Study on respiratory metabolism changes of juvenile Penaeus monodon following strenuous activity
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摘要:
文章以斑节对虾 (Penaeus monodon) 为研究对象，在实验室水槽模拟幼虾力竭运动情况，探究幼虾力竭运动后的呼吸代谢恢复规律，以期为斑节对虾养殖生产和增殖放流提供科学依据。结果显示，在力竭后的各恢复时间点，斑节对虾幼虾肝胰腺总蛋白质 (TP)、乳酸 (LA)，以及谷草转氨酶 (AST)、谷丙转氨酶 (ALT) 、乳酸脱氢酶 (LDH) 和琥珀酸脱氢酶(SDH)活性均存在显著差异 (P<0.05)；腹部肌肉中LA、LDH活性存在显著差异。肝胰腺TP在恢复后第4小时显著高于对照组，第48小时恢复至对照组水平；LA在恢复后第12小时显著高于对照组，第24小时恢复至对照组水平；AST和ALT活性在运动后第8至第12小时内显著上升，第24小时恢复至对照组水平；LDH和SDH活性持续上升，恢复后第12 小时显著高于对照组，第48 小时恢复至对照组水平。肌肉糖原 (GLY) 在运动后显著下降，恢复后第12小时恢复至对照组水平；LA在运动后显著升高，第8 小时下降至对照组水平；LDH活性运动后显著升高，第1至第12小时内持续升高，第72小时仍处于显著高于对照组水平。幼虾在力竭运动后无氧代谢显著增强，第8 小时可再次进行力竭运动；肝胰腺为幼虾清除代谢物的器官，对运动后呼吸代谢恢复起到重要作用。
Abstract:In order to provide scientific basis for the breeding and releasing of Penaeus monodon, we simulated the exhausted movement of the juveniles in the laboratory flume, then investigated their respiratory metabolic recovery after exhaustion exercise. With different recovery times after exhaustive exercise, there were significant changes in the total protein content (TP) and lactic acid (LA) concentrations as well as the activities of aspartate aminotransferase (AST), alanine aminotransferase (ALT), lactate dehydrogenase (LDH) and succinate dehydrogenase (SDH) in the hepatopancreas of the juveniles (P<0.05). There was significant difference in the LA concentration and LDH activity in abdominal muscles. The TP concentration in hepatopancreas was significantly higher than that of the control group after 4 h of exhaustive exercise, and returned to the control level at 48th hour. The LA concentration of hepatopancreas was significantly higher than that of the control group at 12th hour, and returned to the control level at 24th hour. The activities of AST and ALT in hepatopancreas increased significantly during the 8th to 12th hour, and returned to the control level at 24th hour. The activities of LDH and SDH increased and were significantly higher than that of the control group at 12th hour, and returned to the control level at 48th hour. The glycogen concentration (GLY) in the muscle decreased significantly after exhaustive exercise and returned to the control level at the 12th hour. The LA concentration increased significantly after exhaustive exercise and decreased to the control level at 8th hour. The LDH activity increased significantly after exhaustive exercise, and continued to increase during 1st to 12th hour, and remained significantly higher than that of the control group at 72th hour. The anaerobic metabolism of the juveniles was significantly enhanced after exhaustive exercise, and exhaustive exercise could be performed again after 8 h; heaptopancreas was the place where the juveniles cleared metabolites, and began to deal with internal environment imbalance after exercise.
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Keywords:
- Penaeus monodon /
- Respiratory metabolism /
- Strenuous activity /
- Recovery process
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草鱼(Ctenopharyngodon idella)为草食性鱼类，2017年中国草鱼养殖产量已达534.56×104 t[1]，居我国淡水鱼之首。由于当前草鱼主要为人工养殖，饲料成为草鱼高密度养殖条件下的主要食物来源。但是，高密度养殖模式以及饲料营养不平衡等容易引起草鱼肝胰脏肿大、肝脂过量沉积以及肝胰脏颜色变化等，继而导致草鱼肝胰脏功能损伤[2-4]。肝胰脏是鱼类消化系统的重要构成部分，主要参与体内物质代谢和离子转运，肝功能受水温、病菌、饲料营养水平等多种因素影响。近年来，鱼类肝脂过量蓄积及肝功能变化受到了不少研究者的关注。已有研究对草鱼不同颜色肝胰脏脂肪含量或脂肪蓄积程度进行了分析和评价[5]，也对饲料蛋白质、脂肪、碳水化合物水平及来源与草鱼肝胰脏脂肪蓄积之间的关系进行了探索[6-8]，还对不同脂肪蓄积程度草鱼肝胰脏中脂肪酸组成及含量进行了检测和分析[9]。但是，对草鱼肝色异常变化的具体原因尚缺乏研究。
矿物质是鱼类的必需营养素，饲料、养殖水体及底泥中各种矿物质的存在形式和含量等均可影响鱼类的生长和健康。目前，有关矿物质对鱼类肝胰脏影响的研究中，以水体和饲料中铜(Cu)[10]、铁(Fe)[11]、锌(Zn)[12]、硒(Se)[13]等对鱼类肝胰脏功能的影响研究较多，但主要集中在对其组织结构和抗氧化能力的影响方面。有关其他矿物质对草鱼肝胰脏功能的影响，以及不同矿物质对草鱼肝胰脏颜色以及脂肪沉积等方面的影响研究较少。草鱼肝胰脏颜色发白、发黄等常被认为是肝脂过量蓄积导致的异常颜色和不正常现象[5]，并被用作草鱼脂肪肝的初步诊断依据，而草鱼脂肪肝的病理特征之一是贫血[4]。许多矿物质，如Fe、Cu、钴(Co)等不仅参与动物体内的能量代谢，还参与造血机能并影响肝功能。例如，余飞苑等[14]发现持续高脂饮食能够引起脂代谢紊乱，同时伴有矿物元素代谢紊乱，且矿物元素代谢紊乱的程度与高脂饮食和脂肪代谢紊乱的持续时间关系密切。这表明动物肝脂沉积量与矿物质代谢之间存在联系。但有关草鱼肝胰脏的颜色、矿物质沉积量、脂肪沉积量这三者之间的关系还缺少研究。本文研究了养殖草鱼肝胰脏颜色与脂肪及矿物质含量间的关系，旨在为后继从矿物质角度探讨草鱼肝脂过量蓄积的分子机理奠定基础，也可为改善草鱼的饲料配方并促进草鱼的健康养殖等提供参考。
1. 材料与方法
1.1 草鱼肝胰脏
于2018年1—2月，分别从湖南省常德市武陵区南坪岗乡渔场不同养殖户的养殖池塘中分4批随机采集养殖草鱼，每批10尾，平均体质量为(2.18±0.11) kg。不同养殖户投喂不同饲料企业生产的渔用配合饲料。将草鱼解剖，记录肝胰脏颜色，将肝胰脏按暗红肝、花肝、白肝和黄肝(图1)分别装入不同样品袋中，−80 ℃冷藏。从不同颜色肝胰脏样品中各选择颜色最接近的6份样品，用于水分、脂肪和矿物质的检测和分析。
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图 1 草鱼不同颜色肝胰脏a. 白肝；b. 花肝；c. 黄肝；d. 暗红肝；图中箭头所指即为草鱼肝胰脏Figure 1. Grass carp hepatopancreas with different coloursa. white hepatopancreas; b. spot hepatopancreas; c. yellow hepatopancreas; d. kermesinus hepatopancreas; the arrows refer to the hepatopancreas of grass carp.1.2 药品、试剂
无水乙醚、硝酸、高氯酸等均为国产分析纯；多元素混合标准液(各矿物质元素质量浓度均为100 mg·L−1)购于国家标准物质网；实验用水为超纯水。
1.3 仪器与设备
真空冷冻干燥机(LGJ-10，北京四环科学仪器厂)、电热鼓风干燥箱(GFL-125，天津市莱玻特瑞仪器设备有限公司)、电子天平(BS124，感量±0.1 mg，海精密仪器仪表有限公司)、超低温冰箱(DW-86L388A，海南赛乐敏生物科技有限公司)、超纯水仪(ULUP-Ⅰ，西安优普仪器设备有限公司)、高速万能粉碎机(FW100，天津市泰斯特仪器有限公司)、ICP-AES仪[Optima 8300，珀金埃尔默仪器(上海)有限公司]、电热恒温水浴锅(HH-S4，北京科伟永兴仪器有限公司)。
1.4 ICP-AES仪器工作条件
等离子冷却气流为8.0 L·min−1，辅助气体流速为0.2 L·min−1，雾化器流量为0.50 L·min−1，功率为1.30 kW，观测高度为15 mm，观测方式为轴式。
1.5 样品制备与肝胰脏水分含量测定
从−80 ℃超低温冰箱中取出肝胰脏样品，称取后置于已称质量的洁净干燥铝盒中，迅速于预冷了30 min的真空冷冻干燥机(−46 ℃)中冷冻干燥24 h。取出样品，先称质量，以计算样品的水分含量；再用高速万能粉碎机将干燥好的样品依次粉碎，分装于样品袋中(图2)，并于干燥器中保存，待测。
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图 2 已制备好的草鱼不同颜色肝胰脏样品a. 白肝；b. 花肝；c. 黄肝；d. 暗红肝Figure 2. Prepared samples of grass carp hepatopancreas with different coloursa. white hepatopancreas; b. spot hepatopancreas; c. yellow hepatopancreas; d. kermesinus hepatopancreas1.6 草鱼不同颜色肝胰脏总脂肪含量测定
参照GB/T 14772—2008《食品中粗脂肪的测定》[15]，采用索氏提取法测定不同颜色肝胰脏样品中总脂肪含量。
1.7 草鱼不同颜色肝胰脏矿物元素含量测定
采用湿法消化法处理样品，即准确称取约0.3 g (精确至0.1 mg)已制备好的样品于消化管中，向消化管中加入10 mL混合酸[V(硝酸)∶V(高氯酸)=4∶1]，于消化炉中消解。当消化管内液体变澄清和透明，且管底仅剩约1~2 mL消化液时，关炉，冷却；向各管中加入10 mL超纯水，加热赶酸；将赶酸后的样液无损地转移到100 mL容量瓶中，定容至刻度，摇匀。用w=2%硝酸制备多元素混合标准工作液，各元素标准系列梯度为0.1、0.2、0.5、1.0 μg·mL−1。采用电感耦合等离子体原子发射光谱仪(ICP-AES)测定标准溶液与待测溶液中钙(Ca)、镁(Mg)、Fe、铬(Cr)、Zn、Cu、砷(As)、锰(Mn)、Se、汞(Hg)、镉(Cd)、铅(Pb)12种矿物元素含量。
1.8 数据分析
采用Excel 2010软件对实验数据进行整理和计算，结果以“平均值±标准差(
$ \overline X \pm {\rm{SD}}$ )”表示；采用SPSS 19.0软件对结果进行单因素ANOVA方差分析与Duncan多重比较，显著性水平设为0.05。2. 结果
2.1 不同颜色草鱼肝胰脏水分和总脂肪质量分数
不同颜色草鱼肝胰脏水分和总脂肪质量分数均存在显著差异(P<0.05，表1)。草鱼暗红肝、花肝、白肝和黄肝4种不同颜色肝胰脏中，以暗红肝水分质量分数最高，花肝、白肝和黄肝的水分质量分数依次明显降低。与暗红肝相比，花肝、白肝和黄肝中总脂肪质量分数则均显著升高(P<0.05)，分别为暗红肝脂肪质量分数的1.38、2.06和2.56倍。
表 1 越冬期草鱼不同颜色肝胰脏水分和总脂肪质量分数 (鲜样)Table 1. Moisture and total lipid contents in hepatopancreas with different colours of grass carp during winter (fresh sample)% 指标
indicator暗红肝
kermesinus hepatopancreas花肝
spot hepatopancreas白肝
white hepatopancreas黄肝
yellow hepatopancreas水分 moisture 77.78±1.30a 70.98±2.52b 67.91±1.56c 64.01±1.24d 总脂肪 total lipid 2.06±0.19d 2.85±0.17c 4.24±0.45b 5.28±0.31a 注：同行数据肩标字母不同表示差异显著 (P<0.05)
Note: Difference lowercase letters indicate significant difference between different colours hepatopancreas (P<0.05).2.2 不同颜色草鱼肝胰脏矿物元素质量分数
被检的12种矿物质中，不同颜色草鱼肝胰脏均以Ca质量分数最高且差异显著(P<0.05)，以暗红肝Ca质量分数最低，花肝、白肝和黄肝均高于暗红肝，白肝最高；不同颜色草鱼肝胰脏中微量元素则以Fe质量分数最高，相对于暗红肝，白肝Fe质量分数明显降低，但黄肝Fe质量分数则显著上升 (P<0.05)，花肝Fe质量分数与暗红肝相同 (表2)。不同颜色草鱼肝胰脏中均未检出Pb、Hg和Cd，但均含有不同程度的As，除花肝As质量分数与暗红肝接近外，白肝和黄肝中As质量分数均显著上升 (P<0.05)。总体来看，与暗红肝相比，花肝、白肝和黄肝中的Ca、Cr、Zn、Se质量分数均显著上升；在检出的矿物元素中，花肝仅Cu和As的含量低于暗红肝，白肝仅Mg、Fe、Cu质量分数低于暗红肝，而黄肝中所有被检矿物质均高于暗红肝。
表 2 越冬期草鱼不同颜色肝胰脏矿物元素质量分数 (鲜样)Table 2. Minerals contents in hepatopancreas with different colors of grass carp during winter (fresh sample)mg·kg−1 元素
mineral暗红肝
kermesinus hepatopancreas花肝
spot hepatopancreas白肝
white hepatopancreas黄肝
yellow hepatopancreas钙 Ca 443.82±80.88a 722.23±94.14b 975.62±49.42c 644.23±58.38b 镁 Mg 225.44±10.81b 230.92±30.04b 170.23±15.32a 299.43±15.62c 铁 Fe 218.84±3.90a 218.82±6.21a 196.74±5.04a 428.94±4.83b 铬 Cr 12.18±2.06a 22.86±2.49c 25.58±1.42d 18.00±1.52b 锌 Zn 11.74±1.19a 21.08±2.51c 24.12±1.71d 17.24±2.16b 铜 Cu 13.38±2.16b 2.39±0.68a 4.70±0.90a 25.22±4.36c 砷 As 4.2±0.65a 4.07±0.65a 6.50±1.29b 8.00±1.17c 锰 Mn 0.26±0.56a 3.13±0.71ab 2.63±0.87a 4.1±1.55b 硒 Se 0.7±0.64a 3.36±1.38b 3.78±1.86b 5.3±1.48c 汞 Hg − − − − 镉 Cd − − − − 铅 Pb − − − − 注：同行数据不同肩标字母表示差异显著 (P<0.05)，相同肩标字母表示差异不显著 (P>0.05)； −. 表示未检出 Note: Different lowercase letters indicate significant difference (P<0.05), while the same lowercase letters indicate no significant difference (P>0.05); −. undetected 3. 讨论
3.1 草鱼肝胰脏颜色与脂肪含量间的关系
田娟等[5]将草鱼肝胰脏按颜色分为正常肝、花肝、发白肝和发黄肝4类，发现其成鱼肝胰脏脂肪含量会随水分含量降低而增加，且随着肝胰脏颜色由正常肝色转变成花肝、发白肝和发黄肝，肝内脂肪含量也随之明显递增；与本研究结果非常相似。但田娟等[5]测得草鱼成鱼正常肝、花肝、发白肝和发黄肝内平均脂肪质量分数分别为2.29%、6.83%、9.87%和13.41%，均明显高于本研究中相应颜色草鱼肝胰脏中的脂肪质量分数(2.06%、2.85%、2.24%和5.28%)，即相同颜色的草鱼肝胰脏中脂肪质量分数存在较大差异。前者样品采集时间为9—10月，此时草鱼经过较长时间大量摄食配合饲料后，部分草鱼由于摄入的饲料能量营养素过剩[16]，或因为饲料原料不当[17]，以及一些功能物质缺乏[18-19]等导致肝内脂肪蓄积较多，进而使肝功能受损，并呈现出不同的颜色变化。本研究中样品采集时间为1—2月，此时草鱼正处于越冬期，草鱼因水温低停止摄食，肝内脂肪处于不断动员阶段，肝内脂肪含量较9—10月明显下降。养殖鱼类，如草鱼、团头鲂 (Megalobrama amblycephala)等肝胰脏颜色变黄、变浅或变成花肝等，常被认为是肝胰脏脂肪过量蓄积的标志之一，且草鱼肝胰脏脂肪蓄积量超过5%及团头鲂肝胰脏脂肪质量分数超过8.48%即为肝脂过量蓄积或脂肪肝[4-5, 20-21]。综上，草鱼和团头鲂的肝脂质量分数分别大于5%和8.48%时，其肝胰脏才会显现异常肝色。但是，相对于其他研究者9—10月高脂肪含量的异常颜色草鱼肝胰脏，本研究中1—2月越冬期低脂肪含量的草鱼肝胰脏也呈现出异常肝色。越冬期草鱼脂肪含量较低的肝胰脏呈现出来的异常颜色极有可能与其前期已遭受过肝脂过量蓄积有关，且因脂肪过量蓄积导致的异常肝色一旦形成可能不会再因肝脂含量的下降而恢复至正常色，即草鱼肝色变化很可能不可逆转，但具体情况有待需深入研究。由此可见，肝胰脏颜色可以作为草鱼肝脂含量的定性评价指标，但仅适用于评价同一时期或相同季节的草鱼，而不适用于评价不同时期或不同季节。总之，同一时期或相同季节，草鱼随暗红肝色转变成花肝、发白肝和发黄肝色，其脂肪含量逐渐上升。
3.2 草鱼肝胰脏脂肪与矿物质含量间的关系
有关外源矿物质对水产动物肝脏的影响已有不少报道，如水体Cr3+暴露可使金鱼肝脏遭受氧化损伤并损害肝功能[22]，而50~150 mL·L−1 Co2+暴露同样也会使金鱼肝脏内增加30%~66%的脂质过氧化产物，同时肝内超氧化物歧化酶和过氧化氢酶等抗氧化酶活性明显受到抑制[23]；水体Cu暴露可以增加鱼体内的脂肪沉积量[23-25]，由于水体Cu水平上升可能直接导致鱼肝中Cu含量增加，但本研究发现草鱼肝脂含量并未随肝Cu含量的增加而上升；Ca和Cu联合暴露则可影响黄颡 (Pelteobagrus fulvidraco)的肝脂酶活性，同时会改变肝中Cu的沉积量，且相同Cu水平下，随着Ca的添加，肝受损程度会减轻[26]；Hg暴露也会影响草鱼肝胰脏功能，但Hg浓度不同对肝胰脏的影响程度也不同[27]。当草鱼幼鱼饲料中添加较高水平(3.2 mg·kg−1)的吡啶甲酸铬，相对于低质量分数组(0.8 mg·kg−1)，草鱼体脂肪含量下降，表明高质量分数Cr饲料可降低草鱼肝脂沉积量，即一定范围内饲料Cr水平与草鱼肝脂含量间呈负相关[28]，这与本研究结果相反，本研究中肝脂含量高的草鱼肝胰脏中Cr含量也高；草鱼幼鱼饲料中Zn质量分数超过53 mg·kg−1时，草鱼体脂和肝脂含量均显著升高(P<0.05)[29]，本研究中异常颜色草鱼肝胰脏脂肪及Zn含量也均高于正常颜色草鱼肝胰脏，表明草鱼肝胰脏脂肪沉积量增加以及颜色发生异常变化可能与饲料或水体中Zn的摄入量增加有关。高w (Mg)饲料(1 200 mg·kg−1)会降低草鱼的肝脏功能[30]，即草鱼的Mg摄入量一定程度上与其肝胰脏功能之间存在关联。综上所述，养殖水体和饲料中的矿物质水平会直接影响草鱼及其他鱼类的肝脂含量及肝功能。但是，目前有关饲料或水体矿物质对养殖鱼类肝脂沉积的影响研究尚不全面，研究结果存在一定差异，外源矿物质对鱼类肝脂沉积的调控机制研究更是比较欠缺。虽然本研究发现越冬期较大规格草鱼脂肪含量较高的异常颜色肝胰脏中Ca、Cr、Zn、Se含量均显著高于脂肪含量较低的正常颜色肝胰脏，但有关这几种矿物质在非越冬期以及较小规格草鱼肝脂沉积中的作用还需深入研究。
4. 结论
越冬期不同颜色草鱼肝胰脏中平均脂肪沉积量低于5.5%。肝胰脏颜色可以作为同一时期或相同季节草鱼肝脂含量定性评价的参考指标，即同一时期或相同季节的草鱼肝胰脏随着颜色由暗红色转变成花色、白色和黄色，肝中脂肪沉积量依次增加，水分含量则依次下降。相对于脂肪含量较低的暗红色草鱼肝胰脏，越冬期花色、白色、黄色等脂肪含量相对较高的肝胰脏中Ca、Cr、Zn、Se含量均显著上升。有关饲料和水体中不同种类矿物质对草鱼肝脂沉积的影响值得深入研究，但要较为全面地了解草鱼肝胰脏脂肪与外源矿物质含量间的关系，还需对不同生长阶段以及不同季节的草鱼进行综合研究。
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图 1 斑节对虾幼虾力竭运动后肝胰腺 (A) 与肌肉 (B) 中总蛋白质量分数变化
不同字母代表各恢复时间点实验组间存在显著差异(P<0.05)；“*”表示实验组和对照组在胁迫后同一时间点差异显著(P<0.05)，后图同此
Figure 1. Total protein mass fractions in hepatopancreas (A) and muscle (B) of juvenile P. monodon following strenuous activity
Different letters represent significant differences between the experimental groups at different recovery time (P<0.05); *. Significant differences between experimental group and the control group at the same time (P<0.05). The same case in the following figures
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图 2 斑节对虾幼虾力竭运动后肝胰腺 (A) 与肌肉 (B) 中糖原质量分数变化
Figure 2. Glycogen mass fractions in hepatopancreas (A) and muscle (B) of juvenile P. monodon following strenuous activity
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图 3 斑节对虾幼虾力竭运动后肝胰腺 (A) 与肌肉 (B) 中乳酸质量摩尔浓度变化
Figure 3. Lactic acid molar concentrations in hepatopancreas (A) and muscle (B) of juvenile P. monodon following strenuous activity
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图 4 斑节对虾幼虾力竭运动后肝胰腺 (A) 与肌肉 (B) 中谷草转氨酶活性变化
Figure 4. Aspartate aminotransferase activities in hepatopancreas (A) and muscle (B) of juvenile P. monodon following strenuous activity
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图 5 斑节对虾幼虾力竭运动后肝胰腺 (A) 与肌肉 (B) 中谷丙转氨酶活性变化
Figure 5. Alanine aminotransferase activities in hepatopancreas (A) and muscle (B) of juvenile P. monodon following strenuous activity
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图 6 斑节对虾幼虾力竭运动后肝胰腺 (A) 与肌肉 (B) 中乳酸脱氢酶活性变化
Figure 6. Lactate dehydrogenase activities in hepatopancreas (A) and muscle (B) of juvenile P. monodon following strenuous activity
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图 7 斑节对虾幼虾力竭运动后肝胰腺 (A) 与肌肉 (B) 中琥珀酸脱氢酶活性变化
Figure 7. Succinate dehydrogenase activities in hepatopancreas (A) and muscle (B) of juvenile P. monodon following strenuous activity
表 1 实验水体的物理化学参数
Table 1 Physical and chemical parameters of experimental water body
水体
Water body温度
Temperature/℃盐度
SalinitypH 溶解氧
Dissolved oxygen/(mg·L−1)育肥池 Fattening pond 25±1 23±2 8.0±0.3 4.2±0.5 环形水道 Circular waterway 25 23 7.8 4.5 恢复池 Recovering pond 25±1 23 7.8±0.3 5.6±0.5 
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表 2 斑节对虾幼虾在力竭运动后8个恢复时间点和空白组腹部肌肉、肝胰腺中代谢指标单因素分析
Table 2 Analysis of metabolic capacity in abdominal muscles (M) and heaptopancreas (H) of juvenile P. monodon following strenuous activity by One-Way ANOVA
因变量
Dependent variable自由度
df均方
MSF P 肌乳酸质量浓度 LA mass concentraion (M) 8 0.000 19 2.613 0.043 肝乳酸质量浓度 LA mass concentraion (H) 8 0.003 3.082 0.023 肌总蛋白质量分数 TP mass fraction (M) 8 3.152 1.294 0.307 肝总蛋白质量分数 TP mass fraction (H) 8 9.508 12.283 0.000 肌糖原质量分数 GLY mass fraction (M) 8 10.057 2.326 0.045 肝糖原质量分数 GLY mass fraction\ (H) 8 0.582 1.305 0.302 肌SDH活性 SDH activity (M) 8 0.007 0.491 0.847 肝SDH活性 SDH activity (H) 8 21.175 22.601 0.000 肌LDH活性 LDH activity (M) 8 0.232 6.318 0.001 肝LDH活性 LDH activity (H) 8 0.000 29 8.599 0.000 肌ALT活性 ALT activity (M) 8 0.937 2.151 0.085 肝ALT活性 ALT activity (H) 8 0.502 6.380 0.001 肌AST活性 AST activity (M) 8 0.560 0.943 0.507 肝AST活性 AST activity (H) 8 75.490 227.247 0.000
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