盐度和钠离子/钾离子对凡纳滨对虾幼虾存活与组织结构的影响

苏家齐, 祝华萍, 朱长波, 张博, 李婷, 陈素文

苏家齐, 祝华萍, 朱长波, 张博, 李婷, 陈素文. 盐度和钠离子/钾离子对凡纳滨对虾幼虾存活与组织结构的影响[J]. 南方水产科学, 2021, 17(5): 45-53. DOI: 10.12131/20210011
引用本文: 苏家齐, 祝华萍, 朱长波, 张博, 李婷, 陈素文. 盐度和钠离子/钾离子对凡纳滨对虾幼虾存活与组织结构的影响[J]. 南方水产科学, 2021, 17(5): 45-53. DOI: 10.12131/20210011
Jiaqi SU, Huaping ZHU, Changbo ZHU, Bo ZHANG, Ting LI, Suwen CHEN. Effects of salinity and Na+/K+ ratio on survival and histological structure of Litopenaeus vannamei[J]. South China Fisheries Science, 2021, 17(5): 45-53. DOI: 10.12131/20210011
Citation: Jiaqi SU, Huaping ZHU, Changbo ZHU, Bo ZHANG, Ting LI, Suwen CHEN. Effects of salinity and Na+/K+ ratio on survival and histological structure of Litopenaeus vannamei[J]. South China Fisheries Science, 2021, 17(5): 45-53. DOI: 10.12131/20210011

盐度和钠离子/钾离子对凡纳滨对虾幼虾存活与组织结构的影响

基金项目: 国家重点研发计划“蓝色粮仓科技创新”专项“内陆盐碱水域绿洲渔业模式示范” (2020YFD0900400);国家自然科学基金青年科学基金项目 (31902423);中国水产科学研究院中央级科研院所基本科研业务费专项资金资助 (2021XT0403)
详细信息
    作者简介:

    苏家齐 (1987—),男,博士,助理研究员,从事水产养殖生态学研究。E-mail: sujiaqi2005@126.com

    通讯作者:

    朱长波 (1978—),男,博士,研究员,从事水产养殖生态学与模式研究。E-mail: changbo@scsfri.ac.cn

  • 中图分类号: S 966.1

Effects of salinity and Na+/K+ ratio on survival and histological structure of Litopenaeus vannamei

  • 摘要: 通过实验生态学方法,对体质量为 (1.35±0.37) g的凡纳滨对虾 (Litopenaeus vannamei) 幼虾开展了盐度 (2、4、8、12、16) 和钠离子/钾离子 (Na+/K+) (27、50、75、100、125、150) 双因素胁迫实验,分析其对凡纳滨对虾的72 h成活率及肝胰腺和肌肉组织结构的影响。结果显示,在Na+/K+大于75的条件下,凡纳滨对虾的成活率随盐度的增加而降低;在盐度大于8的条件下,凡纳滨对虾的成活率随Na+/K+的降低而升高。在Na+/K+为27~75条件下,凡纳滨对虾的成活率均大于66.67%。Na+/K+为100条件下,凡纳滨对虾在盐度12和16下的半致死时间 (LT50) 分别为69.78和60.15 h。Na+/K+为125条件下,盐度8、12和16下的LT50分别为76.23、62.61和49.10 h。Na+/K+为150条件下,盐度4、8、12和16下的LT50分别为87.24、68.65、59.4和39.95 h。双因素方差分析表明,Na+/K+、盐度与凡纳滨对虾幼虾第72小时的成活率存在显著交互作用。组织切片显示,当盐度大于8时,高Na+/K+对肌肉和肝胰腺组织结构产生明显影响,主要表现为细胞空泡化或自溶,组织细胞间隙变大、解体,且组织结构损伤程度随盐度的上升而加重。
    Abstract: By using method of experimental ecology, we studied the effects of salinity (2, 4, 8, 12, 16) and Na+/K+ (27, 50, 75, 100, 125 and 150) ratio on 72 h survival rate, hepatopancreas and muscle structure of Litopenaeus vannamei juveniles with body mass of (1.35 ± 0.37) g under experimental condition. The results show that survival rate of L. vannamei decreased with increasing salinity when the Na+/K+ ratio was above 75. In addition, when the water salinity was over 8, the survival rate increased with decreasing Na+/K+ ratio. The survival rate of L. vannamei was above 66.67% when the Na+/K+ ratio was 27−75. When the Na+/K+ ratio was 100, the half lethal time (LT50) of L. vannamei was 69.78 and 60.15 h at salinity of 12 and 16, respectively. When the Na+/K+ ratio was 125, the LT50 at salinity of 8, 12 and 16 was 76.23, 62.61 and 49.10 h, respectively. When the Na+/K+ ratio was 150, the LT50 at salinity of 4, 8, 12 and 16 was 87.24, 68.65, 59.4 and 39.95 h, respectively. Based on the two-factor variance analysis, the 72 h survival rate of L. vannamei was significantly influenced by salinity, Na+/K+ ratio and their interactions (P<0.001). Histopathology observation reveals that high Na+/K+ ratio can cause abnormal histological change in shrimp muscle and hepatopancreas, such as cell vacuolation or autolysis, larger intercellular space, fuzzy and disordered boundary between tissues. In general, potassium deficiency can aggravate the tissue injury of L. vannamei with higher salinity.
  • 海洋双壳类贝壳的颜色过去仅被作为分泌产物而一直被忽视。事实上双壳类贝壳的颜色不仅与它们的生态和行为有关,还与其生长、存活等性状有关[1-9]。目前,对贝类壳色多态现象的研究有一些相关报道[10-11],但对于不同壳色贝类间的杂交研究很少。INNES和HALEV[12]通过单体杂交,研究了贻贝(Mytilus edulis)壳色多态的可遗传性,发现少见的棕壳色个体受一对显性等位基因控制,而常见的黑壳色个体受另外一对等位基因控制,并且认为壳色主要受基因决定,环境只是起到影响作用;NEWKIRK[13]通过杂交,研究了贻贝壳色的可遗传性,确认贻贝的壳色的确是由简单的遗传基因决定的,这与INNES和HALEV的观点一致,且杂交后代表现出一定的杂种优势。TAKI[14]报道了菲律宾蛤仔(Ruditapes philippinarum)壳面花纹的变异现象及左右壳花纹的不对称性;PEIGNON等[15]通过相同壳色蛤仔的近缘杂交,分析了菲律宾蛤仔壳色的决定机制,并主要研究了壳色、壳面花纹的遗传变异和出现壳色纯合的原理。闫喜武等[16-18]发现,不同壳色蛤仔生长存在显著差异,壳色可以稳定的遗传给后代,并通过“海洋红(ocean red,R)”与“斑马蛤(zebra,Z)”的群体杂交,获得子一代“红斑马(red zebra,RZ)”。菲律宾蛤仔壳型变化很大,壳面颜色和花纹变化各异[19],这为不同壳色蛤仔间的杂交奠定了基础。此试验利用F1代海洋红、斑马蛤为材料,开展了品系间的群体杂交,旨在评价F2代杂种优势,为种质改良,培育壳色新品系及杂种优势利用提供理论依据。

    亲贝为2006年10月繁育的苗种,在大连海量水产食品有限公司生态虾池中养成。通过定期检测其性腺发育程度,将处于临产状态的F1代海洋红、斑马蛤各100个作为繁殖群体。

    2007年10月初,将临产状态的亲贝阴干12 h,4 h后亲贝开始产卵排精,将正在产卵排精的个体取出,用自来水冲洗干净,单独放到盛有新鲜海水的2.0 L红色塑料桶中继续产卵排精。分别选取海洋红、斑马蛤雌雄各25个,收集的精卵分别单独放置,采用双列杂交法,建立RR和ZZ 2个自交组,RZ和ZR 2个正反交组,共4个试验组(表 1)。受精前检查卵子是否已经受精,已受精个体的卵子弃掉,换取未受精的个体进行杂交,将获得的精卵按照表 1组合受精,在事先处理好的100 L白色塑料桶中迅速混合,搅拌均匀,调整密度10~12 ind · L-1,充气孵化。在水温20.8~21.6℃,盐度为25,pH 7.96的条件下,大约经过25 h,发育至D形幼虫。整个操作过程中,各试验组严格隔离,防止混杂。

    表  1  2种壳色品系蛤仔群体杂交的试验设计
    Table  1  The design of double-hybrids for two shell color strains on clam
    亲本
    parents
    海洋红
    ocean red(R,♂)
    斑马蛤
    zebra(Z,♂)
    海洋红
    ocean red(R,♀)
    RR RZ
    斑马蛤
    zebra(Z,♀)
    ZR ZZ
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    幼虫在100 L的白塑料桶中培育,密度为3~4 ind · mL-1,各试验组分别设3个重复。每2天换1次水,换水量为100%。饵料每天投喂2次,前期为绿色巴夫藻(Pavloca viridis),后期为绿色巴夫藻和小球藻(Chlorella vulgaris) (1 : 1)混合投喂,投饵量视幼虫摄食情况而定。为防止不同试验组幼虫之间混杂,换水网箱单独使用。幼虫培育期间,水温为18.2~20.6℃,盐度为25~28,pH 7.96~8.04。为了消除培育密度的影响,在幼虫期定期对密度进行调整,使每个重复密度保持一致。幼虫变态后,稚贝培育水温为16.4~18.2℃,投饵量随着稚贝摄食量增大而增加,其它管理同幼虫培育。

    参照CRUZ和IBARRA[20]与郑怀平[21]使用的方法,用下面公式计算杂种优势(heterosis,H):

    $$ H(\%)=\frac{(\mathrm{RZ}+\mathrm{ZR})-(\mathrm{RR}+\mathrm{ZZ})}{\mathrm{RR}+\mathrm{ZZ}} \times 100 $$ (1)
    $$ H_{\mathrm{RZ}}(\%)=\frac{\mathrm{RZ}-\mathrm{RR}}{\mathrm{RR}} \times 100 $$ (2)
    $$ H_{\mathrm{ZR}}(\%)=\frac{\mathrm{ZR}-\mathrm{ZZ}}{\mathrm{ZZ}} \times 100 $$ (3)

    式中RR、RZ、ZR和ZZ表示各试验组的F2在同一日龄的表型值(生长、存活)。公式(1)表示双列杂交的杂种优势;公式(2)和(3)分别表示双列杂交中正、反交组的杂种优势。

    用SPSS 13.0统计软件对数据进行分析处理,差异显著性设置为P<0.05。

    表 2所示,海洋红与斑马蛤亲贝的壳长、重量及产卵量差异显著(P<0.05)。壳色表现见图 1图 2。海洋红经过一代的纯化,背景颜色全部为红色;斑马蛤的壳面花纹均为斑马条纹,且纹路间距一致。

    表  2  海洋红与斑马蛤亲贝形态及产卵量
    Table  2  Shell length, weight and fecundity of ocean red, and zebra strains  Mean±SD
    类别
    items
    海洋红
    ocean red(R)
    斑马蛤
    zebra(Z)
    壳长/mm
    shell length
    17.12a±0.79 14.76b±1.30
    重量/g·ind-1
    weight
    0.85a±0.11 0.55b±0.14
    产卵量/×103·ind-1
    fecundity
    45a 36b
    注:同行有相同字母表示没有显著性差异(P>0.05)
    Notes:The same letters in each line mean no significant difference (P>0.05).
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    图  1  海洋红F1
    Fig. 1  Ocean red strain F1
    图  2  斑马蛤F1
    Fig. 2  Zebra strain F1

    表 3所示,2个壳色品系的卵径无显著差异(P>0.05);自交组与杂交组间的受精率近乎100%,无显著差异(P>0.05),但杂交组RZ和ZR的孵化率显著高于相应对照组(P<0.05);D形幼虫大小各试验组间无显著差异(P>0.05)。

    表  3  菲律宾蛤仔各试验组卵径、受精率、孵化率、D形幼虫大小比较
    Table  3  Comparison of egg-diameter, fertilized rate, hatching rate, size of D larvae of each experimental groups  Mean±SD
    试验组
    experiment groups
    测定指标measuring iterms
    卵径/μm
    egg-diameter
    受精率/%
    fertilized rate
    孵化率/%
    hatching rate
    D形幼虫/μm
    the size of D larvae
    RR 70.23a±0.56 99.96a±0.28 85.67a±5.27 100.15a±1.20
    RZ 70.23a±0.56 99.82a±0.32 90.28b±4.65 100.09a±1.11
    ZR 70.08a±0.63 99.67a±0.19 92.95b±3.88 100.28a±1.05
    ZZ 70.08a±0.63 99.89a±0.25 80.54a±6.15 100.32a±1.94
    注:同一列中上标具有相同字母表示差异不显著(P>0.05),下同
    Notes:The same letters in each column mean no significant difference (P>0.05), the same below.
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    各试验组幼虫在3、6、9日龄的平均壳长、生长速度和杂种优势见表 4。浮游期间,幼虫生长尚未表现出明显的生长优势和母本效应。0~3日龄,各试验组幼虫大小无显著差异,杂种优势值为0,6~9日龄,杂交组RZ和ZR的幼虫大小显著大于相应对照组(P<0.05),其生长的杂种优势分别为(1.63±0.81)%和(2.58±0.67)%。RZ和ZR的生长速度分别为(8.64±0.32)和(8.67±0.31)μm · d-1,显著高于对照组,杂种优势分别为5.10%和4.96%。

    表  4  浮游期各试验组幼虫的平均壳长、生长速度和杂种优势
    Table  4  Mean shell length, growth rate and heterosis of larvae for experiment groups during the pelagic period  Mean±SD
    试验组
    experiment groups
    幼虫日龄/d age of larvae 生长速度/μm·d-1
    growth rate
    3 6 9
    平均壳长/μm
    average shell
    length
    RR 130.17a±2.45 155.67a±4.87 174.00a±3.57 8.22a±0.40
    RZ 130.00a±3.22 157.33b±5.68 177.83b±2.84 8.64b±0.32
    ZR 130.33a±2.25 158.00b±3.85 178.00b±2.82 8.67b±0.31
    ZZ 130.83a±2.65 153.33a±4.22 174.33a±3.88 8.26a±0.43
    杂种优势/%
    heterosis
    H 0 1.40 2.15 5.04
    HRZ 0 1.06 2.20 5.10
    HZR 0 3.05 2.10 4.96
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    4个试验组幼虫在3、6、9日龄的存活及杂种优势见表 5。将D形幼虫的存活率定义为100%,3~9日龄期间,幼虫的存活率均在60%以上,RZ和ZR存活率显著高于相应的对照组(P<0.05),其杂种优势平均值分别为(10.30±1.92)%和(16.30±1.04)%。

    表  5  浮游期各试验组幼虫的存活率和杂种优势
    Table  5  Survival rate and heterosis of larvae for experiment groups during the pelagic period  Mean±SD; %
    试验组
    experiment groups
    幼虫日龄/d age of larvae
    3 6 9
    存活率
    survival rate
    RR 65.52a±3.47 63.50a±4.18 60.35a±2.22
    RZ 72.66b±2.27 68.68b±3.92 67.50b±1.57
    ZR 80.62b±2.34 72.30b±2.22 70.57b±1.93
    ZZ 69.69a±2.86 62.47a±2.74 60.04a±2.34
    杂种优势
    heterosis
    H 13.36 11.92 14.69
    HRZ 10.90 8.15 11.84
    HZR 15.68 15.73 17.50
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    各试验组稚贝的平均壳长、生长速度和杂种优势见表 6。室内培育期间,稚贝表现出明显的生长优势。24~40日龄,RZ和ZR的生长优势平均值分别为(11.25±2.98)%和(20.31±2.10)%;RZ和ZR的生长速度分别为(9.88±1.45)和(10.79±1.32)μm · d-1,其杂种优势为25.86%和30.16%,显著高于对照组(P<0.05)。

    表  6  室内培育期各试验组稚贝的平均壳长、生长速度和杂种优势
    Table  6  Mean shell length, growth rate and heterosis of juvenile for experiment during the indoor period  Mean±SD
    试验组
    experiment groups
    稚贝日龄/d age of juvenile 生长速度/μm·d-1
    growth rate
    平均壳长/μm
    mean shell length
    RR 246.33a±17.12 340.08a±25.23 372.00a±45.14 7.85a±1.41
    RZ 266.33b±18.85 379.46b±27.52 424.33b±46.36 9.88b±1.45
    ZR 296.00ab±28.84 415.07ab±40.41 468.67ab±42.08 10.79ab±1.32
    ZZ 249.33a±12.02 347.23a±26.90 382.00a±46.94 8.29a±2.93
    杂种优势/%
    heterosis
    H 13.45 15.60 18.44 28.07
    HRZ 8.12 11.58 14.06 25.86
    HZR 18.72 19.53 22.69 30.16
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    各试验组稚贝的存活率和杂种优势见表 7。将刚刚完成变态的稚贝存活率定义为100%,此时的存活优势值为0。24~40日龄,RZT ZR稚贝表现出较高的存活率,约90%左右,显著高于相应对照组(P<0.05);其存活优势平均值分别为(40.85±9.90)%和(57.08±11.98)%,且ZR>RZ。

    表  7  室内培育期各试验组稚贝的存活率和杂种优势
    Table  7  Survival rate and heterosis of juvenile for experiment groups during the indoor period  Mean±SD; %
    试验组
    experiment groups
    稚贝日龄/d age of juvenile
    存活率
    survival rate
    RR 75.55a±4.21 68.48a±3.27 60.44a±3.37
    RZ 99.29b±4.45 95.85b±4.87 91.37b±4.40
    ZR 90.48b±2.76 90.06b±3.51 89.58b±2.72
    ZZ 62.30a±2.52 57.42a±2.82 52.95a±2.15
    杂种优势
    heterosis
    H 37.66 47.66 52.95
    HRZ 31.42 39.97 51.17
    HZR 45.23 56.84 69.18
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    杂种优势是一种复杂的生物学现象,亲本间的遗传差异无疑是重要的原因之一,如果2个基础群体的基因频率不同,那么它们之间的杂交有可能表现出杂种优势。当一个种的不同群体能够用来进行人工杂交时,必须评估2个群体间是否有足够的差异[21]。菲律宾蛤仔由于壳色和壳面花纹各异,曾经被分类学家定义为许多不同的种[19]。闫喜武等[16-17]发现,菲律宾蛤仔存在壳色多态现象,在天然群体中,斑马蛤仅占0.20%~0.25%,海洋红占0.4%~0.43%。如此稀少的种群密度却能保存下来,且很少与其它壳色和壳面花纹的蛤仔发生自然杂交,说明它们有很强的抗逆性和生存能力,这种抗逆性和生存能力或许与不同壳色和壳面花纹蛤仔间遗传差异有关。2003~2006年间对不同壳色菲律宾蛤仔品系生长发育研究结果表明,虽然不同壳色的蛤仔的产卵期相同,但是产卵的时间段不同[18],这可能是其自然杂交很难发生的原因;虽然海洋红和斑马蛤有很强的抗逆性和生存能力,但由于在天然群体中所占比例很低,繁殖时相同壳色蛤仔精卵在水中的密度和受精的机会远低于杂色的菲律宾蛤仔,因此,它们在天然群体中所占比例也不会增大。海洋红与斑马蛤在生长、存活2个性状上存在差异,从生长上看,海洋红>对照组(杂色的菲律宾蛤仔)>斑马蛤,尤其到成体阶段,彼此间个体大小差异极显著;从存活情况上划分,斑马蛤>对照组>海洋红,且彼此间差异显著,这与对天然群体中菲律宾蛤仔调查结果一致。说明海洋红与斑马蛤仔2品系间存在遗传差异,这奠定了壳色间群体杂交的基础。在试验条件相同的情况下,可以排除环境对性状的影响,不同壳色品系间的差异主要来自于遗传差异[22]

    2个或2个以上不同遗传类型的物种、品种、品系或自交系杂交产生的子一代,在生长、生活力、抗病力、产量和质量超过双亲的现象,称为杂种优势[22]。从试验结果上看,杂交使得各杂交组个体在生长、存活表现出不同程度的杂种优势。就生长而言,杂种优势的平均水平在不同阶段表现不同,随着个体发育,生长这一性状在不同壳色之间差异越来越明显,生长优势不断增大,幼虫期(1.78±0.53)%<稚贝期(15.83±2.50)%,这与闫喜武等[16-18]对不同壳色蛤仔生长发育的研究结果一致。对于杂交是否会提高受精率、孵化率,大多学者没有报道,可能是受精率和孵化率的高低不仅反映精、卵质量,也反映精、卵之间的亲和力。精、卵不熟或过熟都会影响受精率和孵化率及以后的发育[23]。由于杂交时精、卵亲和性不同,卵的受精率和孵化率一般不会表现出杂种优势,此试验结果显示,卵的受精率没有表现出杂种优势,但孵化率表现出一定的杂种优势,其原因尚有待进一步探讨。就存活而言,在幼虫期和室内培育期表现出明显的杂种优势,且幼虫期(13.32±1.39)%<稚贝期(46.09±7.76)%。综合生长、存活的杂种优势,正反杂交组的杂种优势大小顺次为ZR>RZ。由于不同壳色蛤仔间存在着一定的遗传差异,这些结果与FALCONER和MACKAY[24]提出的“如果2个基础群体的基因频率不同,那么它们之间的杂交将表现出杂种优势”、“不同群体配对表现出不同的杂种优势大小”等观点相吻合。通过建立正反杂交组合,从中筛选出有效的杂交组,为改良贝类的种质,充分利用杂种优势奠定了基础。

  • 图  1   不同盐度和钠离子/钾离子下凡纳滨对虾幼虾的成活率

    Figure  1.   Survival rate of L. vannamei in artificial seawater at different Na+/K+ ratios and salinities

    图  2   不同盐度和钠离子/钾离子对凡纳滨对虾肝胰腺显微结构的影响 (HE 染色,200×)

    a. 盐度4,钠离子/钾离子 27,示基膜 (BM) 和管腔 (L);b. 盐度4,钠离子/钾离子 150;c. 盐度8,钠离子/钾离子 150,示肝胰腺小管基膜破损;d. 盐度12,钠离子/钾离子 150,示肝胰腺小管管腔变形;e. 盐度12,钠离子/钾离子 125;f. 盐度16,钠离子/钾离子 125,示肝胰腺小管界限模糊。

    Figure  2.   Effects of salinity and Na+/K+ on hepatopancreas microstructure of L. vannamei (HE staining, 200×)

    a. Salinity 4, Na+/K+ 27, showing basement membranes (BM) and lumen (L); b. Salinity 4, Na+/K+ 150; c. Salinity 8, Na+/K+ 150, showing basement membranes of hepatopancreas tubule were ruptured; d. Salinity 12, Na+/K+ 150, showing lumen variant; e. Salinity 12, Na+/K+ 125; f. Salinity 16, Na+/K+ 125, showing the demarcation line of hepatopancreas tubule was blurred.

    图  3   不同盐度和钠离子/钾离子对凡纳滨对虾肌肉显微结构的影响 (HE 染色,200×)

    a. 盐度4,钠离子/钾离子 27;b. 盐度4,钠离子/钾离子 150;c. 盐度8,钠离子/钾离子 150;d. 盐度12,钠离子/钾离子 150;e. 盐度12,钠离子/钾离子 125;f. 盐度16,钠离子/钾离子 125。

    Figure  3.   Effects of salinity and Na+/K+ on muscle microstructure of L. vannamei (HE staining, 200×)

    a. Salinity 4, Na+/K+ 27; b. Salinity 4, Na+/K+ 150; c. Salinity 8, Na+/K+ 150; d. Salinity 12, Na+/K+ 150; e. Salinity 12, Na+/K+ 125; f. Salinity 16, Na+/K+ 125.

    表  1   实验用人工海水的盐度、钠离子与钾离子质量浓度和钠离子/钾离子

    Table  1   Salinity, concentration of Na+, K+ and Na+/K+ ratio of experimental artificial seawater mg·L−1

    盐度
    Salinity
    钠离子/钾离子 Na+/K+
    275075100125150
    2624.97∶23.22643.62∶12.85646.21∶8.62647.51∶6.48648.29∶5.2648.83∶4.32
    41 241.51∶45.781 277.5∶25.551 282.65∶17.11 285.24∶12.871 286.8∶10.291 287.84∶8.59
    82 482.05∶91.942 552.95∶51.042 563.23∶34.172 568.4∶25.692 571.51∶20.582 573.6∶17.16
    123 732.64∶138.463 838.72∶76.773 854.18∶51.383 861.95∶38.633 866.64∶30.933 869.77∶25.8
    164 993.39∶184.155 134.94∶102.725 155.63∶68.675 166.02∶51.675 172.3∶41.375 176.47∶34.52
    注:表中比号前后数值分别为钠离子、钾离子质量浓度。 Note: Data before and after the sign of ratio are concertations of Na+ and K+, respectively.
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    表  2   不同钠离子/钾离子下凡纳滨对虾幼虾半致死时间

    Table  2   Regression equation between half lethal time and salinity of juvenile L. vannamei

    钠离子/钾离子
    Na+/K+
    盐度
    Salinity
    半致死时间
    Half lethal
    time/h
    实测半致死
    时间
    Actual half
    lethal time/h
    75 4
    8
    12
    16 81.83
    100 4
    8
    12 69.78 63
    16 60.15 63
    125 4
    8 76.23
    12 62.61 60
    16 49.10 45
    150 4 87.24
    8 68.65
    12 59.40 60
    16 39.95 39
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    表  3   不同盐度、钠离子/钾离子下凡纳滨对虾成活率

    Table  3   Survival rate of L. vannamei at different salinities and Na+/K+ %

    钠离子/钾离子
    Na+/K+
    盐度 Salinity
    2481216
    27 90±0 93.33±5.77a 83.33±5.77a 86.67±5.77a 80±0a
    50 86.67±5.77 76.67±15.28ab 76.67±5.77ab 83.33±11.55a 76.67±15.28a
    75 83.33±11.55 76.7±15.28ab 80±10ab 73.33±5.77a 66.67±5.78a
    100 83.33±5.77A 86.67±5.77abA 80±10abA 43.33±15.28bB 33.33±5.78bB
    125 83.33±5.77A 83.33±11.55abA 66.67±5.77bcB 43.33±5.78bC 13.33±5.78cD
    150 80±10A 70±10bAB 60±10cB 20±10cC 0
    双因子方差分析结果 Two-way analysis of variance
    盐度 Salinity S (<0.001)
    钠离子/钾离子 Na+/K+ S (<0.001)
    交互 Salinity×Na+/K+ S (<0.001)
    注:同列不同小写字母上标表示差异显著 (P<0.05);同行不同大写字母上标表示差异显著(P<0.05)。 Note: Values with different lowercase superscripts within the same column indicate significant difference (P<0.05); values with different uppercase superscripts within the same row indicate significant difference (P<0.05).
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  • [1] 刘永新, 方辉, 来琦芳, 等. 我国盐碱水渔业现状与发展对策[J]. 中国工程科学, 2016, 18(3): 74-78. doi: 10.3969/j.issn.1009-1742.2016.03.013
    [2] 梁利群, 任波, 常玉梅, 等. 中国内陆咸(盐碱)水资源及渔业综合开发利用[J]. 中国渔业经济, 2013, 31(4): 138-145. doi: 10.3969/j.issn.1009-590X.2013.04.021
    [3] 王芸, 李正, 段亚飞, 等. 红景天提取物对凡纳滨对虾抗氧化系统及抗低盐度胁迫的影响[J]. 南方水产科学, 2018, 14(1): 9-19. doi: 10.3969/j.issn.20950780.2018.01.002
    [4] 农业农村部渔业渔政管理局. 2020中国渔业统计年鉴[M]. 北京: 中国农业出版社, 2020: 21-30.
    [5] 曾凡勇, 罗坤, 栾生, 等. 凡纳滨对虾在氯化物型盐碱水养殖环境下不同家系间生长、存活性能分析[J]. 中国水产科学, 2018, 25(2): 308-315.
    [6] 朱长波, 董双林. 对虾内陆养殖的现状、存在的问题及其展望[J]. 南方水产, 2005, 1(5): 63-69.
    [7] 刘泓宇, 张新节, 谭北平, 等. 饲料钾水平对低盐井水养殖凡纳滨对虾生长及生理特性的影响[J]. 中国水产科学, 2014, 21(2): 320-329.
    [8]

    JESCOVITCH L N, PINE H J, ROY L A, et al. Growth of Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei, cultured on inland low salinity pond soils[J]. N Am J Aquacult, 2018, 80(3): 273-277. doi: 10.1002/naaq.10031

    [9]

    WUDTISIN I, BOYD C E. Possible potassium and magnesium limitations for shrimp survival and production in low-salinity, pond waters in Thailand[J]. J World Aquacult Soc, 2011, 42(6): 766-777. doi: 10.1111/j.1749-7345.2011.00530.x

    [10]

    BOYD C A, BOYD C E, ROUSE D B. Potassium budget for inland, saline water shrimp ponds in Alabama[J]. Aquacult Eng, 2007, 36(1): 45-50. doi: 10.1016/j.aquaeng.2006.06.002

    [11]

    LI E C, WANG X D, CHEN K, et al. Physiological change and nutritional requirement of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei at low salinity[J]. Rev Aquacult, 2017, 9(1): 57-75. doi: 10.1111/raq.12104

    [12]

    ZHU C B, DONG S L, WANG F, et al. Effects of Na/K ratio in seawater on growth and energy budget of juvenile Litopenaeus vannamei[J]. Aquaculture, 2004, 234(1/2/3/4): 485-496.

    [13]

    LIU H Y, TAN B P, YANG J F, et al. Effects of aqueous Na/K and dietary K on growth and physiological characters of the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei, reared in low-salt well water[J]. Aquacult Res, 2016, 47(2): 540-553. doi: 10.1111/are.12513

    [14]

    VALENZUELA-MADRIGAL I E, VALENZUELA-QUIÑÓNEZ W, ESPARZA-LEAL H M, et al. Effects of ionic composition on growth and survival of white shrimp Litopenaeus vannamei culture at low-salinity well water[J]. Rev Biol Mar Oceanog, 2017, 52(1): 103-112. doi: 10.4067/S0718-19572017000100008

    [15]

    PATHAK M S, REDDY A K, KULKAMI M V, et al. Histological alterations in the hepatopancreas and growth performance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei, Boone 1931) reared in potassium fortified inland saline ground water[J]. Int J Curr Microbiol App Sci, 2018, 7(4): 3531-3542. doi: 10.20546/ijcmas.2018.704.398

    [16] 刘存歧, 王军霞, 张亚娟, 等. 盐碱地渗水盐度与钠钾比对凡纳滨对虾生长的影响[J]. 应用生态学报, 2008, 19(6): 1337-1342.
    [17]

    ZHU C B, DONG S L, WANG F. The interaction of salinity and Na/K ratio in seawater on growth, nutrient retention and food conversion of juvenile Litopenaeus vannamei[J]. J Shellfish Res, 2007, 25(1): 107-112.

    [18] 魏杰, 曹希全, 任永丽, 等. 宽口裂腹鱼消化系统解剖和组织学观察[J]. 南方水产科学, 2020, 16(1): 120-126. doi: 10.12131/20180262
    [19]

    HONKANEN J O, REES C B, KUKKONEN J V K, et al. Temperature determines the rate at which retene affects trout embryos, not the concentration that is toxic[J]. Aquat Toxicol, 2020, 222: 105471. doi: 10.1016/j.aquatox.2020.105471

    [20]

    RAMIREZA J L, MUTURIA E J, BARLETTA A B F, et al. The Aedes aegypti IMD pathway is a critical component of the mosquito antifungal immune response[J]. Dev Comp Immunol, 2019, 95: 1-9. doi: 10.1016/j.dci.2018.12.010

    [21] 王倩, 刘利平, 陈文银, 等. 钠、钾离子浓度及比例对鳗鲡早期发育的影响[J]. 上海海洋大学学报, 2015, 24(6): 834-840. doi: 10.12024/jsou.20150301370
    [22]

    PILLARD D A, DUFRESNE D L, CAUDLE D D, et al. Predicting the toxicity of major ions in seawater to mysid shrimp (Mysidopsis bahia), sheepshead minnow (Cyprinodon variegatus), and inland silverside minnow (Menidia beryllina)[J]. Environ Toxicol Chem, 2000, 19(1): 183-191. doi: 10.1002/etc.5620190122

    [23]

    FORSBERG, J A, DORSETT P W, NEILL W H. Survival and growth of red drum Sciaenops ocellatus in saline groundwaters of West Texas[J]. J World Aquacult Soc, 1996, 27(4): 462-474. doi: 10.1111/j.1749-7345.1996.tb00631.x

    [24]

    PRANGNELL D I, FOTEDAR R. Effect of sudden salinity change on Penaeus latisulcatus Kishinouye osmoregulation, ionoregulation and condition in inland saline water and potassium-fortified inland saline water[J]. Comp Biochem Phys A, 2006, 145(4): 449-457. doi: 10.1016/j.cbpa.2006.08.029

    [25]

    ROY L A, DAVOS D A, SAOID I P, et al. Effects of varying levels of aqueous potassium and magnesium on survival, growth, and respiration of the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei, reared in low salinity waters[J]. Aquaculture, 2007, 262(2/3/4): 461-469.

    [26]

    PEREZ-VELAZQUEZ M, DAVIS D A, ROY L A, et al. Effects of water temperature and Na+: K+ ratio on physiological and production parameters of Litopenaeus vannamei reared in low salinity water[J]. Aquaculture, 2012, 342/343(1): 13-17.

    [27] 刘慧玲, 陈荣, 王成桂, 等. 不同盐度条件下氨氮和亚硝酸盐对墨吉明对虾的急性毒性试验[J]. 江苏农业科学, 2019, 47(1): 155-158.
    [28]

    LIN Y C, CHEN J C. Acute toxicity of ammonia on Litopenaeus vannamei Boone juveniles at different salinity levels[J]. J Exp Mar Biol Ecol, 2001, 259(1): 109-119. doi: 10.1016/S0022-0981(01)00227-1

    [29]

    LIN Y C, CHEN J C. Acute toxicity of nitrite on Litopenaeus vannamei (Boone) juveniles at different salinity levels[J]. Aquaculture, 2003, 224(1/2/3/4): 193-201.

    [30]

    PARTRIDGE G J, LYMBERY A J. The effect of salinity on the requirement for potassium by barramundi (Lates calcarifer) in saline groundwater[J]. Aquaculture, 2008, 278(1/2/3/4): 164-170.

    [31]

    TANTULO U, FOTEDAR R. Osmo and ionic regulation of black tiger prawn (Penaeus monodon Fabricius 1798) juveniles exposed to K+ deficient inland saline water at different salinities[J]. Comp Biochem Phys A, 2007, 146(2): 208-214. doi: 10.1016/j.cbpa.2006.10.020

    [32] 赵光远, 王荃. 高钾血症和低钾血症危象[J]. 中国小儿急救医学, 2020, 27(8): 572-576. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4912.2020.08.003
    [33]

    KNOCHEL J P, SCHLEIN E M. On the mechanism of rhabdomyolysis in potassium depletion[J]. J Clin Invest, 1972, 51(7): 1750-1758. doi: 10.1172/JCI106976

    [34] 陆敏, 徐荣, 王迎春. 高频超声心动图观察低血钾对兔心脏结构及功能的影响[J]. 实验动物与比较医学, 2010, 30(6): 424-427. doi: 10.3969/j.issn.1674-5817.2010.06.007
    [35] 杨明, 孙盛明, 傅洪拓, 等. 低氧和复氧对日本沼虾抗氧化酶活力及组织结构的影响[J]. 中国水产科学, 2019, 26(3): 493-503.
    [36] 陶易凡, 强俊, 王辉, 等. 低pH胁迫对克氏原螯虾鳃和肝胰腺酶活力及组织结构的影响[J]. 中国水产科学, 2016, 23(6): 1279-1289.
    [37] 梁忠秀, 李健, 李吉涛, 等. 塔玛亚历山大藻毒素及其对中国对虾的急性毒性[J]. 中国水产科学, 2014, 21(6): 1260-1267.
  • 期刊类型引用(8)

    1. 欧利国,蓝振峰,刘必林,陈新军,陈勇. 基于计算机视觉的鱼类形态轮廓特征自动提取. 水产学报. 2024(12): 63-73 . 百度学术
    2. 李伟畅,朱国平,王雪辉,林龙山,李渊,杜飞雁. 南海中南部金带细鲹与长体圆鲹矢耳石外型比较分析. 生物学杂志. 2023(05): 54-60 . 百度学术
    3. 庄文鑫,吴荔生,刘巧红,柳淑芳,丁少雄. 基于地标点法的3种眶灯鱼耳石形态种间差异性. 海洋学报. 2023(09): 119-127 . 百度学术
    4. 欧利国,顾心雨,王冰妍,刘必林. 6种大型海洋掠食性鱼类胃含物角质颚分类研究. 渔业科学进展. 2022(04): 105-115 . 百度学术
    5. 欧利国,力清影,刘必林. 中国南海东沙群岛海域7种鲹科鱼类矢耳石形态特征. 上海海洋大学学报. 2021(01): 155-162 . 百度学术
    6. 刘梦娜,王雪辉,刘玉,邱永松,何映霖,贝伟烈,朱江峰,杜飞雁. 汕头—台湾浅滩渔场中国枪乌贼形态学初步分析. 应用海洋学学报. 2021(02): 208-219 . 百度学术
    7. 欧利国,王冰妍,刘必林,陈新军,陈勇,吴峰,刘攀. 基于计算机视觉的3种金枪鱼属鱼类形态指标自动测量研究. 海洋学报. 2021(11): 105-115 . 百度学术
    8. 欧利国,刘必林. 基于地标点法的4种鲹科鱼类矢耳石形态分类. 大连海洋大学学报. 2020(01): 114-120 . 百度学术

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出版历程
  • 收稿日期:  2021-01-07
  • 修回日期:  2021-04-01
  • 录用日期:  2021-04-27
  • 网络出版日期:  2021-07-14
  • 刊出日期:  2021-09-29

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