Analysis of feeding habits of cultured jellyfish (Rhopilema esculentum) in Tongzhou Bay based on fatty acid and stable carbon and nitrogen isotopic analysis
-
摘要:
海蜇 (Rhopilema esculentum) 是大型浮游动物，在海洋生态系统能量流动环节中起重要作用。文章采用脂肪酸生物标记法和碳、氮稳定同位素技术研究了通州湾养殖水域海蜇的食性及营养级。结果显示，对通州湾养殖水域海蜇共检测出29种脂肪酸，其中饱和脂肪酸 (Saturated fatty acid, SFA) 10种，单不饱和脂肪酸 (Monounsaturated fatty acids, MUFA) 8种，多不饱和脂肪酸 (Polyunsaturated fatty acids, PUFA) 11种。基于特征脂肪酸的食性分析，硅藻、陆源植物、植食性桡足类以及底栖生物是通州湾养殖水域海蜇的主要食物来源，海蜇对浮游细菌也存在摄食，具有杂食性。海蜇的二十二碳六烯酸 (DHA) 与二十碳五烯酸 (EPA) 的比值为0.78<1，这说明海蜇的营养级较低。海蜇的碳稳定同位素 (δ13C) 介于−23.54‰~−20.75‰，平均值为 (−22.26±0.66)‰；氮稳定同位素 (δ15N) 介于8.39‰~9.85‰，平均值为 (9.02±0.29)‰。经检验发现，海蜇伞径长与δ13C和δ15N的相关性并不显著 (P>0.05)，说明随着成体海蜇的生长，其营养级未发生明显变化。
Abstract:Jellyfish (Rhopilema esculentum), as a large zooplankton, plays an essential role in the energy flow of marine ecosystems. In this study, we applied the fatty acid biomarker method and carbon and nitrogen stable isotope technique to investigate the diet and trophic level of cultured jellyfish in Tongzhou Bay. The results show that there were 29 kinds of fatty acids in jellyfish, including 10 kinds of saturated fatty acids (SFA), 8 kinds of monounsaturated fatty acids (MUFA) and 11 kinds of polyunsaturated fatty acids (PUFA). The specific fatty acid analysis reveals that diatoms, terrestrial plants, herbivorous copepods and benthos dominated in the diet of cultured jellyfish in Tongzhou Bay, followed by planktonic bacteria. Besides, the DHA/EPA value was 0.78<1, which indicates that jellyfish had a lower trophic level. The δ13C value ranged from −23.54‰ to −20.75‰, with an average value of (−22.26±0.66)‰.The range of δ15N was 8.39‰−9.85‰ with an average value of (9.02±0.29)‰. No significant correlation is detected between the diameter of jellyfish and δ13C and δ15N (P>0.05), showing that there is no significant change in the trophic level along with the growth of adult jellyfish.
-
中间球海胆 (Strongylocentrotus intermedius) 是中国北方主要海胆养殖种类之一。随着高密度海水养殖模式的不断推进，细菌性疾病频发严重制约了其养殖产业的发展[1]。红斑病作为海胆养殖过程中最常见的细菌性疾病之一，具有发病速度快、传染性强、致死率高等特点[2-3]。临床症状表现为体表出现红色斑点及活动能力下降，严重者斑块处破溃，体腔内液从破口流出。其主要致病菌为弧菌属 (Vibrio) 菌株，如溶珊瑚弧菌 (V. coralliilyticus)[4]、灿烂弧菌 (V. splendidus)[5]、锡那罗州弧菌 (V. sinaloensis)[6]等。
肠道微生物群落参与了机体代谢、免疫应答、营养吸收及疾病防御等生理功能，与宿主健康紧密相关[7]。近年来，越来越多的研究聚焦于肠道菌群与机体患病之间的关系，证实了肠道菌群在疾病发生过程中具有关键作用。已有研究表明，斑马鱼 (Danio rerio) 感染嗜水气单胞菌 (Aeromonas hydrophila) 患病后，肠道菌群失调，可操作分类单元 (Operational taxonomic units, OTUs) 数量明显下降，Alpha多样性显著降低，放线菌门相对丰度显著下降，而不动杆菌属 (Acinetobacter) 明显增加[8]。草鱼 (Ctenopharyngodon idella) 感染嗜水气单胞菌患病后，肠道菌群中厚壁菌门和拟杆菌门的相对丰度增加，而变形菌门的相对丰度降低，有益微生物属如鲸杆菌属 (Cetobacterium)、拟杆菌属 (Bacteroides) 和乳酸杆菌属 (Lactobacillus) 相对丰度增加，而脱醌菌属 (Demequina)、玫瑰单胞菌属 (Roseomonas)、红杆菌属 (Rhodobacter)、发光杆菌属 (Photobacterium) 和纤维弧菌属 (Cellvibrio) 相对丰度减少[9]。对虾 (Penaeus orientalis) 感染十脚类虹彩病毒1 (Decapod iridescent virus 1) 患病后，Shannon和Simpson 指数变化显著 (p<0.05)，肠道内发光杆菌属和弧菌属占主导地位，显著区别于健康对虾的棒杆菌属 (Corynebacterium) 和鲁杰氏菌属 (Ruegeria)[10]。另外，刺参 (Apostichopus japonicus) 患皮肤溃疡综合征后，显示出与健康刺参明显不同的肠道微生物群，厚壁菌门相对丰度升高，隐球菌门相对丰度降低，并且隶属于厚壁菌门的格氏乳球菌 (Lactococcus garvieae) 的OTUs相对丰度显著性增加[11]。本研究基于肠道微生态角度，通过16S rRNA测序技术深入分析患红斑病的中间球海胆肠道菌群结构和功能的特征，以期揭示红斑病发病机制，为其健康增养殖提供理论依据。
1. 材料与方法
1.1 实验材料
实验用中间球海胆 [壳径 (1.5±0.2) cm] 均取自大连海洋大学农业农村部北方海水增养殖重点实验室同批人工繁育群体，挑选5只具有典型红斑病病症的个体和5只健康个体作为实验材料。
1.2 样本处理
无菌环境下，使用无菌剪刀解剖取其肠道内容物样本，迅速放入液氮速冻，置于−80 ℃冰箱内保存，患病和健康中间球海胆肠道样品分别标记为患病组 (ZG) 和健康组 (HG)。
1.3 DNA提取及16S rRNA高通量测序
利用OMEGA E.Z.N.A TMMag-Bind Soil DNA Kit试剂盒提取DNA样本，使用1% (w)琼脂糖凝胶电泳和Nanodrop 2000分光光度计检测DNA的完整性和浓度，确保A260/A280和A260/A230符合质量标准。纯化的DNA在 −20 ℃下保存以防降解。
采用引物338F (5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3) 和806R (5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3') 扩增细菌16S rRNA基因的V3—V4区，使用Pfu高保真DNA聚合酶，严格控制循环条件，优化特异性和效率。PCR产物经Vazyme VAHTSTM DNA Clean Beads纯化回收，并用Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay Kit试剂盒进行荧光定量。
采用Illumina TruSeq Nano DNA LT Library Prep Kit试剂盒制备测序文库，包括末端修复、接头连接和磁珠筛选纯化。通过2% (w)琼脂糖凝胶电泳进行片段选择和纯化。使用Illumina MiSeq PE300平台进行双端测序，测序前用Agilent Bioanalyzer 生物分析仪进行文库质检，使用MiSeq Reagent Kit V3试剂盒(600 cycles) 完成测序反应，获得高质量的测序数据。
1.4 统计学分析
利用QIIME2 (2019.4) 软件计算Chao1指数、Observed species指数、Shannon和Simpson指数，并通过Kruskal-Wallis检验评估指数的显著性。此外，还使用QIIME2 (2019.4) 计算了Jaccard距离、Bray-Curtis距离、unweighted UniFrac距离和weighted UniFrac距离，构建了多样性距离矩阵，分析了样本间的差异和距离，并使用Permutational Multivariate Analysis of Variance (PERMANOVA) 方法进行显著性检验。使用基于Kruskal-Wallis秩和检验与LDA效应量的LefSe分析软件进行微生物差异分析，将LDA Score的筛选值设定为2.0。最后利用HUMAnN2软件对样本微生物群落功能进行预测。
2. 结果
2.1 高通量测序结果
高通量测序结果见表1。健康和患病海胆样品的原始序列数为74 820~90 532条，优化后的有效序列数为66 221~83 123条，其中有效序列占比达90%以上，表明数据真实可靠。
表 1 中间球海胆肠道样品16S rRNA测序结果Table 1. 16S rRNA sequencing results of gut bacterial community in S. intermedius样品
Sample原始序列数
Number of
original sequences有效序列数
Number of
valid sequences有效序列占比
Effective
ratio/%ZG_1 90 532 83 123 91.82 ZG_2 74 820 68 460 91.50 ZG_3 77 709 71 386 91.86 ZG_4 72 610 66 221 91.20 ZG_5 82 318 75 457 91.67 HG_1 75 986 69 356 91.27 HG_2 82 751 76 104 91.98 HG_3 86 256 79 864 92.59 HG_4 84 634 78 123 92.31 HG_5 85 561 78 946 92.27 2.2 菌群多样性分析
2.2.1 Alpha多样性分析
Alpha多样性分析显示，健康组肠道菌群Chao1、Simpson、Shannon和Observed species指数均显著高于患病组 (p<0.05)，表明健康组具有更高的菌群丰富度和多样性 (图1-a)。
![]()
图 1 中间球海胆肠道菌群多样性分析注：a. 肠道菌群Alpha多样性指数；b. 肠道菌群Beta多样性分析；c. 肠道菌群样本OTUs分布韦恩图。HG. 健康组；ZG. 患病组。Figure 1. Diversity analysis of gut bacterial community in S. intermediusNote: a. Alpha index of gut bacterial community; b. Beta diversity analysis of gut bacterial community; c. Venn diagram of gut bacterial community with OTUs. HG. Healthy sea urchins; ZG. Diseased sea urchins.2.2.2 Beta多样性分析
在OTU水平上，基于weighted-Unifrac距离对10个样本进行主坐标分析。结果显示，第一主坐标的贡献率为97.1%，第二主坐标贡献率为1.5%，合计98.6% (图1-b) 。健康组与患病组分布在不同的象限且肠道菌群分离明显，表明红斑病导致中间球海胆肠道菌群发生了明显变化。组内大多聚集在一起，表明生物学重复性较好。
2.2.3 菌群相关性
所有样品共检测出761个OTUs，其中2组共有53个，健康组特有402个，患病组特有306个 (图1-c)。健康组和患病组样品细菌种类分别占总细菌种类的52.30%和40.21%，2组共有细菌种类占总细菌种类的6.96%。结果表明，健康组检测到的细菌种类更加丰富。
2.3 优势菌群分析
在门水平上，变形菌门为不同健康状况下中间球海胆肠道第一优势菌门。与健康组相比，患病组次优势菌门发生了显著性变化，由厚壁菌门演替为拟杆菌门、厚壁菌门、脱硫杆菌门，其相对丰度占比分别为7.70%、4.38%、3.63%。属水平上，健康组肠道群优势菌属主要为变形菌属 (Psychrobacter)，相对丰度占比为54.91%；次优势菌属为微小杆菌属 (Exiguobacterium) 和动性杆菌属 (Planomicrobium)，相对丰度占比分别为29.26%和8.76%。患病组优势菌属组成产生了显著性变化，第一优势菌属Burkholderia_Caballeronia_Paraburkholderia相对丰度占比为45.44%，次优势菌属分别为短波单胞菌属 (Brevundimonas)、弧菌属和假单胞菌属 (Pseudomonas)，相对丰度占比分别为7.17%、4.86%和4.29% (图2)。
![]()
图 2 中间球海胆肠道菌群结构特征Figure 2. Structural characteristics of gut bacterial community in S. intermedius2.4 差异菌群分析
中间球海胆肠道差异菌群分析结果见图3。门水平上，健康组中检测到的特异性菌门主要为厚壁菌门；患病组则以变形菌门、拟杆菌门和脱硫杆菌门等为代表。属水平上，健康组中特异性菌属主要为嗜冷杆菌属 (Bacillus psychrophilus)、微小杆菌属、动性杆菌属、嗜盐嗜碱菌属 (Alkalibacterium)、动球菌属等；患病组中特异性菌属则为Burkh-olderia_Caballeronia_Par-aburkholderia、弧菌属、短波单胞菌属和假单胞菌属等。
![]()
图 3 健康组与患病组中间球海胆肠道菌群LEfSe分析注：a. 进化分支图；b. LDA分析柱状图。Figure 3. LEfSe analysis of gut bacterial community in healthy and diseased groups of S. intermediusNote: a. Evolutionary branching diagram; b. LDA analysis of columnar graph.2.5 菌群功能注释分析
基于KEGG代谢通路数据库注释，共筛选到173条三级代谢通路，选取其中TOP 30差异显著的代谢通路进行分析 (图4)。结果显示，差异代谢通路共聚焦到15条二级代谢通路和4条一级代谢通路。其中，一级代谢通路富集于代谢、遗传信息处理、生物体系统和人类疾病；二级代谢通路则主要富集于翻译、辅酶和维生素代谢以及脂质代谢。
![]()
图 4 中间球海胆肠道菌群KEGG代谢通路注释图Figure 4. KEGG metabolic pathways in gut bacterial community of S. intermedius相较于健康组，患病组肠道菌群三级代谢通路主要表现为肾素-血管紧张素系统 (Renin-angiotensin system, RAS)、霍乱弧菌 (V. cholerae) 感染和蛋白质消化和吸收等丰度的显著提高；RNA转运、叶酸生物合成途径等丰度的显著降低。
3. 讨论
3.1 肠道菌群结构特征分析
肠道微生物在宿主免疫、代谢等生命活动中发挥着重要功能，其生态平衡与宿主健康密切相关[12]。已有研究表明，卵形鲳鲹 (Trachinotus ovatus)[13]、草鱼[14]、线纹海马 (Hippocampus erectus)[15]等水产动物肠道菌群与机体健康间存在显著相关性，在健康状态下，宿主肠道微生物多样性较高，在疾病状态下则通常减少[16]。本研究患病组中间球海胆肠道菌群Simpson和Shannon指数下降，菌群多样性降低，表明肠道菌群与机体健康间具有一定的相关性，疾病的发生对肠道菌群的生态平衡产生了负面影响。
肠道菌群结构特性分析显示，患病组中间球海胆肠道变形菌门和拟杆菌门的相对丰度显著增加，而厚壁菌门的相对丰度显著下降，与Wang等[17]的研究结果一致，表明肠道菌群结构的变化可能与疾病的发生有着密切联系。变形菌门丰度的变化不仅可直接对宿主健康产生影响[18]，同时也是肠道菌群失调的典型表现，是疾病的潜在诊断标准[19]。其种类复杂，在胃肠道中大都为兼性厌氧菌，可产生脂多糖 (Lipopolysaccsharide, LPS) 和刺激性鞭毛蛋白[20]。脂多糖等代谢产物可通过激活Toll样受体 (TLRs) 等信号通路，引起细胞因子合成和释放，促进炎症介质的生成，导致宿主局部或全身的炎症反应[21]，且刺激性鞭毛蛋白与LPS相似[22]。由此推测，患病组中间球海胆肠道菌群变形菌门的增加可能与红斑病的发病机制具有一定的潜在联系，但仍有待进一步研究验证。拟杆菌门的增加与宿主对病原体的免疫反应有关。研究表明，拟杆菌门中的一些菌株能够产生短链脂肪酸，对宿主的能量代谢产生直接影响[23]。同时，它们还具有丰富的遗传和代谢多样性，能够分解多糖和生物大分子，如几丁质、琼脂、DNA等，在碳循环中发挥重要作用[24]。其鞭毛蛋白和代谢产物短链脂肪酸可与细胞受体相互作用，增强宿主免疫反应[25]。由此推测，拟杆菌门可能通过产生短链脂肪酸等方式为海胆提供能量，并通过鞭毛蛋白增强海胆的免疫反应，一定程度上减轻病情，这可能是其丰度上升的因素之一。
属水平上，患病组海胆肠道优势菌群主要以弧菌属为代表。弧菌属作为变形菌门中的一部分，在海洋环境中分布广泛，具有强大的生存能力和适应性[26]。Ben-Yosef等[27]研究表明，弧菌能通过分泌蛋白酶、磷脂酶和溶血素等攻击宿主细胞，损伤动物机体。此外，还可以黏附在海胆病灶体壁处，分泌细胞外酶，使创伤面不断增大，影响机体健康[28]。除弧菌属外，其他菌属如Burkholderia-Caballeronia-Paraburkholderia、短波单胞菌属和假单胞菌属也在患病组中呈现较高丰度。Burkholderia-Caballeronia-Paraburkholderia在宿主体内过度增长或产生毒素时，能够破坏宿主的正常生理机能，导致包括鱼类的水生动物感染肺炎、败血症等疾病[29]。短波单胞菌作为一种条件致病菌，具有多种病原性因子，能在动物体内引起各种感染[30]。假单胞菌属通常不被认为是肠道微生物组的典型成员，其在患病组中的出现可能通过影响肠道菌群的平衡和多样性，导致肠道免疫系统的异常反应，从而引发病害[31]。这些菌属相对丰度的变化与红斑病有着密切的关系，但并不能直接证明它们就是导致海胆患病的原因。肠道菌群结构的变化是疾病发生的结果还是疾病发展过程中的一个环节，仍有待深入探讨。
3.2 肠道菌群功能预测
基于KEGG代谢通路数据库的注释结果，本研究发现患病组海胆肠道菌群的功能特征主要表现为霍乱弧菌感染和肾素-血管紧张素系统的丰度增加，而叶酸生物合成途径和RNA转运等相关通路的丰度减弱。患病组海胆肠道菌群的功能变化可能与病原体入侵、宿主免疫反应调节以及代谢活动调整有关。
霍乱弧菌感染通路的增强表明患病海胆的肠道菌群可能在促进病原体生长和调节宿主免疫反应中发挥作用。该通路包含一系列关键基因及其相应编码的蛋白质，调控弧菌在宿主体内的生长、扩散以及致病过程[32]。弧菌侵入宿主细胞后，可激活一系列特定的信号分子和转录因子，促进宿主细胞内关键基因的表达，导致宿主细胞合成更多对弧菌生存具有积极作用的蛋白质，进而增强弧菌的适应性和生存力[33]。此外，这种生物通路的活化可能会产生毒素，如霍乱毒素，这些毒素能够破坏宿主组织，进而促进病原体的侵染和扩散。因此，在患病组海胆肠道菌群中霍乱弧菌感染通路显著升高，这可能是由于弧菌为了更有效地入侵而采取的一系列调控方式。
RAS在免疫调节方面的作用日益受到关注。RAS的关键组分，如血管紧张素原 (Ang I)、血管紧张素转换酶 (ACE)、血管紧张素II (Ang II) 及其受体，已在免疫细胞中被发现有表达[34]。研究表明，单核细胞向巨噬细胞转化过程中，RAS被明显激活，ACE和ANG II受体表达大幅增加，显著促进了宿主免疫反应[35]，且T细胞也可表达ACEmRNA和ACE活性、激活RAS[36]。本研究中，患红斑病中间球海胆肠道菌群RAS丰度较健康组显著提升，暗示RAS可能通过调节免疫细胞的活化和转化及T细胞的功能，参与抵抗红斑病的侵染。
叶酸生物合成途径的丰度降低可能与宿主免疫状态的改变有关。叶酸是维持免疫细胞功能的重要微量营养素，可影响宿主的免疫状态，帮助抵抗病原体侵袭或减轻炎症反应[37]。叶酸还能刺激中性粒细胞、单核细胞增殖，并激活巨噬细胞，增强宿主对细菌感染的抗性[38]。本研究中，叶酸生物合成途径在患病组中的丰度显著降低，可能与患病组厚壁菌门数量显著下降相关。尽管越来越多的研究表明厚壁菌门中很多种类包括乳酸菌属都具有叶酸合成能力[39]，但目前对患红斑病的中间球海胆肠道菌群叶酸生物合成途径活性变化的研究资料较少，其具体功能与作用还有待进一步研究。这些功能变化为理解红斑病的发病机制提供了新的视角，并为开发新的防治策略提供潜在的靶点。
4. 结论
本研究通过16S rRNA测序技术，探究了患红斑病中间球海胆肠道菌群的功能和特征。结果表明，患病组中间球海胆肠道菌群结构发生了显著性变化，具体表现为菌群多样性降低以及关键菌群相对丰度的改变，这些变化可能与疾病的发生、发展以及病原体的生存和繁殖密切相关。患病组中间球海胆肠道菌群功能上表现出与弧菌生长、扩散和致病相关的生物通路显著增强，这可能为探究弧菌与红斑病间的关系提供了新的线索。同时，叶酸生物合成途径降低和肾素-血管紧张素系统上调，可能是宿主抵抗病害的一种机制，与海胆自身的代谢调整和免疫响应有所关联。上述肠道菌群结构和功能的变化，可能是红斑病发生的结果，也可能是疾病发生的一个重要原因或促进因素。未来的研究应进一步探索肠道菌群变化与中间球海胆健康状态之间的关系，以及如何通过调节肠道菌群来改善其抗病能力，从而促进水产养殖业的可持续发展。
-
表 1 海蜇的脂肪酸组成
Table 1 Fatty acids compositions of R. esculentum
脂肪酸
Fatty acid平均值
Mean/%标准差
Standard
deviation/
%样本数
Sample
size十四酸 C14:0 10.97 4.49 32 十五酸 C15:0 5.90 1.53 32 十六酸 C16:0 101.34 47.35 32 十七酸 C17:0 9.47 2.64 32 十八酸 C18:0 84.46 30.23 32 二十酸 C20:0 5.38 1.13 32 二十一酸 C21:0 3.05 0.16 32 二十二酸 C22:0 4.14 0.16 32 二十三酸 C23:0 3.49 0.14 32 二十四酸 C24:0 3.85 0.17 32 十五碳一烯酸 C15:1 n-5 2.94 0.22 32 十六碳一烯酸 C16:1 n-7 6.29 2.24 32 十七碳一烯酸 C17:1 n-7 3.97 0.89 32 十八碳一烯酸 C18:1 n-9t 3.36 0.38 32 十八碳一烯酸 C18:1 n-9c 12.24 5.52 32 二十碳一烯酸 C20:1 3.56 1.01 32 二十二碳一烯酸 C22:1 n-9 2.19 0.50 32 二十四碳一烯酸 C24:1 n-9 7.78 2.17 32 十八碳二烯酸 C18:2 n-6t 5.56 2.70 32 十八碳二烯酸 C18:2 n-6c 11.21 4.93 32 十八碳三烯酸 C18:3 n-6 3.08 0.34 32 十八碳三烯酸 C18:3 n-3 18.17 1.16 32 二十碳二烯酸 C20:2 3.95 0.21 32 二十碳三烯酸 C20:3 n-6 3.25 0.22 32 二十碳三烯酸 C20:3 n-3 23.82 2.45 32 花生四烯酸 C20:4 n-6 31.51 5.56 32 二十二碳二烯酸 C22:2 n-6 27.64 4.64 32 二十碳五烯酸 C20:5 n-3 (EPA) 70.20 11.70 32 二十二碳六烯酸 C22:6 n-3 (DHA) 54.92 9.39 32 饱和脂肪酸 SFA 232.05 13.23 32 单不饱和脂肪酸 MUFA 42.33 4.49 32 多不饱和脂肪酸 PUFA 253.31 16.16 32 三烯酸 n-3 (Trienoic acid) 167.11 2.16 32 六烯酸 n-6 (Alkene acid) 82.25 5.26 32 
下载: 导出CSV
表 2 海蜇碳、氮稳定同位素比值和碳、氮含量比值
Table 2 Ratio of stable isotope and content of carbon and nitrogen in R. esculentum
伞径
Diameter/mm碳稳定同位素
δ13C/‰氮稳定同位素
δ15N/‰碳氮比
C/N190 −21.67±0.04 9.28±0.26 3.55±0.16 250 −21.45±0.03 9.16±0.17 3.48±0.11 270 −22.61±0.31 8.39±0.03 3.67±0.09 280 −22.66±0.39 8.74±0.11 3.67±0.23 280 −22.15±0.30 8.8±0.21 3.68±0.16 290 −22.37±0.26 9.25±0.05 3.51±0.24 290 −22.13±0.22 8.79±0.01 3.54±0.09 310 −20.75±0.16 9.03±0.17 3.37±0.13 310 −21.90±0.28 9.1±0.09 3.56±0.11 310 −22.42±0.33 8.84±0 3.62±0.16 310 −22.42±0.12 9.36±0.22 3.63±0.03 320 −22.94±0.31 8.74±0.16 3.67±0.06 320 −22.47±0.26 9.85±0.17 3.71±0.03 320 −22.73±0.37 8.97±0.13 3.76±0.11 320 −23.11±0.09 9.31±0.12 3.79±0.21 340 −21.77±0.56 8.89±0.13 3.49±0.04 340 −23.11±0.19 8.72±0.06 3.84±0.08 350 −21.63±0.61 9.27±0.09 3.47±0.11 350 −22.79±0.27 9.07±0.21 3.70±0.16 360 −21.47±0.19 9.04±0.01 3.46±0.06 360 −23.48±0.45 8.95±0.06 3.86±0.06 370 −21.69±0.55 9.01±0.06 3.40±0.04 370 −21.86±0.41 9.15±0.03 3.47±0.12 370 −22.13±0.23 8.59±0.16 3.50±0.31 370 −23.54±0.34 9.29±0.14 3.94±0.29 380 −21.67±0.19 9.48±0.18 3.43±0.34 400 −21.87±0.55 8.9±0.06 3.55±0.18 400 −22.60±0.58 8.89±0.03 3.63±0.06 400 −22.80±0.31 8.84±0.05 3.74±0.04 430 −21.61±0.29 8.87±0.14 3.37±0.17
下载: 导出CSV
-
[1] 刘顶海, 张继红, 陈四清, 等. 海蜇浮游幼体形态特征和生长规律的研究[J]. 渔业科学进展, 2011, 32(3): 51-56. doi: 10.3969/j.issn.1000-7075.2011.03.008 [2] 梁爽. 不同处理方式对海蜇即食产品品质影响的研究[D]. 大连: 大连工业大学, 2015: 10-15. [3] 刘玉明, 何颖, 沈先荣. 海蜇化学成分及其药理活性研究进展[J]. 中国海洋药物, 2017, 36(5): 93-98. [4] 郑永军, 杜国丰, 刘辰锶, 等. 海蜇胶原蛋白保湿霜的研制[J]. 山东化工, 2017, 46(24): 15-18. doi: 10.3969/j.issn.1008-021X.2017.24.006 [5] 刘顶海. 海蜇 (Rhopilema Esculenta) 幼体发育、苗种培育及生长规律的研究[D]. 上海: 上海海洋大学, 2011: 35. [6] 李云峰, 李玉龙, 周遵春, 等. 我国北方地区海蜇池塘养殖技术研究进展[J]. 水产科学, 2020, 39(2): 286-291. [7] 张敏, 陆德祥. 南通地区海蜇养殖技术[J]. 河北渔业, 2015(12): 44-47. doi: 10.3969/j.issn.1004-6755.2015.12.015 [8] ATKINSON A, SNŸDER R. Krill-copepod interactions at South Georgia, Antarctica. I. Omnivory by Euphausia superba[J]. Mar Ecol Prog Ser, 1997, 160: 63-76.
[9] PERISSINOTTO R, PAKHOMOV E, MCQUAID C, et al. In situ grazing rates and daily ration of antarctic krill Euphausia superba feeding on phytoplankton at the antarctic polar front and the marginal ice zone[J]. Mar Ecol Prog Ser, 1997, 160: 77-91.
[10] 金鑫. 黄东海浮游食物网的初步研究[D]. 青岛: 中国科学院研究生院(海洋研究所), 2011: 13-25. [11] 崔莹. 基于稳定同位素和脂肪酸组成的中国近海生态系统物质流动研究[D]. 上海: 华东师范大学, 2012: 17-26. [12] 李志刚. 海蜇、对虾和缢蛏池塘立体生态养殖技术要点[J]. 河北渔业, 2019(9): 25-26. [13] 王摆, 田甲申, 董颖, 等. 海蜇−对虾−缢蛏−牙鲆综合养殖池塘的食物网分析[J]. 水产科学, 2019, 38(3): 327-332. [14] 王国善, 于志刚, 米铁柱, 等. 环境因子对海蜇生长发育影响的研究进展[J]. 海洋科学, 2014, 38(1): 85-90. doi: 10.11759/hykx20140114 [15] 郝振林, 郑斌, 李强, 等. 环境条件对海蜇生长发育影响的研究进展[J]. 大连海洋大学学报, 2015, 30(4): 444-448. [16] 乔英, 于守鹏, 张刚, 等. 海蜇苗种的中间培育技术[J]. 科学养鱼, 2019(8): 61-62. [17] 徐梦雪, 朱赟杰, 倪建忠, 等. 海蜇人工育苗试验[J]. 科学养鱼, 2017(10): 47-48. [18] 金鑫, 李超伦, 刘梦坛. 基于脂肪酸标记法和碳氮稳定同位素比值法的东海水母常见种的食性分析[J]. 海洋与湖沼, 2012, 43(3): 486-493. doi: 10.11693/hyhz201203013013 [19] BREIL C, ABERT VIAN M, ZEMB T, et al. "Bligh and Dyer" and folch methods for solid-liquid-liquid extraction of lipids from microorganisms. Comprehension of solvatation mechanisms and towards substitution with alternative solvents[J]. Int J Mol Sci, 2017, 18(4): 708. doi: 10.3390/ijms18040708
[20] 杨清源, 王少琴, 朱国平, 等. 西南大西洋拉氏南美南极鱼脂肪酸组成及其食性研究[J]. 大连海洋大学学报, 2016, 32(1): 86-92. [21] 王少琴, 杨清源, 朱国平, 等. 西南大西洋春夏季阿根廷无须鳕脂肪酸组分的时空特性[J]. 生态学杂志, 2018, 37(7): 2067-2075. [22] MILISENDA G, ROSSI S, VIZZINI S, et al. Seasonal variability of diet and trophic level of the gelatinous predator Pelagia noctiluca (Scyphozoa)[J]. Sci Rep, 2018, 8(1): 12140. doi: 10.1038/s41598-018-30474-x
[23] PITT K, CONNOLLY R, MEZIANE T. Stable isotope and fatty acid tracers in energy and nutrient studies of jellyfish: a review[J]. Hydrobiologia, 2008, 616(1): 119-132.
[24] 李培军, 谭克非, 叶昌臣. 辽东湾海蜇生长的研究[J]. 水产学报, 1988, 12(3): 243-250. [25] 郑斌. 养殖环境对海蜇产量影响及海蜇不同阶段营养成分分析[D]. 大连: 大连海洋大学, 2016: 8-17. [26] 刘希光, 于华华, 赵增芹, 等. 海蜇不同部位脂肪酸的组成研究[J]. 分析化学, 2004(12): 1635-1638. doi: 10.3321/j.issn:0253-3820.2004.12.017 [27] ALFARO A C. Diet of Littoraria scabra, while vertically migrating on mangrove trees: gut content, fatty acid, and stable isotope analyses[J]. Estuar Coast Shelf Sci, 2008, 79(4): 718-726. doi: 10.1016/j.ecss.2008.06.016
[28] EVERY S L, PETHYBRIDGE H R, CROOK D A, et al. Comparison of fin and muscle tissues for analysis of signature fatty acids in tropical euryhaline sharks[J]. J Exp Mar Biol Ecol, 2016, 479: 46-53. doi: 10.1016/j.jembe.2016.02.011
[29] AMIN S A, PARKER M S, ARMBRUST E V. Interactions between diatoms and bacteria[J]. Microbiol Mol Biol Rev, 2012, 76(3): 667-684. doi: 10.1128/MMBR.00007-12
[30] GLADYSHEV M I, SUSHCHIK N N, MAKHUTOVA O N. Production of EPA and DHA in auatic ecosystems and their transfer to the land[J]. Prostag Oth Lipid M, 2013, 107: 117-126.
[31] 谢斌, 李云凯, 张虎, 等. 基于稳定同位素技术的海州湾海洋牧场食物网基础及营养结构的季节性变化[J]. 应用生态学报, 2017, 28(7): 2292-2298. [32] SARGENT J R, FALKPETERSEN S. The lipid biochemistry of calanoid copepods[J]. Hydrobiologia, 1988, 167(1): 101-114.
[33] 朱小艳. 基于生物标记法的南设得兰群岛水域南极磷虾摄食研究[D]. 上海: 上海海洋大学, 2015: 11-21. [34] KATTNER G, HAGEN W. Lipids in marine copepods: latitudinal characteristics and perspective to global warming[M]. Springer NY, 2009: 257-280.
[35] NELSON M M, PHLEGER C F, MOONEY B D, et al. Lipids of gelatinous Antarctic zooplankton: cnidaria and ctenophora[J]. Lipids, 2000, 35(5): 551-559. doi: 10.1007/s11745-000-555-5
[36] COPEMAN L, PARRISH C. Marine lipids in a cold coastal ecosystem: Gilbert Bay, Labrador[J]. Mar Biol, 2003, 143(6): 1213-1227. doi: 10.1007/s00227-003-1156-y
[37] KELLY J R, SCHEIBLING R E, IVERSON S J. Fatty acids tracers for native and invasive macroalgae in an experimental food web[J]. Mar Ecol Prog, 2009, 391: 53-63. doi: 10.3354/meps08234
[38] STOWASSER G, MCALLEN R, PIERCE G, et al. Trophic position of deep-sea fish: assessment through fatty acid and stable isotope analyses[J]. Deep Sea Res I, 2009, 56(5): 812-826. doi: 10.1016/j.dsr.2008.12.016
[39] WAN R, WU Y, HUANG L, et al. Fatty acids and stable isotopes of a marine ecosystem: study on the japanese anchovy (Engraulis japonicus) food web in the Yellow Sea[J]. Deep Sea Res II, 2010, 57(11/12): 1047-1057.
[40] STOWASSER G, POND D W, COLLINS M A. Using fatty acid analysis to elucidate the feeding habits of Southern Ocean mesopelagic fish[J]. Mar Biol, 2009, 156(11): 2289-2302. doi: 10.1007/s00227-009-1256-4
[41] ROSSI S, YOUNGBLUTH M J, JACOBY C A, et al. Fatty acid trophic markers and trophic links among seston, crustacean zooplankton and the siphonophore Nanomia cara in Georges Basin and Oceanographer Canyon[J]. Sci Mar, 2008, 72(2): 403-416.
[42] 金鑫, 李超伦, 孙松, 等. 基于脂肪酸标记的长江口海区浮游动物常见种食性分析[J]. 海洋与湖沼, 2012, 43(6): 1083-1090. doi: 10.11693/hyhz201206008008 [43] FUKUDA Y, NAGANUMA T. Potential dietary effects on the fatty acid composition of the common jellyfish Aurelia aurita[J]. Mar Biol, 2001, 138(5): 1029-1035. doi: 10.1007/s002270000512
[44] KRITZBERG E S, COLE J J, PACE M L, et al. Autochthonous versus allochthonous carbon sources of bacteria: results from whole-lake 13c addition experiments[J]. Limnol Oceanogr, 2004, 49(2): 588-596. doi: 10.4319/lo.2004.49.2.0588
[45] 李云凯. 稳定同位素技术在鲨鱼摄食和洄游行为研究中的应用[J]. 应用生态学报, 2014, 25(9): 2756-2764. [46] 张旭峰. 海洋底栖动物稳定同位素和脂肪酸组成的地域性差异研究[D]. 大连: 大连海事大学, 2017: 15-27. [47] BOUTTON T W. Stable carbon isotope ratios of natural materials: II. Atmospheric, terrestrial, marine, and freshwater environments[J]. Carbon Isot Tech, 1991(1): 173-185.
[48] BOUILLON S, CHANDRA MOHAN P, SREENIVAS N. Sources of suspended organic matter and selective feeding by zooplankton in an estuarine mangrove ecosystem as traced by stable isotopes[J]. Mar Ecol Prog Ser, 2000, 208: 79-92. doi: 10.3354/meps208079
[49] 孙明, 王彬, 李玉龙, 等. 基于碳氮稳定同位素技术研究辽东湾海蜇的食性和营养级[J]. 应用生态学报, 2016, 27(4): 1103-1108. [50] SARDENNE F, BODIN N, CHASSOT E, et al. Trophic niches of sympatric tropical tuna in the western Indian Ocean inferred by stable isotopes and neutral fatty acids[J]. Prog Oceanogr, 2016, 146: 75-88. doi: 10.1016/j.pocean.2016.06.001
[51] ANTONIO E S, RICHOUX N B. Trophodynamics of three decapod crustaceans in a temperate estuary using stable isotope and fatty acid analyses[J]. Mar Ecol Progr Ser, 2014, 504: 193-205. doi: 10.3354/meps10761
计量
- 文章访问数: 1039
- HTML全文浏览量: 479
- PDF下载量: 85
粤公网安备 44010502001741号
