Effect of dietary β-glucan on blood metabolites and immunity of Litopenaeus vannamei at low salinities
-
摘要:
为研究长期投喂β-1,3-葡聚糖对低盐度 (5) 养殖凡纳滨对虾 (Litopenaeus vannamei) 血液代谢物和肌肉免疫相关酶活性的影响，以初始体质量为 (0.65±0.01) g的凡纳滨对虾为研究对象，分别投喂添加0、250、500和1 000 mg·kg−1 β-1,3-葡聚糖的4种等氮等脂试验饲料，试验期84 d。结果显示，凡纳滨对虾血清乳酸盐和肌肉溶菌酶活性最高值出现在摄食后的第14天，总蛋白、甘油三酯、胆固醇、葡萄糖含量最高值出现在第42天，超氧化物歧化酶、过氧化氢酶、抗超氧阴离子水平的最高值出现在第56天。与对照组相比，饲料中添加250 mg·kg−1 β-1,3-葡聚糖显著提高了凡纳滨对虾血清甘油三酯、胆固醇、葡萄糖、乳酸盐含量和超氧化物歧化酶活性 (P<0.05)；500 mg·kg−1 β-1,3-葡聚糖显著提高了其血清总蛋白、抗超氧阴离子水平 (P<0.05)，250或500 mg·kg−1 β-1,3-葡聚糖可显著增强过氧化氢酶、溶菌酶活性 (P<0.05)。饲料中添加250或500 mg·kg−1 β-1,3-葡聚糖14、42或56 d，可显著提高低盐度养殖凡纳滨对虾营养物质代谢和非特异性免疫功能。
Abstract:In order to study the effects of long-term feeding β-1,3-glucan on blood metabolites and muscle immune related enzyme activities of cultured Litopenaeus vannamei at low salinity (5), we fed the fish with initial body mass of (0.65 ± 0.01) g with four diets containing 0, 250, 500 and 1 000 mg·kg−1 β-1,3-glucan, respectively, for 84 d. The results show that the highest values of serum lactate and muscle lysozyme activity appeared on the 14th day after ingestion. Levels of total protein, glucose, cholesterol and triglyceride reached their maximum levels at 42nd day. Activities of superoxide dismutase, catalase and anti-O2 − reached their maximum levels at 56th day. The levels of glucose, cholesterol, triglyceride, lactate and superoxide dismutase were significantly higher in 250 mg·kg−1 β-1,3-glucan-containing diets than those in the control diet (P<0.05). The contents of total protein and anti-O2 − were significantly higher in 500 mg·kg−1 β-1,3-glucan-containing diet than those in the control diet (P<0.05). The activities of catalase and lysozyme were significantly higher in 250 or 500 mg·kg−1 β-1,3-glucan-containing diets than those in the control diet (P<0.05). Feeding 250 or 500 mg·kg−1 β-1,3-glucan diets for 14, 42 or 56 d is recommended to improve shrimp's nutrition metabolism and immune ability.
-
Keywords:
- Litopenaeus vannamei /
- β-1,3-glucan /
- Blood metabolite /
- Immune-related enzyme
-
一般地在鱼类内分泌系统中，脑下垂体-甲状腺轴对生长发育、物质能量代谢、繁殖等生命活动均发挥着非常重要的作用[1-3]。一方面，促甲状腺激素(thyroid-stimulating hormone，TSH)首先作用于甲状腺组织，刺激甲状腺组织合成、分泌甲状腺激素(thyroid hormone，TH)，然后TH与机体组织中的TH受体结合，从而影响了机体的生长、发育以及繁殖等生命过程；另外，机体内TH水平对TSH的分泌也起到负反馈调节。在鱼类，TSH和促性腺激素都是糖蛋白激素，这几种糖蛋白激素都是由α和β 2个亚基组成，其中，每种动物中的α亚基是相同的，而β亚基都是不同的，激素的特异性是由β亚基所决定的。不同的基因分别指导α和β亚基的合成，两者在质膜上以非共价键结合，形成具有生物活性的二聚体分子蛋白[4]。
另一方面，鱼体内产生的雌激素主要是在垂体促性腺激素的作用下由卵巢滤泡细胞合成和分泌的C-18性类固醇激素。鱼类卵巢能产生和分泌的雌激素主要包括雌二醇(estradiol-17β，E2)和雌酮(estrone)2种，其中以E2的活性最强[5]。在硬骨鱼类中，E2具有促进肝组织合成和释放卵黄蛋白前体物质(卵黄蛋白原)[6]及提高血液中Ca2+水平的作用[7]。而且研究结果显示，E2对早期发育[8]、性分化[9]、生长[10]、免疫系统功能[11]、营养物质的利用[12]、性逆转[13]、血液中降血钙素水平[14]、遗传因子的调控[15]等生命活动过程也发挥着巨大的作用。因此，E2对鱼类正常的生理活动起着重要的作用。
可是，近几十年来，随着科技和现代工业的高速发展、人口数量的增多以及人类开发利用自然资源能力和范围的不断扩大，环境污染已逐渐成为威胁人类生存的重大问题之一。在有些河流、湖泊、污水处理排放口等水体中存在一定数量的污染物。研究显示，有些环境污染物可以通过模拟机体激素的作用来干扰、扰乱内源性激素的产生，从而改变机体内分泌系统的正常功能作用。进一步研究还显示，一些内分泌干扰物具有雌激素或雄激素效应[16-17]。因此，为明确具有雌激素效应的内分泌干扰物对生物体的危害，首先对过量的外源性雌激素，如E2对生物体内分泌系统的干扰作用进行研究是非常重要的。
异育银鲫(Carassius auratus)具有适应性强、疾病少、成活率高、生长速度快、养殖周期短、产量高、耐低温低氧、市场价格高等优点，深受广大水产养殖户的喜爱，并且异育银鲫在我国分布广泛。因此，本实验以异育银鲫为研究对象，运用实时荧光定量RT-PCR方法和放射免疫方法(RIA)检测了外源性E2对其脑垂体-甲状腺轴的影响，以期能够探讨和明确外源性E2对生物机体的危害，并为健康水产养殖标准的制定和保护人类的生存环境等方面提供新的理论和依据。
1. 材料和方法
1.1 实验动物
异育银鲫购于上海孙桥水产养殖良种场，体重在45 g左右。购回后暂养于实验室160 L水族箱内，每日按照1%的体重比喂食饵料、暂养。1周后，挑选健康样本作为实验对象，实验期间均不喂食饲料。
1.2 主要试剂
E2购于Sigma公司；M-MLV-RT试剂盒购于Promega公司；RNA抽提试剂TrizolⓇ Reagant购于Invitrogen公司；Perfect Real Time(SYBR Green Ⅰ)荧光定量反应试剂盒以及PCR反应试剂购于Takara公司；放射免疫分析试剂盒购于上海放射免疫分析技术有限公司。
1.3 激素的配制、注射和样本收集
首先称取适量E2用无水乙醇进行溶解配制成母液，通过小剂量倍比稀释实验找出其溶解下限-酒精浓度57%，然后将E2溶解在57%的酒精中。
将健康的异育银鲫分成4个注射组，每组6尾。实验组为注射3次0.5 mg·kg-1体重的E2组和注射5次0.5 mg·kg-1体重的E2组；对照组为注射3次同剂量的57%酒精组和注射5次同剂量的57%酒精组。
该4个注射组均采用肌肉注射法，每2周注射一次，在第3、第5次注射完后的第3天取样。取样时，采用断尾取血法收集血液，然后分离血清，－20℃保存备用；同时，自异育银鲫头部蝶鞍骨背面的小骨腔内取出脑下垂体于1.5 mL经DEPC处理过的离心管中，－70℃保存备用。实验期间所有注射组均无死亡现象发生。
1.4 定量模板的制备
按照TrizolⓇ Reagant试剂制造商提供的方法，从异育银鲫脑垂体中提取总的RNA。将所提取的RNA样本放于－80℃冰箱保存备用。反转录按照Promega公司M-MLV-RT试剂盒说明书进行。
1.5 引物设计
实时荧光定量RT-PCR是检测低丰度、或者从有限的组织中检测mRNA量的敏感方法之一。为了去除不同标本在RNA产量、质量以及反转录效率上可能存在的差别而得到目标基因特异性表达的真正差异，通常选择一内参基因进行校正和标准化。所以，本实验首先根据已获得的异育银鲫TSH-β基因cDNA序列[18]和金鱼beta-actin cDNA序列，运用Primer Premier 5结合Dnastar分析软件及在线BLAST，分别设计、合成了适用于荧光定量的目的片段(TSH-β cDNA)引物和内参片段(beta-actin cDNA)引物。引物序列如下：
目的片段引物(产物长度为176 bp)：
上游引物：5′GGGTATTTTGATGAAGGTAGCC 3′
下游引物：5′CTTTGAACCAGGAAACGAGC 3′
内参片段引物(产物长度为127 bp)：
上游引物：5′GATGCGGAAACTGGAAAGG 3′
下游引物：5′ACTGTGAGGGCAGAGTGGTAG 3′
1.6 实时荧光定量RT-PCR检测TSH-β mRNA表达水平
利用SYBR Green Ⅰ荧光染料在ABI Prism 7000荧光定量PCR仪上检测TSH-β mRNA的表达水平。优化后的实时定量RT-PCR体系如下：SYBRⓇ Premix EX TaqTM (2×)10 μL，上、下游引物(10 μM)各0.4 μL，ROX Reference Dye (50×)0.4 μL，DNA模板2.0 μL (< 100 ng)，灭菌双蒸水6.8 μL，总量20 μL。将反应体系稍微离心后放入定量PCR仪内进行扩增。反应条件：95℃，10 s；95℃，5 s，60℃，30 s，45个循环。反应结束后，系统将采集到的每一循环反应时各反应管荧光强度的增长指数(DRn)进行分析，绘制每一反应管的扩增动力学曲线。根据动力学曲线确定每个样品管中荧光强度增加到某一特定阈值(threshold)时的扩增循环数(Ct值)。最后将每个内参样品的Ct值除以相应目的样品的Ct值，进而得出每个样品的相对精确值。最后，将所扩增的PCR产物进行溶解曲线分析(检测温度：60℃)。
1.7 血清T3和T4含量水平的测定
异育银鲫血清中甲状腺激素T3和T4水平的检测采用常规T3和T4放射免疫测定方法(RIA)测定。首先分别配制T3标准液(0.25、0.5、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0和8.0 ng·mL-1)和T4标准液(0.5、1.25、2.5、3.75、5、7.5、10、15、20和40 ng·mL-1)，建立T3和T4标准曲线。然后对待测样品进行T3和T4含量测定。
1.8 数据处理
每组数据均以平均值±标准差表示，显著性检验采用t检验，P < 0.05时认为差异显著；P < 0.01时认为差异极显著。数据统计采用SAS 6.0统计软件进行。
2. 结果
2.1 荧光定量效果鉴定分析
为保证本实验结果数据的准确性，首先随机抽取5个样本进行预实验，以求对荧光定量PCR仪功效以及样品质量进行鉴定。扩增曲线显示PCR扩增指数增长期及平台期曲线都较为整齐，无不正常、不规则条带出现(图 1)。说明荧光定量PCR仪性能良好，PCR条件适当，扩增效果较好。
![]()
图 1 荧光定量RT-PCR扩增曲线分析Figure 1. Amplification curve analysis of fluorescence real time PCR溶解曲线分析显示，特异性扩增产物都具有相同的Tm值。目的片段PCR产物的Tm值在83℃左右，内参片段PCR产物的Tm值在80.5℃左右，溶解温度单一(图 2)。将该随机抽取的五个样本进行PCR扩增反应后，经琼脂糖凝胶电泳鉴定也同样证明了引物具有很强的特异性，并且所得目的片段产物和内参片段产物与预测大小一致，且均为单一条带(图 3)。在此基础上，我们检测了外源性E2对异育银鲫TSH-β mRNA表达的影响。
![]()
图 3 异育银鲫内参片段和目的片段PCR产物凝胶电泳结果1~5. 内参PCR产物；6~10. 目的PCR产物；11. 100 bp分子量Figure 3. Agarose electrophoresis of the PCR products of beta actin and C. auratus TSH-β1~5. PCR products of beta-actin; 6~10. PCR products of TSH-β; 11. 100 bp marker2.2 外源性E2对异育银鲫TSH-β mRNA表达水平的影响
注射3次与5次外源性E2后，异育银鲫TSH-β mRNA表达水平与对照组相比均未有显著差异(P>0.05)。但随着注射次数的增加，总体呈现一个升高的趋势(图 4)。另外，对照组注射5次与3次相比TSH-β mRNA的表达水平无显著差异(P>0.05)。
![]()
图 4 注射外源性E2对异育银鲫TSH-β mRNA表达水平的影响(n=6)Figure 4. Effects of exogenous E2 injection on the expression level of C. auratus TSH-β mRNA(n=6)2.3 外源性E2对异育银鲫血清甲状腺激素T3和T4含量水平的影响
注射3次和5次外源性E2后，异育银鲫血清甲状腺激素T3和T4含量水平与对照组相比均出现了显著差异(图 5)。从图 5中可以看到：注射3次后，血清T3和T4水平与对照组相比显著升高(P < 0.05)，而且血清T4水平较T3更为明显；注射5次后，血清T3和T4水平与对照组相比出现了极显著升高(P < 0.01)。另外，对照组5次与3次相比血清T3和T4水平无显著性变化(P>0.05)。
![]()
图 5 注射外源性E2对异育银鲫TH水平的影响(样本n=6)“*”，“**”分别表示差异显著(P < 0.05)和极显著(P < 0.01)Figure 5. Effects of estradiol injection on serum thyroid hormone concentration of C. auratus(n=6)The significant difference levels at 5% (P < 0.05)and 1% (P < 0.01) were denoted by "*" and "* *" respectively.3. 讨论
本研究运用SYBR Green Ⅰ荧光定量RT-PCR方法以及RIA方法检测了外源性E2对异育银鲫脑下垂体-甲状腺轴的影响。研究结果显示，在实验条件下随着注射次数的增加，外源性E2使异育银鲫TSH-β mRNA的表达量出现了逐渐升高的趋势，但与对照组相比，并无显著性差异。这与YOUNG和BALL[19]的研究结论较为相似，其研究发现外源性E2对鳉鱼(Poecilia latipinna)TSH活性无显著性影响；但与国内外一些学者如OLIVEREAU等[20]、QU等[21]的研究结果略有不同。他们研究显示外源性E2使TSH细胞活性，TSH-β mRNA的表达水平出现了显著升高。上述结果与本结果不同，可能是由于研究对象种类以及发育阶段的不同、外源激素注射剂量以及实验条件等不同而导致外源性E2作用结果出现了差异所致。
另一方面，利用RIA方法对异育银鲫血清甲状腺激素T3和T4含量水平的测定结果显示，在本实验条件下，随注射次数的增加，注射外源性E2使异育银鲫血清T3和T4水平显著升高。该结果与BANDYOPADHYAY等[22]的体外研究结果有相似之处。BANDYOPADHYAY研究发现，在培养液中加入1~100 ng E2时，对缘鳢(Channa gachua)甲状腺滤泡分泌T4具有促进作用。但与OLIVEREAU[20]、QU等[21]以及LEATHERLAND等[23]的体内研究结果不同。OLIVEREAU等[20]研究表明外源性E2能降低欧洲鳗鲡(Anguilla anguilla)血浆T3和T4的水平；QU等[21]对日本鳗鲡(A.japonica)的研究也表明注射外源性E2能降低血清T3和T4水平；LEATHERLAND等[23]研究显示，注射外源性E2能同时降低鲑科鱼类虹鳟(Salmo gairdneri)T3和T4水平，而埋植外源性E2时只对T3有降低作用，对T4水平无影响。上述结果可能由于实验条件、实验所用研究对象种类、鱼体的不同发育阶段[24]等不同。
综合本实验结果可以推测：(1)E2可能作用于鱼类的脑下垂体，增强脑垂体对促甲状腺激素释放激素的反应，从而使TSH的合成和分泌出现了一定程度的增加[25]，所以TSH-β mRNA的表达水平略有增加或显著升高。由此，可能导致了血清中甲状腺激素T3和T4水平的显著性升高。(2)E2也可能作用于甲状腺组织促使甲状腺组织释放了TH[22]，然后TH通过脑垂体-甲状腺轴的负反馈系统抑制了TSH-β mRNA表达水平的进一步升高。至于E2具体作用于异育银鲫脑垂体还是作用于甲状腺组织或对2组织同时发挥作用，还有待进一步研究。
在实验设计中，为明确外源性E2对异育银鲫脑垂体-甲状腺轴的影响而设计了E2注射组和对照组；另外，为排除实验期间异育银鲫由于获得饵料情况的不同而产生的生理差异的影响，整个实验期间动物没有给予投喂饲料。虽然在整个实验期间没有投喂饲料对异育银鲫的正常生理会有一定的影响，但对于本研究所要阐述问题的目的没有影响。国内、外研究者也有很多类似的研究论文发表[20, 26]。
本实验以异育银鲫为研究对象，从基因水平及内分泌角度研究了外源性E2对其脑垂体-甲状腺轴的影响。实验结果在一定程度上说明了外源性E2能够对异育银鲫脑垂体-甲状腺轴的正常生理功能产生一定的影响作用。从而为内分泌干扰物可能对生物机体产生一定的影响这一理论提供了一定的证据。与此同时，论文结果对于保护动物的繁衍和生存有着重要的意义，也为创建健康水产养殖标准和保护人类的生存环境提供新的理论和科学依据。
-
表 1 基础饲料组成及营养水平 (风干质量)
Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet (dry matter)
% 原料
Ingredient质量分数
Mass fraction原料
Ingredient质量分数
Mass fraction鱼粉 Fish meal 30.0 α-纤维素 α-cellulose 0.5 大豆浓缩蛋白 Soy protein concentrate 30.0 大豆卵磷脂 Soybean lecithin (50%) 1.5 玉米淀粉 Corn starch 28.0 鱼油 Fish oil 5.0 营养水平 Nutrient level 氯化胆碱 Choline chloride (50%) 1.0 粗蛋白质 Crude Protein 39.1 维生素预混料 Vitamin premix 2.0 粗脂肪 Crude lipid 11.2 矿物质预混料 Mineral premix 0.5 灰分 Ash 13.8 磷酸二氢钙 Ca(H2PO4)2 1.5 水分 Moisture 8.7 注：1. 维生素预混料为每千克饲料提供：维生素A 60.0 mg；维生素D 5 000 IU；维生素E 99.0 mg；维生素K 5.0 mg；维生素B1 50.0 mg；维生素B2 40.0 mg；维生素B6 100.0 mg；维生素B12 0.1 mg；泛酸钙 calcium pantothenate 120.0 mg；烟酸 niacin 200.0 mg；生物素 biotin 1.0 mg；肌醇 inositol 300. 0 mg；叶酸 folic acid 10.0 mg；2. 矿物质预混料为每千克饲料提供：铁 12 mg；铜 25 mg；锌 32 mg；锰 20 mg；硒 0.05 mg；碘 0.1 mg；钴5 mg；镁 0.06 mg；钾 40 mg Note: 1. Vitamin premix composition (mg·kg−1 feed): VA 60.0 mg; VD 5 000 IU; VE 99.0 mg; VK 5.0 mg; VB1 50.0 mg; VB2 40.0 mg; VB6 100.0 mg; VB12 0.1 mg; calcium pantothenate 120.0 mg; niacin 200.0 mg; biotin 1.0 mg; inositol 300. 0 mg; folic acid 10.0 mg; wheat flour was used as the carrier; 2. Mineral premix composition (mg·kg−1 feed): Fe 12 mg; Cu 25 mg; Zn 32 mg; Mn 20 mg; Se 0. 05 mg; I 0.1 mg; Co 5 mg; Mg 0.06 mg; K 40 mg 
下载: 导出CSV
表 2 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾血清总蛋白质量浓度的影响
Table 2 Effect of dietary β-1,3-glucan on TP mass concentration in serum of L. vannamei
mg·mL−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 65.81±1.73A 65.81±1.73A 65.81±1.73A 65.81±1.73A 14 66.35±1.45aA 71.83±2.73abA 80.50±5.30bAB 66.3±3.12aAB 28 70.90±3.25abA 73.56±4.55abA 77.06±2.51bA 63.83±1.64aA 42 70.67±3.85aA 77.47±4.58abAB 93.05±1.85bB 69.50±1.50aAB 56 77.06±1.56AB 76.56±3.75AB 75.40±4.35A 73.90±2.26B 70 77.96±5.74AB 71.10±6.25A 80.93±3.39AB 73.30±4.23B 84 85.13±4.94B 88.33±1.73B 79.53±5.17AB 85.07±3.00C 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan 0.002 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days 0.042 注：数据上标小写字母表示同一时间不同组间的显著性差异；大写字母表示同一组不同时间的显著性差异 (P<0.05)，下表同此 Note: The lowercase letters represent significant differences between groups at the same time; capital letters on the data represent significant differences in different periods of the same group (P<0.05). The same case in the following tables.
下载: 导出CSV
表 3 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾血清胆固醇浓度的影响
Table 3 Effect of dietary β-1,3-glucan on cholesterol concentration in serum of L. vannamei
mmol·L−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 1.15±0.08B 1.15±0.08BC 1.15±0.08C 1.15±0.08B 14 1.09±0.18B 0.99±0.03AB 1.02±0.15C 1.02±0.04B 28 0.57±0.01A 0.72±0.09A 0.58±0.02A 0.60±0.02A 42 0.78±0.07aA 1.36±0.17bC 0.88±0.04aBC 0.98±0.06aB 56 0.68±0.04aA 1.29±0.12bBC 0.70±0.07aAB 0.98±0.15abB 70 0.67±0.01aA 0.82±0.03cA 0.80±0.04bcABC 0.77±0.05abcAB 84 0.74±0.02aA 0.97±0.09bAB 0.66±0.02aAB 0.81±0.03abAB 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan <0.001 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days 0.007
下载: 导出CSV
表 4 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾血清甘油三酯浓度的影响
Table 4 Effect of dietary β-1,3-glucan on triglycerides concentration in serum of L. vannamei
mmol·L−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 1.32±0.09B 1.32±0.09B 1.32±0.09C 1.32±0.09C 14 0.97±0.12AB 1.07±0.08B 1.16±0.21C 0.77±0.13BC 28 0.24±0.02A 0.41±0.05A 0.36±0.03A 0.33±0.01A 42 0.65±0.11aAB 1.74±0.14cC 0.96±0.05abBC 1.06±0.13bC 56 0.50±0.09aA 1.86±0.39bC 0.67±0.15aAB 1.11±0.10aC 70 0.38±0.01aA 0.65±0.05cAB 0.52±0.03abcA 0.56±0.08bcAB 84 0.45±0.02aA 0.69±0.15bC 0.35±0.03aA 0.52±0.02abAB 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan <0.001 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days <0.001
下载: 导出CSV
表 5 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾血清葡萄糖浓度的影响
Table 5 Effect of dietary β-1,3–glucan on glucose concentration in serum of L. vannamei
mmol·L−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 4.29±0.32C 4.29±0.32BC 4.29±0.32C 4.29±0.32B 14 3.73±0.81BC 4.13±0.17BC 3.16±0.72ABC 2.80±0.66A 28 1.63±0.14A 3.03±0.41AB 2.36±0.68ABC 2.33±0.37A 42 3.60±0.45aBC 5.23±0.54bC 3.96±1.2aC 4.66±0.26abB 56 3.26±0.61ABC 4.46±1.09BC 3.03±0.67ABC 3.00±0.68A 70 1.80±0.30AB 2.00±0.36A 2.05±0.35A 2.76±0.55A 84 3.53±0.71BC 2.30±0.06AB 2.06±0.34A 2.86±0.27A 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan 0.201 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days 0.611
下载: 导出CSV
表 6 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾血清乳酸盐浓度的影响
Table 6 Effect of dietary β-1,3-glucan on lactate concentration in serum of L. vannamei
mmol·L−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 918.24±120.51B 918.24±120.51B 918.24±120.51B 918.24±120.51B 14 137.00±4.01aA 916.50±58.50bB 386.00±68.07aA 355.67±9.93aA 28 72.00±2.30aA 326.66±39.67cA 215.00±13.00bcA 351.00±65.51cA 42 208.00±85.55A 331.00±73.01A 152.33±61.57A 326.33±56.17A 56 188.00±13.00A 349.66±119.38A 169.50±19.50A 368.66±114.39A 70 49.66±12.86aA 69.33±1.85abA 48.00±11.59aA 100.67±23.81bA 84 116.50±53.50abA 46.67±10.83aA 70.33±22.60aA 167.50±57.50bA 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan <0.001 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days 0.205
下载: 导出CSV
表 7 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾肌肉超氧化物歧化酶活性的影响
Table 7 Effect of dietary β-1,3-glucan on SOD activity in muscle of L. vannamei
U·mL−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 3.19±0.14A 3.19±0.14A 3.19±0.14A 3.19±0.14A 14 4.24±0.91A 3.37±0.23A 4.18±0.67A 3.35±0.33A 28 6.29±0.57B 6.71±0.84B 5.05±1.13AB 6.17±0.23B 42 6.29±0.23B 6.29±0.48B 6.21±0.41ABC 5.61±0.14B 56 7.68±0.16aB 9.75±0.12bC 9.32±0.81abC 9.37±0.33abC 70 7.69±0.49B 8.89±1.09BC 7.54±0.83BC 9.05±0.34C 84 6.28±0.74B 6.57±1.33B 7.13±1.54ABC 6.54±1.61B 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan 0.711 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days 0.797
下载: 导出CSV
表 8 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾肌肉过氧化氢酶活性的影响
Table 8 Effect of dietary β-1,3-glucan on CAT activity in muscle of L. vannamei
U·mL−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 2.68±0.79A 2.68±0.79A 2.68±0.79A 2.68±0.79A 14 1.34±0.49aA 6.41±0.72bBC 3.19±1.10aA 3.05±0.54aAB 28 2.97±0.25aA 4.74±0.91bB 2.87±0.35aA 2.25±0.17aA 42 2.02±1.37A 1.32±0.55A 1.24±0.11A 4.37±2.04AB 56 8.76±1.59aB 7.56±0.79aC 14.29±0.28bB 5.88±2.05aC 70 2.61±0.49A 1.96±0.18A 1.92±1.34A 2.30±0.83A 84 0.79±0.51aA 1.85±0.03abA 2.03±1.02abA 2.23±0.59abA 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan 0.253 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days 0.001
下载: 导出CSV
表 9 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾肌肉溶菌酶活性的影响
Table 9 Effect of dietary β-1,3-glucan on lysozyme activity in muscle of L. vannamei
U·mL−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 9.45±0.31B 9.45±0.31A 9.45±0.31A 9.45±0.31B 14 13.03±0.26aB 26.99±0.93bC 27.92±1.59bB 13.16±1.46aB 28 1.32±0.55aA 8.24±0.26bA 6.47±2.39abA 4.69±1.98abA 42 1.87±0.41aA 9.12±1.32cA 7.96±2.17bcA 3.40±1.65abA 56 2.22±0.63aA 15.13±0.21bB 11.53±3.29bA 2.32±0.42aA 70 0.89±0.38aA 8.39±2.79bA 8.74±2.82bA 2.44±1.41abA 84 1.90±0.43aA 11.81±1.09bAB 13.13±0.24bA 1.98±0.14aA 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan <0.001 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days <0.001
下载: 导出CSV
表 10 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾肌肉抗超氧阴离子活性的影响
Table 10 Effect of dietary β-1,3-glucan on level of anti-O2 − in muscle of L. vannamei
U·mL−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 7.92±0.83A 7.92±0.83A 7.92±0.83A 7.92±0.83A 14 8.27±0.54aA 10.75±0.12abA 14.32±0.61bcB 11.75±1.59abcAB 28 13.04±0.43AB 14.01±1.44B 12.82±0.79AB 13.84±0.95B 42 14.79±0.77B 16.47±0.65B 14.44±0.99B 12.93±0.46AB 56 15.18±0.40aB 18.41±0.83abC 21.15±1.65bC 17.34±0.90abC 70 12.96±0.33AB 13.41±0.51B 13.02±1.09AB 12.71±1.01AB 84 11.02±0.85aAB 10.16±0.57aA 10.44±1.02aA 10.01±0.91aA 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3–葡聚糖 β-1,3-glucan 0.019 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days 0.022
下载: 导出CSV
表 11 β-1,3-葡聚糖对凡纳滨对虾肌肉总抗氧化能力的影响
Table 11 Effect of dietary β-1,3-glucan on level of T-AOC in muscle of L. vannamei
U·mL−1 天数
Dayβ-1,3-葡聚糖水平 β-1,3-glucan level 0 250 mg·kg−1 500 mg·kg−1 1 000 mg·kg−1 0 0.32±0.02 0.32±0.02A 0.32±0.02AB 0.32±0.02A 14 0.32±0.11 0.41±0.02A 0.40±0.04AB 0.30±0.05A 28 0.38±0.04 0.51±0.05AB 0.40±0.09AB 0.44±0.08AB 42 0.39±0.07 0.44±0.08A 0.26±0.03A 0.31±0.02A 56 0.41±0.08 0.42±0.11A 0.44±0.06AB 0.53±0.02B 70 0.39±0.11 0.33±0.06A 0.51±0.08B 0.44±0.09AB 84 0.49±0.02 0.64±0.05B 0.51±0.03B 0.41±0.04AB 双因素方差分析P值 P-value of Two-way ANOVA β-1,3-葡聚糖 β-1,3-glucan 0.406 试验天数 Experimental days <0.001 β-1,3-葡聚糖×试验天数 β-1,3-glucan×Experimental days 0.400
下载: 导出CSV
-
[1] SAOUD I P, DAVIS D A, ROUSE D B. Suitability studies of inland well waters for Litopenaeus vannamei culture[J]. Aquaculture, 2003, 217(1): 373-383.
[2] BRITOA R, CHIMAL M E, ROSAS C. Effect of salinity in survival, growth, and osmotic capacity of early juveniles of Farfantepenaeus brasiliensis (Decapoda: Penaeidae)[J]. J Exp Mar Biol Ecol, 2000, 244(2): 253-263. doi: 10.1016/S0022-0981(99)00142-2
[3] WANG L U, CHEN J C. The immune response of white shrimp Litopenaeus vannamei and its susceptibility to Vibrio alginolyticus at different salinity levels[J]. Fish Shellfish Immunol, 2005, 18(4): 269-278. doi: 10.1016/j.fsi.2004.07.008
[4] MELLO M M M, FARIA C F P, ZANUZZO F S, et al. β-glucan modulates cortisol levels in stressed pacu (Piaractus mesopotamicus) inoculated with heat-killed Aeromonas hydrophila[J]. Fish Shellfish Immun, 2019, 93(6): 1076-1083.
[5] JAVAD J M, ABDOLMOHAMMAD A K, HAME P, et al. Effects of dietary β-glucan, mannan oligosaccharide, Lactobacillus plantarum and their combinations on growth performance, immunity and immune related gene expression of Caspian trout, Salmo trutta caspius (Kessler, 1877)[J]. Fish Shellfish Immun, 2019, 91(2): 202-208.
[6] ZHAO H X, CAO J M, WANG A L, et al. Effect of long-term administration of dietary β-1, 3-glucan on growth, physiological and immune responses in Litopenaeus vannamei (Boone, 1931)[J]. Aquacult Int, 2012, 20(1): 145-158. doi: 10.1007/s10499-011-9448-6
[7] BAI N, ZHANG W B, MAI K S, et al. Effects of discontinuous administration of β-glucan and glycyrrhizin on the growth and immunity of white shrimp Litopenaeus vannamei[J]. Aquaculture, 2010, 306(2): 218-224.
[8] SORAAT A, SASIMANAS U, CHEEWARAT P, et al. Feeding-regimen of β-glucan to enhance innate immunity and disease resistance of Nile tilapia, Oreochromis niloticus Linn., against Aeromonas hydrophila and Flavobacterium columnare[J]. Fish Shellfish Immun, 2019, 87(1): 120-128.
[9] ZHAO H X, CAO J M, WANG A L, et al. Effect of dietary β-1, 3-glucan on the immune response of Litopenaeus vannamei exposed to nitrite-N[J]. Aquacult Nutr, 2012, 18(3): 272-280. doi: 10.1111/j.1365-2095.2011.00893.x
[10] CHAND R K, SAHOO P K, KUMARI J, et al. Administration of bovine lactoferrin influences the immune ability of the giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii (de Man) and its resistance against Aeromonas hydrophila infection and nitrite stress[J]. Fish Shellfish Immun, 2006, 21(1): 119-129.
[11] LI T, LI E, SUO Y, et al. Energy metabolism and metabolomics response of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei to sulfide toxicity[J]. Aquat Toxicol, 2017, 183(1): 28-37.
[12] SHEN M, CUI Y, WANG R, et al. Acute response of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei to high-salinity reductions in osmosis-, metabolism-, and immune-related enzyme activities[J]. Aquacult Int, 2020, 28(1): 31-39. doi: 10.1007/s10499-019-00441-y
[13] Association of Official Analytical Chemists (AOAC). Official Methods of Analysis[S]. 14th ed. Arlington, VA: 1984: 503-515.
[14] ZHANG L L. Effects of dissolved oxygen, starvation, temperature, and salinity on the locomotive ability of juvenile Chinese shrimp Fenneropenaeus chinensis[J]. Ethol Ecol Evol, 2019, 31(2): 155-172. doi: 10.1080/03949370.2018.1526215
[15] MALTEZ L C, BARBAS L A L, OKAMOTO M H, et al. Secondary stress responses in juvenile Brazilian flounder, Paralichthys orbignyanus, throughout and after exposure to sublethal levels of ammonia and nitrite[J]. J World Aquacult Soc, 2019, 50(2): 346-358. doi: 10.1111/jwas.12497
[16] PERAZZOLO L M, GARGIONI R, OGLIARI P, et al. Evaluation of some hemato-immunological parameters in the shrimp Farfantepenaeus paulensis submitted to environmental and physiological stress[J]. Aquaculture, 2002, 214(1): 19-33.
[17] CUZON G, LAWRENCE A, GAXIOLA G, et al. Nutrition of Litopenaeus vannamei reared in tanks or in ponds[J]. Aquaculture, 2004, 235(1): 513-551.
[18] LÓPEZ N, CUZONB G, GAXIOLAC G, et al. Physiological, nutritional, and immunological role of dietary β 1-3 glucan and ascorbic acid 2-monophosphate in Litopenaeus vannamei juveniles[J]. Aquaculture, 2003, 224(1): 223-243.
[19] 胡亚军, 胡毅, 石勇, 等. 不同形式蛋氨酸对黄鳝生长、血清生化、血清游离氨基酸含量及肌肉品质的影响[J]. 水生生物学报, 2019, 43(6): 1155-1163. doi: 10.7541/2019.136 [20] MARANGOS C, BROGREN C H, ALLIOT E. The influence of water salinity on the free amino acid concentration in muscle and hepatopancreas of adult shrimps, Penaeus japonicus[J]. Biochem Syst Ecol, 1989, 17(3): 589-594.
[21] IMSLAND A K, FOSS A, GUNNARSON S, et al. The interaction of temperature and salinity on growth and food conversion in juvenile turbot (Soophthalmus maximum)[J]. Aquaculture, 2001, 198(3): 353-367.
[22] LI H, XU C, ZHOU L, et al. Beneficial effects of dietary β-glucan on growth and health status of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei at low salinity[J]. Fish Shellfish Immun, 2019, 91(4): 315-324.
[23] HILL A D, TAYLOR A C, STRANG R H C. Physiological and metabolic responses of the shore crab Carcinus maenas (L.) during environmental anoxia and subsequent recovery[J]. J Exp Mar Biol Ecol, 1991, 150(1): 31-50. doi: 10.1016/0022-0981(91)90104-5
[24] 胡文娟, 房文红, 江敏, 等. 淡水养殖凡纳滨对虾IHHNV-WSSV共感染率调查分析及其对免疫相关酶活性的影响[J]. 上海海洋大学学报, 2015, 24(5): 685-693. [25] NIU J, XIE S W, FANG H H, et al. Dietary values of macroalgae Porphyra haitanensis in Litopenaeus vannamei under normal rearing and WSSV challenge conditions: effect on growth, immune response and intestinal microbiota[J]. Fish Shellfish Immun, 2018, 81(1): 135-149.
[26] MAHER P, HANNEKEN A. Flavonoids protect retinal ganglion cells from oxidative stress-induced death[J]. Invest Ophth Vis Sci, 2005, 46(12): 4796-4803. doi: 10.1167/iovs.05-0397
[27] CHANG C F, SU M S, CHEN H Y, et al. Dietary β-1, 3-glucan effectively improves immunity and survival of Penaeus monodon challenged with white spot syndrome virus[J]. Fish Shellfish Immun, 2003, 15(4): 297-310. doi: 10.1016/S1050-4648(02)00167-5
[28] CHENG W, LIU C H, KUO C M, et al. Dietary administration of solium alginate enhances the immune ability of white shrimp Litopenaeus vannamei and its resistance against Vibrio alginolyticus[J]. Fish Shellfish Immun, 2005, 18(1): 1-12. doi: 10.1016/j.fsi.2004.03.002
[29] LIU C H, YEH S P, KUO C M, et al. The effect of sodium alginate on the immune response of tiger shrimp via dietary administration: activity and gene transcription[J]. Fish Shellfish Immun, 2006, 21(4): 442-53. doi: 10.1016/j.fsi.2006.02.003
[30] 宋泰, 黄艇, 张晨捷, 等. 养殖水体中二种溶解态铜对凡纳滨对虾生长和免疫功能的影响[J]. 上海海洋大学学报, 2019, 28(1): 75-83. [31] 方金龙, 王元, 房文红, 等. 氨氮胁迫下白斑综合征病毒对凡纳滨对虾的致病性[J]. 南方水产科学, 2017, 13(4): 52-58. [32] HUANG X, ZHOU H, ZHANG H. The effect of Sargassum fusiforme polysaccharide extracts on vibriosis resistance and immune activity of the shrimp, Fenneropenaeus chinensis[J]. Fish Shellfish Immun, 2006, 20(5): 750-757. doi: 10.1016/j.fsi.2005.09.008
[33] BAGNI M, ROMANO N, FINOIA M G, et al. Short- and long-term effects of a dietary yeast β-glucan (Macrogard) and alginic acid (Ergosan) preparation on immune response in sea bass (Dicentrarchus labrax)[J]. Fish Shellfish Immun, 2005, 18(4): 311-325. doi: 10.1016/j.fsi.2004.08.003
[34] de BAULNY M O, QUENTEL C, FOURNIER V, et al. Effect of long-term oral administration of β-glucan as an immunostimulant or an adjuvant on some non-specific parameters of the immune response of turbot Scophthalmus maximus[J]. Dis Aquat Organ, 1996, 26(2): 139-47.
计量
- 文章访问数:
- HTML全文浏览量:
- PDF下载量:
粤公网安备 44010502001741号
