化
    Figure  3.  Post-prandial digesta ratios in stomach and bowels of T. ovatus

    饱食后3 h内全肠内含物比率迅速升高,第9~第11小时达到最大值(P<0.05),之后逐渐降低,在第21小时出现极低值(P<0.05)。

    Helfman[24]把鱼类的摄食归纳为白天摄食、晚上摄食、晨昏摄食和无明显节律摄食4种类型。本研究的卵形鲳鲹第1天的摄食率波动大,第1个摄食最高峰出现在晚上22:00,之后在上午10:00和下午16:00各出现1个摄食高峰。第2天的摄食率波动较小,凌晨06:00天亮后摄食率逐渐升高,在傍晚18:00出现1个摄食高峰。第3天的摄食节律比前2天相对稳定,分别在晚上20:00和上午10:00出现2个摄食高峰。综合3 d的摄食率变化发现,其原因可能是实验鱼饥饿1 d后,补偿摄食的影响未完全消除而出现的结果,后两天卵形鲳鲹的摄食节律相对明显,表现为在上午10:00和下午14:00—16:00期间出现2个摄食高峰(P<0.05),凌晨02:00—08:00摄食水平显著低于其他时段(P<0.05),06:00摄食水平最低(P<0.05),这表明卵形鲳鲹属于典型的白天摄食类型。叉尾斗鱼(Macropodus opercularis)仔鱼在12:00—16:00表现出明显的摄食高峰,且在持续光照下摄食活动昼夜均很活跃,表明叉尾斗鱼为白天摄食类型[25]。白天摄食类型的鱼类,其视觉在摄食中具有重要意义,而夜间或晨昏摄食类型的鱼类,主要依靠如化学感觉、触觉等进行捕食[10-12, 26]。如大鳞副泥鳅[12]因长期生活在水体底层,栖息环境光线微弱,眼睛逐渐退化,触须发达,靠触觉和化学感觉来识别食物。因此按照自然摄食节律来确定适宜的喂料时间,可有效提高饲料效率,增加经济效益。可见鱼类的日摄食节律不仅能被规律的人工投喂时间适当调整,同时也受栖息环境和不同种属的影响。

    鱼类的耗氧率高低通常与鱼类的大小、水温和摄食水平相对应。水温适宜,鱼类摄食活动旺盛时耗氧率也会相应升高。耗氧节律能直接反映出鱼类的新陈代谢规律和生理反应[18-20]。鱼类耗氧率的昼夜节律可分为4种,分别是白天耗氧率高于夜间耗氧率、夜间耗氧率高于白天耗氧率、昼夜耗氧率无差异和某一时间段内出现耗氧率高峰区域等[18]。本实验结果表明,卵形鲳鲹属于昼夜耗氧率基本无差异,白天和夜晚均有耗氧高峰期与低峰期,在06:00—8:00和14:00—18:00出现耗氧率高峰(P<0.05),说明卵形鲳鲹在这2个时间段呼吸代谢旺盛,活动频繁,结合前面分析的摄食节律,可能与捕食或消化有关。而在22:00—00:00和10:00—12:00出现耗氧率低谷(P<0.05)。自然条件下,22:00—00:00时间段光线微弱,对卵形鲳鲹这种白天摄食类型的鱼类,摄食活动相对减少,而10:00—12:00时间段,正处于一天中阳光直射、光照强烈且水温较高的时候,鱼类因其本性,减少活动以躲避强光。

    胃肠排空影响着鱼类的食欲,鱼类胃肠饱满度和胃肠排空速率决定摄食量[21-23]。本实验发现卵形鲳鲹在摄食7 h后约50%胃内含物已排出,第19小时胃内含物为0,全肠内含物也降至最低。余方平等[27]用相同方法测得眼斑拟石首鱼(Sciaenops ocellatus)摄食28 h后接近排空;马彩华等[28]发现大菱鲆(Scophthalmus maximus)在摄食6 h后开始排粪,20 h排空;董桂芳等[10]的研究发现斑点叉尾鮰 (Ictalurus punctatus)和杂交鲟(Acipenser baeri×A. gueldenstaedtii)胃和肠排空需要24 h。而卵形鲳鲹摄食胃肠排空时间较短,这可能与不同鱼类的胃肠消化及吸收速率有关。在同一时间段,胃内含物的减少量大于肠内含物的增加量,这可能是由于卵形鲳鲹属于游动迅速、活动量大的鱼类,为适应快速游动,身体侧扁,胃相对较小,肠道也相应较短,因此食物在体内被消化和吸收快,甚至可能部分营养物质在胃内已被消化吸收。结合昼夜节律实验发现,卵形鲳鲹在胃肠排空之前就有摄食行为,且全时段都能进行摄食。

    投喂策略是鱼类养殖技术的重要部分,投喂不当不仅浪费饵料和劳动力,而且污染水质导致养殖效益低[26]。科学的投喂策略应符合鱼类摄食、耗氧节律和胃肠排空时间等生活习性和生理变化。研究表明鱼类摄食节律的形成与自然界食物丰度有关,推测长期特定的人工投喂策略可改变鱼类的摄食节律[29]。因此可通过特定时间的投喂来驯化鱼类的摄食时间,从而调整其日摄食节律。Luo等[30]研究了杂交鲟(A. schrenckii ♀×A. baeri ♂)育成阶段的最适投喂频率和投喂率。表明投喂频率和投喂率均对鲟鱼的生长性能指标有极显著影响(P<0.01),鲟鱼育成阶段最适投喂策略为以3.7%鱼体质量的投喂率,每天投喂6次。郑伟力等[31]通过对大鳞副泥鳅繁育研究表明可通过人工养殖驯化,将大鳞副泥鳅夜间摄食节律调整为晨昏摄食。因此,生产上可根据实际养殖情况对卵形鲳鲹进行定时定点的人工投饵驯化,适当调整其摄食节律,以提高人工养殖效率。

    综合卵形鲳鲹昼夜摄食、耗氧节律和胃肠排空的实验结果,建议在卵形鲳鲹网箱养殖生产中,宜在光线较强和耗氧、摄食高峰的上午(09:00—10:00)和下午(14:00—16:00)时段进行投喂,投喂频率2~3次·d−1,投喂间隔7~9 h。

  • 图  1   干露胁迫下克氏原螯虾的死亡率

    Figure  1.   Mortality of P. clarkii in air exposure periods

    图  2   干露胁迫下克氏原螯虾的体质量消耗率

    大写字母不同表示雄虾不同胁迫时间组的差异显著 (P<0.05),小写字母不同表示雌虾不同胁迫时间组的差异显著 (P<0.05)。

    Figure  2.   Mass consumption rate of P. clarkii in air exposure periods

    Values with different uppercase and lowercase letters indicate significantly difference in male and female crayfish among different groups, respectively (P<0.05).

    图  3   干露胁迫对克氏原螯虾雄虾 (a) 和雌虾 (b) 肝胰腺乳酸脱氢酶活力的影响

    *. 各组与0 h组的差异显著 (P<0.05);不同字母上标表示除0 h组外不同胁迫时间组的差异显著 (P<0.05);后图同此。

    Figure  3.   Effect of dry exposure on hepatopancreas LDH activity of male (a) and female (b) P. clarkii

    *. Significant difference between each group and 0 h group (P<0.05); different letters represent significant difference among different groups except 0 h group (P<0.05). The same case in the following figures.

    图  4   干露胁迫对克氏原螯虾雄虾 (a) 和雌虾 (b) 肌肉乳酸脱氢酶活力的影响

    Figure  4.   Effect of dry exposure on muscle LDH activity of male (a) and female (b) P. clarkii

    图  5   干露胁迫对克氏原螯虾雄虾 (a) 和雌虾 (b) 肝胰腺琥珀酸脱氢酶活力的影响

    Figure  5.   Effect of dry exposure on hepatopancreas SDH activity of male (a) and female (b) P. clarkii

    图  6   干露胁迫对克氏原螯虾雄虾 (a) 和雌虾 (b) 肌肉琥珀酸脱氢酶活力的影响

    Figure  6.   Effect of dry exposure on muscle SDH activity of male (a) and female (b) P. clarkii

    图  7   干露胁迫对克氏原螯虾雄虾 (a) 和雌虾 (b) 肌肉乳酸质量摩尔浓度的影响

    Figure  7.   Effect of dry exposure on muscle LA molar concentrations of male (a) and female (b) P. clarkii

    图  8   干露胁迫对雄性克氏原螯虾肝胰腺显微结构的影响

    a—i分别代表干露胁迫0、12、24、36、48、60、72、96和132 h;B. B细胞;R. R细胞;F. F细胞;L. 管腔;BM. 基膜;TV. 转运泡;图9同此。

    Figure  8.   Effect of dry exposure on hepatopancreas microstructure of male P. clarkii

    a–i represent dry exposure of 0, 12, 24, 36, 48, 60, 72, 96 and 132 h, respectively; B. B cell; R. R cell; F. F cell; L. Lumen; BM. Basement membrane; TV. Transferred vacuoles; the same case in Figure 9.

    图  9   干露胁迫对雌性克氏原螯虾肝胰腺显微结构的影响

    Figure  9.   Effect of dry exposure on hepatopancreas microstructure of female P. clarkii

    图  10   干露胁迫对雄性克氏原螯虾鳃显微结构的影响

    GM. 鳃膜;H. 血细胞;CL. 微血管腔;REC. 呼吸上皮细胞;图11同此。

    Figure  10.   Effect of dry exposure on gill microstructure of male P. clarkii

    GM. Gill membranes; H. Hemocytes; CL. Capillary lumen; REC. Respiratory epithelium cells; the same case in Figure 11.

    图  11   干露胁迫对雌性克氏原螯虾鳃显微结构的影响

    Figure  11.   Effect of dry exposure on gill microstructure of female P. clarkii

    图  12   干露胁迫对雄性克氏原螯虾肌肉显微结构的影响

    Figure  12.   Effect of dry exposure on muscle microstructure of male P. clarkii

    图  13   干露胁迫对雌性克氏原螯虾肌肉显微结构的影响

    Figure  13.   Effect of dry exposure on muscle microstructure of female P. clarkii

  • [1] 堵南山. 甲壳动物学 下册[M]. 北京: 科学出版社, 1993: 821-822.
    [2] 农业农村部渔业渔政管理局. 2020 中国渔业统计年鉴[M]. 北京: 中国农业出版社, 2020: 24.
    [3] 谢佳彦, 朱爱意. 几种重要水产品活体运输技术研究[J]. 水产科学, 2010, 29(9): 532-536. doi: 10.3969/j.issn.1003-1111.2010.09.007
    [4]

    PAITAL B. Antioxidant and oxidative stress parameters in brain of Heteropneustes fossilis under air exposure condition; role of mitochondrial electron transport chain[J]. Ecotoxicol Environ Saf, 2013, 95: 69-77. doi: 10.1016/j.ecoenv.2013.05.016

    [5]

    ABELE D, PHILIPP E, GONZALEZ P M, et al. Marine invertebrate mitochondria and oxidative stress[J]. Front Biosci, 2007, 12(3): 933-946. doi: 10.2741/2115

    [6]

    MARTINE-ALVAREZ R M, MORALES A E, SANZ A. Antioxidant defenses in fish: biotic and abiotic factors[J]. Rev Fish Biol Fish, 2005, 15(1/2): 75-88.

    [7] 连春盎, 李健, 李吉涛, 等. 干露胁迫对脊尾白虾 (Exopalaemon carinicauda) 呼吸代谢相关酶的影响[J]. 渔业科学进展, 2017, 38(4): 53-60.
    [8] 段亚飞, 董宏标, 王芸, 等. 干露胁迫对日本囊对虾抗氧化酶活性的影响[J]. 南方水产科学, 2015, 11(4): 102-108. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2015.04.015
    [9] 姜令绪, 刘群, 王仁杰, 等. 三疣梭子蟹 (Portunus trituberculatus) 幼体不同干露温度下死亡率的研究[J]. 海洋与湖沼, 2012, 43(1): 127-131. doi: 10.11693/hyhz201201021021
    [10] 王明焰. 提高小龙虾虾苗长途运输成活率技术要点[J]. 科学养鱼, 2020(5): 11-12. doi: 10.3969/j.issn.1004-843X.2020.05.006
    [11] 马贵范, 杨凤, 郭文学, 等. 中国蛤蜊和四角蛤蜊对干露和淡水浸泡的耐受性比较[J]. 大连海洋大学学报, 2013, 28(1): 44-48. doi: 10.3969/j.issn.2095-1388.2013.01.009
    [12] 温小波, 库夭梅, 罗静波. 克氏原螯虾耗氧率及窒息点的研究[J]. 大连水产学院学报, 2003, 18(3): 170-174.
    [13] 平洪领, 李玉全. 干露对天津厚蟹水分代谢和死亡率的影响[J]. 湖北农业科学, 2014, 53(18): 4377-4380.
    [14] 王海锋, 成永旭, 李京昊, 等. 干露和再入水对克氏原螯虾抗氧化应激能力的影响[J]. 南方水产科学, 2019, 15(5): 69-76. doi: 10.12131/20190059
    [15]

    OMORI K, IRAWAN B, KIKUTANI Y. Studies on the salinity and desiccation tolerances of Helice tridens and Helice japonica (Decapoda: Grapsidae)[J]. Hydrobiologia, 1998, 386(1/2/3): 27-36. doi: 10.1023/A:1003461911201

    [16]

    CARDINAUD M, OFFRET C, HUCHETTE S, et al. The impacts of handling and air exposure on immune parameters, gene expression, and susceptibility to vibriosis of European abalone Haliotis tuberculata[J]. Fish Shellfish Immunol, 2014, 36(1): 1-8. doi: 10.1016/j.fsi.2013.09.034

    [17]

    ABUMANDOUR M M. Gill morphology in the red swamp freshwater crayfish Procambarus clarkii (Crustacea: Decapoda: Cambarids) (Girard 1852) from the river Nile and its branches in Egypt[J]. Int J Morphol, 2016, 34(1): 168-178. doi: 10.4067/S0717-95022016000100025

    [18] 曾朝曙, 李少菁. 温度对锯缘青蟹幼体存活与发育的影响[J]. 水产学报, 1992, 16(3): 213-221.
    [19]

    VIRU M. Differences in effects of various training regimens on metabolism of skeletal muscles[J]. J Sports Med Phys Fit, 1994, 34(3): 217-227.

    [20] 陶易凡, 强俊, 王辉, 等. 低pH胁迫对克氏原螯虾鳃和肝胰腺酶活力及组织结构的影响[J]. 中国水产科学, 2016, 23(6): 1279-1289.
    [21] 段亚飞, 董宏标, 王芸, 等. 干露胁迫对日本囊对虾呼吸代谢酶活性和RNA/DNA比值的影响[J]. 海洋渔业, 2016, 38(1): 42-50. doi: 10.3969/j.issn.1004-2490.2016.01.006
    [22]

    KAJA S, PAYNE A J, SINGH T, et al. An optimized lactate dehydrogenase release assay for screening of drug candidates in neuroscience[J]. J Pharmacol Toxicol Meth, 2015, 73: 1-6.

    [23]

    RUSTIN P, CHRETIEN D, BOURGERON T, et al. Biochemical and molecular investigations in respiratory chain deficiencies[J]. Clinica Chimica Acta, 1994, 228(1): 35-51. doi: 10.1016/0009-8981(94)90055-8

    [24]

    GAO X L, ZHANG M, LI X, et al. Effects of LED light quality on the growth, metabolism, and energy budgets of Haliotis discus discus[J]. Aquaculture, 2016, 453: 31-39. doi: 10.1016/j.aquaculture.2015.11.033

    [25]

    OLIVEIRA G T, EICHLER P, ROSSI I C, et al. Hepatopancreas gluconeogenesis during anoxia and post-anoxia recovery in Chasmagnathus granulata crabs maintained on high-protein or carbohydrate-rich diets[J]. J Exp Zool Pt A, 2004, 301(3): 240-248. doi: 10.1002/jez.a.20026

    [26] 赵卫红, 王资生, 张余霞, 等. 雌二醇对日本沼虾肝胰腺的脂肪酸含量及组织结构的影响[J]. 海洋渔业, 2014, 36(6): 542-548. doi: 10.3969/j.issn.1004-2490.2014.06.010
    [27] 张晴, 姜明慧, 田元勇, 等. 虾夷扇贝闭壳肌蛋白溶解性与三磷酸腺苷的关联性[J]. 水产科学, 2020, 39(4): 476-482.
    [28] 李娜, 赵永强, 李来好, 等. 冰藏过程中罗非鱼鱼片肌肉蛋白质变化[J]. 南方水产科学, 2016, 12(2): 88-94. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2016.02.013
    [29]

    SOLLID J, NILSSON G E. Plasticity of respiratory structures: adaptive remodeling of fish gills induced by ambient oxygen and temperature[J]. Respir Physiol Neurobiol, 2006, 154(1): 241-251.

    [30] 王权, 王建国, 陆宏达, 等. 硫酸锌慢性毒性胁迫下克氏原螯虾的组织病理[J]. 中国水产科学, 2012, 19(1): 126-137.
    [31] 丁正峰, 薛晖, 王晓丰, 等. 毒死蜱 (CPF) 对克氏原螯虾的急性毒性及组织病理观察[J]. 生态与农村环境学报, 2012, 28(4): 462-467. doi: 10.3969/j.issn.1673-4831.2012.04.023
    [32]

    WEI K Q, YANG J X. Histological alterations and immune response in the crayfish Procambarus clarkii given rVP28-incorporated diets[J]. Fish Shellfish Immunol, 2011, 31(6): 1122-1128. doi: 10.1016/j.fsi.2011.10.002

    [33] 韩晓琳, 高保全, 王好锋, 等. 低盐胁迫对三疣梭子蟹鳃和肝胰腺显微结构及家系存活的影响[J]. 渔业科学进展, 2014, 35(1): 104-110. doi: 10.3969/j.issn.1000-7075.2014.01.015
    [34] 洪美玲, 陈立侨, 顾顺樟, 等. 氨氮胁迫对中华绒螯蟹免疫指标及肝胰腺组织结构的影响[J]. 中国水产科学, 2007, 14(3): 412-418. doi: 10.3321/j.issn:1005-8737.2007.03.010
    [35]

    JONG-MOREAU L, BRUNET M, CASANOVA J P, et al. Comparative structure and ultrastructure of the midgut and hepatopancreas of five species of Mysidacea (Crustacea): functional implications[J]. Can J Zool, 2000, 78(5): 822-834. doi: 10.1139/z99-263

    [36] 李二超, 陈立侨, 曾嶒, 等. 不同盐度下饵料蛋白质含量对凡纳滨对虾生长、体成份和肝胰腺组织结构的影响[J]. 水产学报, 2008, 32(3): 425-433.
  • 期刊类型引用(6)

    1. 张静,戴佳玥,来新昊,刘旭祥,张浩,王学锋,汤保贵. 卵形鲳鲹应对流速胁迫的代谢组学分析. 海洋学报. 2023(05): 53-63 . 百度学术
    2. 段鹏飞,田永胜,李振通,李子奇,陈帅,黎琳琳,王心怡,王林娜,刘阳,李文升,王晓梅,李波. 棕点石斑鱼(♀)×蓝身大斑石斑鱼(♂)杂交后代与棕点石斑鱼低氧耐受能力初步研究. 中国水产科学. 2022(02): 220-233 . 百度学术
    3. 逯云召,于燕光,薄其康,马超,宓慧菁,孙晓旺. 大泷六线鱼幼鱼的摄食节律研究. 渔业现代化. 2021(02): 35-39 . 百度学术
    4. 李志成,江飚,钟志鸿,李诗钰,何润真,唐嘉嘉,李安兴. 硫酸铜治疗卵形鲳鲹淀粉卵涡鞭虫病的研究. 南方水产科学. 2021(03): 108-114 . 本站查看
    5. 韩明洋,周胜杰,杨蕊,胡静,马振华. 温度胁迫下卵形鲳鲹仔鱼骨骼组织病理及分子表征. 南方农业学报. 2021(11): 3147-3156 . 百度学术
    6. 黄小林,戴超,虞为,杨洁,杨育凯,李涛,林黑着,黄忠,孙莘溢,舒琥. 丁香酚对卵形鲳鲹幼鱼的麻醉效果. 广东海洋大学学报. 2020(04): 124-131 . 百度学术

    其他类型引用(3)

图(13)
计量
  • 文章访问数:  724
  • HTML全文浏览量:  234
  • PDF下载量:  55
  • 被引次数: 9
出版历程
  • 收稿日期:  2021-03-23
  • 修回日期:  2021-04-29
  • 录用日期:  2021-05-11
  • 网络出版日期:  2021-05-24
  • 刊出日期:  2021-09-29

目录

/

返回文章
返回