Gender differences in neurotoxicity and oxidative damage of triazophos on Perna viridis
-
摘要:
文章以具有环境指示功能的翡翠贻贝 (Perna viridis) 为研究对象，首次研究了三唑磷对其神经毒性和氧化损伤效应的性别差异性。实验测定了35 μg·L−1[1/100 96 h 半致死浓度 (LC50)]三唑磷慢性暴露15 d后雌、雄翡翠贻贝鳃组织中乙酰胆碱酯酶 (AchE) 和几种抗氧化指标的变化特征。结果显示，三唑磷作用15 d后雌性翡翠贻贝鳃组织中AchE活力无明显变化，而雄性个体中AchE活力被显著抑制。几种抗氧化指标对三唑磷暴露也表现出一定的性别差异，其中超氧化物歧化酶 (SOD) 和过氧化氢酶 (CAT) 活力在雌、雄翡翠贻贝鳃组织中均被显著抑制，丙二醛 (MDA) 均显著升高。谷胱甘肽硫转移酶 (GST) 活力和还原型谷胱甘肽 (GSH) 含量变化则表现出明显的性别差异，仅雄性翡翠贻贝GST活力和GSH含量有显著性变化。综上，三唑磷农药对翡翠贻贝鳃组织表现出明显的神经毒性和氧化损伤效应，其中雄性翡翠贻贝对三唑磷暴露的响应更为敏感。
Abstract:We studied the gender differences of the neurotoxicity and oxidative damage effects of triazophos on Perna viridis that has function of environmental indicator for the first time. The changes of acetylcholinesterase (AchE) and several antioxidant indices in gill tissues of male and female were determined after 15 d of chronic exposure to 35 μg·L−1 (1/100 96 h LC50). The results show that there was no significant change in the AchE activity in female's gill tissue after being treated with triazophos for 15 d, while the AchE activity in male was significantly inhibited. The activities of superoxide dismutase (SOD) and catalase (CAT) in gill tissues of both male and female were significantly inhibited, and the malondialdehyde (MDA) content was significantly increased. The activity of glutathione S-transferase (GST) and the content of reduced glutathione (GSH) showed significant gender differences. Only the GST activity and GSH content in male had significant changes. In conclusion, triazophos shows obvious neurotoxicity and oxidative damage effects on gill tissue of P. viridis, and the male was more sensitive to triazophos exposure.
-
Keywords:
- Perna viridis /
- Triazophos /
- Neurotoxic effect /
- Oxidative stress /
- Gender difference
-
类胡萝卜素是一类广泛存在于动植物体内的天然色素，根据其结构不同可主要分为胡萝卜素和叶黄素两类，胡萝卜素以β-胡萝卜素为代表，叶黄素主要包括玉米黄质、黄体素、角黄素、虾青素等 [1]。水产动物中类胡萝卜素具有多种生理功能，如调控体色、增强抗氧化性、调节免疫机制、促进生长、改良种质和增强抗紫外辐射能力等[2]。同样贝类的壳色、肌肉组织类胡萝卜素含量等性状也通常与其种质及类胡萝卜素代谢能力紧密相关，壳色、肌肉颜色较深的贝类其体内类胡萝卜素含量也较高，由于动物自身不能合成胡萝卜素，大多数水产动物只能从外界饵料中获取所需的类胡萝卜素[3-5]，而β-胡萝卜素容易生产加工获取且养殖效果好，在水产养殖中被广泛应用。
三角帆蚌 (Hyriopsis cumingii) 是我国主要的淡水育珠贝类之一，具有重要的经济价值，其供片蚌内壳色与所育珍珠的色泽显著相关，育珠蚌的生长性状与珍珠规格也显著相关[6]。因此，通过改良珍珠贝内壳色和生长性状来提升珍珠质量具有重要意义。研究发现，不同颜色的淡水珍珠其类胡萝卜素含量不同，对三角帆蚌珍珠和珍珠层的拉曼光谱观察发现了类胡萝卜素引起的拉曼峰，且同一贝壳颜色越深的部位，其珍珠层的类胡萝卜素含量越高[7-8]，上述研究表明类胡萝卜素在三角帆蚌的珍珠成色和生物矿化过程中起重要作用。李西雷等[9]进行了紫色系三角帆蚌添加β-胡萝卜素40 d的养殖实验，发现添加β-胡萝卜素能够提高三角帆蚌体内组织的类胡萝卜素含量并改善色泽，但由于贝类贝壳矿化致色需要长时间富集有机色素，且实验周期短，效果不够显著。本研究延长了实验周期并丰富了实验材料，选取紫色、金色和白色3种色系的三角帆蚌，补充添加β-胡萝卜素，经3个月养殖，探究补充β-胡萝卜素对不同色系三角帆蚌内壳色、组织类胡萝卜素含量以及生长性状的影响，以期通过补充β-胡萝卜素提升珍珠色泽和规格等性状，为优化淡水珍珠养殖技术提供理论依据。
1. 材料与方法
1.1 实验选材和实验试剂
自上海海洋大学三角帆蚌良种繁育基地随机挑选紫色、金色和白色3种色系12月龄的三角帆蚌 (图1)，每种色系三角帆蚌随机取120只，规格统一，壳长 (88.43±0.84) mm、壳宽 (52.51±1.30) mm、体质量(71.14±1.33) g。β-胡萝卜素添加剂 (质量分数1%) 购自河南华悦化工产品公司，丙酮 (AR) 和无水硫酸钠 (Na2SO4) 购自国药集团医药控股上海有限公司。
1.2 实验方法
1.2.1 饲养管理
实验养殖系统为“V”字形养殖水槽 (1.20 m×0.35 m×0.40 m)，养殖装置底部设有增氧管，上层设有透气养殖钢架，养殖水体体积为70 L，养殖用水为曝气自来水。实验开始前，将三角帆蚌暂养于实验养殖系统7 d，使其逐渐适应实验条件，水温用恒温棒控制在27 ℃，水体pH为7~8，溶解氧质量浓度大于5.00 mg·L−1，氨氮质量浓度小于0.02 mg·L−1，亚硝酸盐氮质量浓度小于0.005 mg·L−1。以扩培的小球藻 (Chlorella vulgaris) 作为饵料，每日于10:00和18:00进行投喂，投喂量为养殖水体浓度达到4.00×106 个·mL−1，每日第二次投饵前换水，换水量为1/3。
1.2.2 实验设计
紫色、金色和白色3种色系的三角帆蚌分别设置β-胡萝卜素补充实验组和对照组，每组设3种重复，每个重复吊养20 只。实验组除日常投喂小球藻饵料外，另外添加β-胡萝卜素质量分数为1%的粉剂，添加量为养殖水体粉剂质量浓度达40 mg·L−1，实验周期为90 d。在实验开始前和结束后，将蚌表面附着的杂物清理干净并拭干水分后，用游标卡尺测量壳长和壳宽 (精确到0.01 mm)；用电子天平称量体质量 (精确到0.01 g)。实验结束后从各组中随机取出 3只三角帆蚌，解剖取肝胰腺和外套膜 (边缘膜) 组织并于−80 ℃保存备用，取样贝壳清洗干燥后避光测量内壳色。
1.2.3 生长性状指标的计算
各组蚌的生长性状指标用壳长增长量 (SLG)、壳宽增长量 (SWG)、体质量增长量 (WG)、壳长特定增长率 (SGRSL)、壳宽特定增长率 (SGRSW) 和体质量特定增长率 (SGRW) 表示，计算公式如下:
$$ {\rm{SLG = S}}{{\rm{L}}_t}{\rm{ - S}}{{\rm{L}}_{\rm{0}}} $$ (1) $$ {\rm{SWG = S}}{{\rm{W}}_t}{\rm{ - S}}{{\rm{W}}_{\rm{0}}} $$ (2) $$ {\rm{WG = }}{W_t} - {W_0} $$ (3) $$ {\rm{SG}}{{\rm{R}}_{{\rm{SL}}}}{\rm{ = (ln\;S}}{{\rm{L}}_t}{\rm{ - ln\;S}}{{\rm{L}}_{\rm{0}}}{\rm{) \cdot}}{t^{{\rm{ - 1}}}}{\rm{ \times 100\% }} $$ (4) $$ {\rm{SG}}{{\rm{R}}_{{\rm{SW}}}}{\rm{ = (ln \;{\rm{S}}}}{{\rm{W}}_t}{\rm{ - ln\; {\rm{S}}}}{{\rm{W}}_{\rm{0}}}{\rm{) \cdot}}{t^{{\rm{ - 1}}}}{\rm{ \times 100\% }} $$ (5) $$ {\rm{SG}}{{\rm{R}}_{\rm{W}}}{\rm{ = (ln}}\;{{\rm{W}}_t}{\rm{ - ln}}\;{{\rm{W}}_{\rm{0}}}{\rm{)\cdot}}{t^{{\rm{ - 1}}}}{\rm{ \times 100\% }} $$ (6) 式中SL0和SLt为实验开始和结束时各组的平均壳长 (mm)，SW0和SWt为实验开始和结束时各组的平均壳宽 (mm)，W0和Wt为实验开始和结束时各组的平均体质量 (g)，t为实验天数 (d)。
1.2.4 类胡萝卜素含量测定
用冷冻干燥机将组织样品冻干并研磨成粉末，每个样品称量约0.20 g，放入10 mL棕色的试管中，同时加入等量的无水硫酸钠 (Na2SO4) 和4 mL分析纯丙酮试剂，4 ℃避光 200 r·min−1 震荡提取2 h，然后以5 000 r·min−1 离心5 min 取上清，沉淀重复上述步骤2~3次直到组织为无色，合并上清提取液后定容。使用 NanoDrop 2000C 型分光光度计测定提取液的吸光值。整个提取和测量的过程均在避光条件下进行。
三角帆蚌总类胡萝卜素 (Total carotenoids content, TCC, μg·g−1) 的测定参照 Yanar等 [10]的方法，计算公式为：
$$ {\rm{TCC = }}{{{A}}_{{\rm{480}}}}{\rm{\cdot}}y{\rm{ \times 1}}{{\rm{0}}^{\rm{4}}}{\rm{\cdot}}{\left( {{\rm{E \times }}W} \right)^{{\rm{ - 1}}}} $$ (7) 式中A480为提取液在480 nm处的吸光值；y为提取液的体积 (mL)；W为提取样品质量 (g)；E表示在1 cm光程的比色杯中1 g·L−1质量浓度溶质的理论吸收值，本文公式中的平均 E 值为 1 900。组织样品的测量共重复3 次，组织样品总类胡萝卜素含量以3次测量平均值表示 (μg·g−1)。
1.2.5 内壳色的测量
内壳色测量选用Lovibond-RT200表面色度计和Lovibond RT Colour V3.0软件的CIE L* a* b*系统。测量参数包括L*、a*、b*和dE。L*为明度，当L*>0时测量颜色趋于白色，L*<0则测量颜色趋近于黑色，L*越小表明颜色越深；色度值a*为红色和绿色的趋向程度，a*>0表示测量颜色偏红，a*<0表示颜色偏绿；色度值b*为黄色和蓝色的趋向程度，b* >0表示测量颜色偏黄，b*<0表示颜色偏蓝；dE 表示色差，dE 越大，表明贝壳的颜色越深。测量方法参考李清清等[6]，测量时选用的测量点依次为前闭壳肌、右壳边缘部位的外套痕与纵肋的交叉处和后闭壳肌，取每个蚌3个点的颜色平均值作为该个体的内壳色数据。
1.3 统计分析
实验数据采用SPSS 19.0软件进行分析，数据均以“平均值±标准差 (
$ \overline X \pm {\rm{SD}} $ )”表示，利用t检验分析差异显著性水平。2. 结果
2.1 补充投喂β-胡萝卜素对不同色系三角帆蚌内壳色的影响
紫色、金色、白色3种色系各组三角帆蚌测量的内壳色参数见表1。在紫色系三角帆蚌内壳色变化中，实验组L*较对照组从50.39±7.71降至42.47±8.80 (P<0.05)，降低了15.72%，a*从0.48±2.27升至2.67±3.26 (P<0.05)；b*未见显著变化 (P>0.05)，dE从对照组的40.36±7.78升至49.03±9.32 (P<0.05)，提高了21.48%；在金色系三角帆蚌内壳色变化中，实验组a*和b*显著高于对照组 (P<0.05)，a*实验组较对照组的0.07±1.98升至1.52±1.72，b*从对照组的1.37±4.53升至4.43±5.83，dE和L*未见显著变化 (P>0.05)；白色系实验组三角帆蚌各颜色参数较对照组均未呈现明显差异 (P>0.05)。
表 1 补充投喂β-胡萝卜素对三种色系三角帆蚌内壳色的影响Table 1. Effects of β-carotene supplement on inner shell color of three color stains in H. cumingii色系
Color strain组别
Group明度值 L*
Lightness色度值 a*
Redness色度值 b*
Yellowness色差 dE
Color change紫色 Purple 实验组 42.47±8.80a 2.67±3.26a −1.12±5.23a 49.03±9.32a 对照组 50.39±7.71b 0.48±2.27b −3.49±4.29a 40.36±7.78b 金色 Golden 实验组 61.82±6.96a 1.52±1.72a 4.43±5.83a 45.94±6.27a 对照组 59.82±7.81a 0.07±1.98b 1.37±4.53b 46.20±7.58a 白色 White 实验组 59.90±8.05a 0.05±1.49a −1.34±3.33a 37.27±9.21a 对照组 62.59±9.13a 0.01±1.71a −1.15±1.13a 38.87±7.03a 注：同一列上标不同字母表示相同色系实验组和对照组颜色参数差异显著 (P<0.05) Note: Different superscripts within the same column indicate that the color parameters of the experimental group and the control group for the same color strains are significantly different (P<0.05). 2.2 补充投喂β-胡萝卜素对三角帆蚌肝胰腺和外套膜边缘膜TCC的影响
紫色、金色、白色3种色系各组三角帆蚌肝胰腺和外套膜边缘膜的TCC见表2。在紫色、金色和白色实验组三角帆蚌的肝胰腺TCC均显著高于对照组 (P<0.05)，分别提高了121.70%、119.22%和44.32%；紫色系和金色系实验组三角帆蚌外套膜边缘膜组织TCC显著高于对照组 (P<0.05)，分别提高了55.29%和39.69%；白色系实验组三角帆蚌外套膜边缘膜TCC较对照组无显著差异 (P>0.05)。
表 2 补充投喂β-胡萝卜素对3种色系三角帆蚌肝胰腺和外套膜边缘膜总类胡萝卜素含量的影响Table 2. Effects of β-carotene supplement on TCC in hepatopancreas and edge mantle of three color stains in H. cumingiiμg·g−1 色系
Color strain组别
Group肝胰腺
Hepatopancreas外套膜边缘膜
Edge mantle紫色 Purple 实验组 132.49±2.98* 64.32±1.96* 对照组 59.76±2.73 41.42±2.13 金色 Golden 实验组 113.21±3.12* 45.58±1.84* 对照组 51.64±2.14 32.63±2.03 白色 White 实验组 56.27±1.99* 21.45±2.13 对照组 38.99±2.22 19.73±1.53 注：*. 相同色系实验组和对照组差异显著 (P<0.05)；下表同此 Note: *. The difference between the experimental group and the control group for the same color strains is significant (P<0.05). The same case in the following table. 2.3 补充投喂β-胡萝卜素对不同色系三角帆蚌生长的影响
紫色、金色、白色各组三角帆蚌生长性状增长量和特定增长率见表3。3种色系实验组三角帆蚌壳长、壳宽、体质量增长量及特定增长率均显著大于对照组 (P<0.05)，紫色系实验组三角帆蚌壳长、壳宽及体质量特定增长率较对照组分别提高83.33%、44.44%和67.74%，金色系实验组较对照组分别提高57.14%、120.00%和50.00%，白色系实验组较对照组分别提高28.57%、150.00%和61.11%。
表 3 补充投喂β-胡萝卜素对3种色系三角帆蚌生长的影响Table 3. Effects of β-carotene supplement on growth traits of three color stains in H. cumingii色系
Color strain组别
Group壳长增长量
Shell length growth/mm壳宽增长量
Shell width growth/mm体质量增长量
Body mass growth/g紫色 Purple 实验组 19.54±0.45* 6.60±0.78* 42.90±0.72* 对照组 10.12±0.13 4.47±0.20 22.96±0.82 金色 Golden 实验组 9.17±0.13* 5.26±0.35* 24.73±0.50* 对照组 5.83±0.11 2.49±0.10 15.06±0.15 白色 White 实验组 7.40±0.13* 5.22±0.27* 21.52±0.59* 对照组 5.41±0.36 1.71±0.17 12.82±1.26 色系
Color strain组别
Group壳长特定增长率
SGR on shell length/(%·d−1)壳宽特定增长率
SGR on shell width/(%·d−1)体质量特定增长率
SGR on body mass/(%·d−1)紫色 Purple 实验组 0.22±0.01* 0.13±0.02* 0.52±0.01* 对照组 0.12±0.01 0.09±0.01 0.31±0.02 金色 Golden 实验组 0.11±0.01* 0.11±0.01* 0.33±0.01* 对照组 0.07±0.01 0.05±0.01 0.22±0.01 白色 White 实验组 0.09±0.01* 0.10±0.01* 0.29±0.02* 对照组 0.07±0.01 0.04±0.01 0.18±0.02 3. 讨论
3.1 补充投喂类胡萝卜素对贝壳色泽的影响
类胡萝卜素可能是珍珠成色的重要调控因素[11-12]。本实验在补充投喂β-胡萝卜素后，紫色和金色系三角帆蚌的内壳色a*显著增加，即红色度加深；内壳色b*仅金色系显著增加，即黄色度加深，说明补充投喂β-胡萝卜素可提升三角帆蚌内壳红色度和黄色度。马孝甜[13]研究显示，补充投喂虾青素后，马氏珠母贝的外套膜、闭壳肌及肾脏等多种组织颜色呈橙色，珍珠层颜色呈金黄色，表明贝类在补充类胡萝卜素后，通过富集一定量的类胡萝卜素能够改善贝壳色泽。对柠檬 (Citrus limon) 果皮色素的研究发现，类胡萝卜素含量与果皮的颜色显著相关[14]。韩继卫等[15]对三角帆蚌早期珍珠色泽影响的研究表明，以低浓度β-胡萝卜素养殖三角帆蚌，其珍珠质文石排列更加有序、整齐且珍珠质颜色更为鲜艳。上述研究说明补充投喂β-胡萝卜素可显著提升贝类内壳色。此外，本研究不同色系三角帆蚌补充投喂β-胡萝卜素，内壳色提升效果不同，说明壳色改善效果与三角帆蚌种质直接相关，这可能是由于不同种质对色素沉积能力不同导致。本研究白色系三角帆蚌补充投喂β-胡萝卜素，壳色并未出现显著变化，这可能是由其内壳色呈白色的贝类形成机制所决定，而金色系黄色度提升最高，或与其黄色度贝壳生产能力相关。组织类胡萝卜素含量高的虾夷扇贝 (Patinopecten yessoensis) 和橘黄色华贵栉孔扇贝 (Chlamys nobilis) 壳色也较其他个体更加鲜艳 [16-17]，进一步证实贝壳颜色受种质的影响。
3.2 补充投喂类胡萝卜素对组织中类胡萝卜含量的影响
研究表明，鱼类体色与其组织类胡萝卜素显著相关[18-19]。本研究显示通过长期投喂类胡萝卜素确实能提高三角帆蚌体内组织类胡萝卜素含量并改善壳色，这与贝类珍珠质形成、致色属于长期色素积累和生物矿化过程的研究结果相一致[20-21]；贝类组织中的类胡萝卜素含量越高，其组织颜色越鲜艳[22-23]；但本实验中外套膜组织颜色未见明显变化，这可能是因为三角帆蚌体内的类胡萝卜素含量相对其他物种较低。本研究显示，补充投喂类胡萝卜素后，不同色系实验组三角帆蚌的肝胰腺TCC较对照组均显著增加，但是不同色系TCC增加百分比不同，表明不同色系三角帆蚌因种质不同对类胡萝卜素的吸收和储存能力也有差异。马氏珠母贝金黄壳色选育群体在不同生长阶段各组织类胡萝卜素含量要大于普通养殖群体[24]，也证明种质差异会影响贝类对类胡萝卜素的富集。雷超等[25]发现马氏珠母贝黄白闭壳肌个体的类胡萝卜素含量受PmCRABP 基因的调控并且人工选育橘红色或橙色闭壳肌的华贵栉孔扇贝能明显提高子代个体组织的类胡萝卜素含量[16]。笔者初步推测，类胡萝卜素在三角帆蚌体内转运也受到了相关基因的调控，导致本实验中不同种质三角帆蚌肝胰腺TCC出现差异；本实验中紫色和金色系实验组外套膜边缘膜中的TCC相较对照组均显著提高，而白色系组的差异不显著，同样表明不同种质三角帆蚌对类胡萝卜素的吸收转运能力不同，而内壳色的变化主要与贝类外套膜TCC变化相关[11,26]，本实验测量内壳色的结果中紫色和金色系壳色改善效果较好证实了这一观点。
3.3 补充投喂类胡萝卜素对生长的影响
本实验中投喂小球藻中添加β-胡萝卜素 (质量分数1%) 养殖3种色系三角帆蚌90 d后，不同色系三角帆蚌实验组各生长性状均较对照组显著提高，这可能是由于投喂类胡萝卜素后各种色系三角帆蚌对饵料的同化率均有提高，大量实验表明在饵料中添加类胡萝卜素养殖水生动物能够提高其特定生长率和体质量增长率，如黄颡鱼 (Pelteobagrus fulvidraco)、仿刺参 (Apostichopus japonicus)、中华鳖 (Trionyx Sinensis) 和红白锦鲤 (Cyprinus carpio) 等[27-30]。另外，本研究还发现紫色系实验组的壳长和体质量特定增长率较对照组的增幅要大于其他2个色系，表明类胡萝卜素对三角帆蚌生长性状的改良效果受种质的影响，这与张璐等[31]发现“海大金贝”(Mizuhopecten yessoensis) 生长性状受体内组织类胡萝卜素浓度影响以及相同养殖环境下大规格马氏珠母贝 (P. martensi) 各组织的类胡萝卜素含量略高于小规格子群体的结果[32]相一致。因此，在遗传育种中可将组织类胡萝卜素含量作为育种选择的一项参考指标。在天然养殖环境中，三角帆蚌为被动摄食，摄食的饵料种类丰富，其中硅藻和红藻富含类胡萝卜素，而本实验主要以小球藻作为基础饵料，饵料相对单一。因此，在三角帆蚌工厂化养殖中饵料来源和组成应更加丰富。
4. 结论
本研究表明补充投喂β-胡萝卜素可显著提升紫色和金色系三角帆蚌的内壳色色度，能显著提高3种色系三角帆蚌的生长性状，说明补充投喂β-胡萝卜素在珍珠养殖中具有重要的应用前景，本研究结果可为珍珠养殖技术的优化提供理论依据。
-
[1] 钟志, 刘琴, 刘士忠, 等. 三唑磷对浙江沿岸海域水生生物的影响[J]. 广州化工, 2010, 38(5): 215-216. doi: 10.3969/j.issn.1001-9677.2010.05.080 [2] ZHENG S, CHEN B, QIU X, et al. Distribution and risk assessment of 82 pesticides in Jiulong River and estuary in South China[J]. Chemosphere, 2016, 144: 1177-1192. doi: 10.1016/j.chemosphere.2015.09.050
[3] 张志勇, 何丹军, 徐敦名, 等. 三唑磷在水中消解和残留动态研究[J]. 现代农药, 2005, 4(1): 25-27. doi: 10.3969/j.issn.1671-5284.2005.01.009 [4] WANG Y, CHEN C, ZHAO X, et al. Assessing joint toxicity of four organophosphate and carbamate insecticides in common carp (Cyprinus carpio) using acetylcholinesterase activity as an endpoint[J]. Pestic Biochem Phys, 2015, 122: 81-85. doi: 10.1016/j.pestbp.2014.12.017
[5] LIU L, ZHU B, GONG Y X, et al. Neurotoxic effect of triazophos on goldfish (Carassius auratus) and tissue specific antioxidant responses[J]. Ecotox Environ Saf, 2015, 116: 68-75. doi: 10.1016/j.ecoenv.2015.03.001
[6] ZHU B, GONGY X, LIU L, et al. Toxic effects of triazophos on rare minnow (Gobiocypris rarus) embryos and larvae[J]. Chemosphere, 2014, 108: 46-54. doi: 10.1016/j.chemosphere.2014.03.036
[7] YANG F W, FANG B, PANG G F, et al. Organophosphorus pesticide triazophos: a new endocrine disruptor chemical of hypothalamus-pituitary-adrenal axis[J]. Pestic Biochem Phys, 2019, 159: 91-97. doi: 10.1016/j.pestbp.2019.05.021
[8] WU S, LI X, LIU X, et al. Joint toxic effects of triazophos and imidacloprid on zebrafish (Danio rerio)[J]. Environ Pollut, 2018, 235: 470-481. doi: 10.1016/j.envpol.2017.12.120
[9] WANG G, SHAO J, WU M, et al. Effect of acute exposure of triazophos on histological structure and apoptosis of the brain and liver of zebrafish (Danio rerio)[J]. Ecotoxicol Environ Saf, 2019, 180: 646-655. doi: 10.1016/j.ecoenv.2019.05.053
[10] WANG G, XIONG D, WU M, et al. Induction of time-and dose-dependent oxidative stress of triazophos to brain and liver in zebrafish (Danio rerio)[J]. Comp Biochem Physiol C, 2019, 228: 108640.
[11] 徐广春, 顾中言, 徐德进, 等. 五种常用杀虫剂对灰飞虱繁殖力的影响[J]. 植物保护学报, 2008, 35(4): 361-366. doi: 10.3321/j.issn:0577-7518.2008.04.014 [12] 孙伟, 张林宝, 胡莹, 等. 三唑磷作用下翡翠贻贝抑制性消减杂交文库构建与分析[J]. 中国环境科学, 2016, 36(12): 3807-3815. doi: 10.3969/j.issn.1000-6923.2016.12.036 [13] JI C, WU H, WEI L, et al. Proteomic and metabolomic analysis reveal gender-specific responses of mussel Mytilus galloprovincialis to 2, 2', 4, 4'-tetrabromodiphenyl ether (BDE 47)[J]. Aquat Toxicol, 2013, 140-141: 449-457. doi: 10.1016/j.aquatox.2013.07.009
[14] JI C, LI F, WANG Q, et al. An integrated proteomic and metabolomic study on the gender-specific responses of mussels Mytilus galloprovincialis to tetrabromobisphenol A (TBBPA)[J]. Chemosphere, 2016, 144: 527-539. doi: 10.1016/j.chemosphere.2015.08.052
[15] LUO L, ZHANG Q, KONG X, et al. Differential effects of Zn exposure on male and female oysters (Crassostrea angulata) as revealed by label-free quantitative proteomics: differential effects of Zn exposure on male and female oysters[J]. Environ Toxicol Chem, 2017, 36(10): 2602-2613. doi: 10.1002/etc.3797
[16] LUO L, ZHANG Q, KONG X, et al. Differential effects of bisphenol A toxicity on oyster (Crassostrea angulata) gonads as revealed by label-free quantitative proteomics[J]. Chemosphere, 2017, 176: 305-314. doi: 10.1016/j.chemosphere.2017.02.146
[17] ZHANG L, SUN W, ZHANG Z, et al. Gender-specific metabolic responses in gonad of mussel Perna viridis to triazophos[J]. Mar Pollut Bull, 2017, 123(1/2): 39-46.
[18] CORTES-DIAZ M J A, RODRIGUEZ-FLORES J, CASTANEDA-PENALVO G, et al. Sublethal effects induced by captopril on Cyprinus carpio as determined by oxidative stress biomarkers[J]. Sci Total Environ, 2017, 605-606: 811-823. doi: 10.1016/j.scitotenv.2017.06.208
[19] ELLMAN G L, COURTNEY K D, ANDRES V, et al. A new and rapid colorimetric determination of acetylcholinesterase activity[J]. Biochem Pharmacol, 1961, 7(2): 88-95. doi: 10.1016/0006-2952(61)90145-9
[20] MORON M S, DEPIERRE J W, MANNERVIK B. Levels of glutathione, glutathione reductase and glutathione S-transferase activities in rat lung and liver[J]. Biochim Biophys Acta, 1979, 582(1): 67-78. doi: 10.1016/0304-4165(79)90289-7
[21] 任加云, 潘鲁青, 苗晶晶. 苯并(a)芘和苯并(k)荧蒽混合物对栉孔扇贝毒理学指标的影响[J]. 环境科学学报, 2006, 26(7): 1150-1156. [22] AEBI H. Catalase in vitro[J]. Meth Enzymol, 1984, 105: 121-126. doi: 10.1016/S0076-6879(84)05016-3
[23] OHKAWA H, OHISHI N, YAGI K. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction[J]. Anal Biochem, 1979, 95(2): 351-358. doi: 10.1016/0003-2697(79)90738-3
[24] FULTON M H, KEY P B. Acetylcholinesterase inhibition in estuarine fish and invertebrates as an indicator of organophosphorus insecticide exposure and effects[J]. Environ Toxicol Chem, 2001, 20(1): 37-45. doi: 10.1002/etc.5620200104
[25] DETRA R L, COLLINS W J. The relationship of parathion concentration, exposure time, cholinesterase inhibition and symptoms of toxicity in midge larvae (Chironomidae: Diptera)[J]. Environ Toxicol Chem, 1991, 10: 1089-1095. doi: 10.1002/etc.5620100814
[26] BINELLI A, RICCIARDI F, RIVA C, et al. New evidences for old biomarkers: effects of several xenobiotics on EROD and AChE activities in zebra mussel (Dreissena polymorpha)[J]. Chemosphere, 2006, 62(4): 510-519. doi: 10.1016/j.chemosphere.2005.06.033
[27] ALVES S, SEVERINO P, IBBOTSON D, et al. Effects of furadan in the brown mussel Perna perna and in the mangrove oyster Crassostrea rhizophorae[J]. Mar Environ Res, 2002, 54(3/4/5): 241-245. doi: 10.1016/S0141-1136(02)00138-1
[28] LIONETTO M G, CARICATO R, GIORDANO M E, et al. Integrated use of biomarkers (acetylcholinesterase and antioxidant enzymes activities) in Mytillus galloprovincialis and Mullus barbatus in an Italian coastal marine area[J]. Mar Pollut Bull, 2003, 46(3): 324-330. doi: 10.1016/S0025-326X(02)00403-4
[29] CHOI J Y, YU J, YANG D B, et al. Acetylthiocholine (ATC) cleaving cholinesterase (ChE) activity as a potential biomarker of pesticide exposure in the Manila clam, Ruditapes philippinarum, of Korea[J]. Mar Environ Res, 2011, 71(3): 162-168. doi: 10.1016/j.marenvres.2010.12.007
[30] VALDEZ DOMINGOS F X, AZEVEDO M, SILVA M D, et al. Multibiomarker assessment of three Brazilian estuaries using oysters as bioindicators[J]. Environ Res, 2007, 105(3): 350-363. doi: 10.1016/j.envres.2007.06.003
[31] DORAN W J, COPE W G, RADA R G, et al. Acetylcholinesterase inhibition in the threeridge mussel (Amblema plicata) by chlorpyrifos: implications for biomonitoring[J]. Ecotoxicol Environ Saf, 2001, 49(1): 91-98. doi: 10.1006/eesa.2000.2036
[32] 余向阳, 赵于丁, 王冬兰, 等. 毒死蜱和三唑磷对斑马鱼头部AChE活性影响及在鱼体内的富集[J]. 农业环境科学学报, 2008, 27(6): 2452-2455. doi: 10.3321/j.issn:1672-2043.2008.06.058 [33] SINGH S, TIWARI R K, PANDEY R S. Acute toxicity evaluation of triazophos, deltamethrin and their combination on earthworm, Eudrilus eugeniae and its impact on AChE activity[J]. J Chem Ecol, 2019, 35(6): 563-575. doi: 10.1080/02757540.2019.1600679
[34] 刘海涛, 李兵, 王国宝, 等. 辛硫磷对家蚕雌雄个体的毒力比较[J]. 江苏农业科学, 2010, 6: 390-392. doi: 10.3969/j.issn.1002-1302.2010.02.160 [35] 刘海涛. 家蚕对有机磷农药抗性的性别差异研究[D]. 苏州: 苏州大学, 2010: 47-46. [36] 郑波, 石年, 李龙, 等. 螨胺磷在不同性别大鼠中代谢差异初探[J]. 同济医科大学学报, 2000, 29(2): 127-129. [37] MAHARAJAN K, MUTHULAKSHMI S, NATARAJ B, et al. Toxicity assessment of pyriproxyfen in vertebrate model zebrafish embryos (Danio rerio): a multi biomarker study[J]. Aquat Toxicol, 2018, 196: 132-145. doi: 10.1016/j.aquatox.2018.01.010
[38] ZHANG J F, WANG X R, GUO H Y, et al. Effects of water soluble fractions of diesel oil on the antioxidant defenses of the goldfish, Carassius auratus[J]. Ecotoxicol Environ Saf, 2004, 58(1): 110-116. doi: 10.1016/j.ecoenv.2003.08.025
[39] 钟碧瑾, 姚丹, 刘娟娟, 等. 两种有机磷农药对沼水蛙蝌蚪抗氧化系统及MDA浓度的影响[J]. 福建师范大学学报(自然科学版), 2009, 25(2): 91-96. [40] XIU M, PAN L, JIN Q. Toxic effects upon exposure to polycyclic aromatic hydrocarbon (chrysene) in scallop Chlamys farreri during the reproduction period[J]. Environ Toxicol Phar, 2016, 44: 75-83. doi: 10.1016/j.etap.2016.04.001
[41] 吉成龙. 典型溴系阻燃剂对紫贻贝毒理效应的组学研究[D]. 烟台: 中国科学院烟台海岸带研究所, 2014: 107-109. -
期刊类型引用(5)
1. 王子轩，杨淼，柳迪文，孟彬，祖恩东. 基于拉曼光谱与色度学的彩色淡水有核珍珠研究. 光谱学与光谱分析. 2024(06): 1684-1688 . 
百度学术
2. 颜玲，钟婧妍，袁永斌，张瑶，胡宏辉，陆婷婷，白志毅. 三角帆蚌谷胱甘肽硫转移酶基因克隆表达及其类胡萝卜素转运功能分析. 水产学报. 2024(08): 81-90 . 百度学术
3. 李萌萌，滕亚君，谭红琳，祖恩东. 基于色度学与拉曼光谱的安徽淡水养殖白色珍珠研究. 光谱学与光谱分析. 2022(05): 1504-1507 . 百度学术
4. 陆风辉，李金潞，白志毅，袁屹平，傅百成. 补充β-胡萝卜素和虾青素对三角帆蚌内壳色、组织总类胡萝卜素含量及珍珠质量的影响. 淡水渔业. 2022(06): 44-50 . 百度学术
5. 张进盼，白志毅，张梦莹，颜玲，陆风辉，王贺. 三角帆蚌溶血磷脂酰胆碱酰基转移酶1 HcLPCAT1基因功能分析及壳色性状相关SNP筛选. 中国水产科学. 2021(11): 1373-1384 . 百度学术
其他类型引用(9)
下载:
计量
- 文章访问数: 2044
- HTML全文浏览量: 706
- PDF下载量: 44
- 被引次数: 14
粤公网安备 44010502001741号
