台盼蓝活体染色法观察瓦氏黄颡鱼血脾屏障研究

贺扬, 戴旭平, 樊威, 王均, 覃川杰, 陈杰, 曹心雨

贺扬, 戴旭平, 樊威, 王均, 覃川杰, 陈杰, 曹心雨. 台盼蓝活体染色法观察瓦氏黄颡鱼血脾屏障研究[J]. 南方水产科学, 2021, 17(2): 44-50. DOI: 10.12131/20200005
引用本文: 贺扬, 戴旭平, 樊威, 王均, 覃川杰, 陈杰, 曹心雨. 台盼蓝活体染色法观察瓦氏黄颡鱼血脾屏障研究[J]. 南方水产科学, 2021, 17(2): 44-50. DOI: 10.12131/20200005
HE Yang, DAI Xuping, FAN Wei, WANG Jun, QIN Chuanjie, CHEN Jie, CAO Xinyu. Location of blood-spleen barrier of Pelteobagrus vachelli by Trypan blue staining[J]. South China Fisheries Science, 2021, 17(2): 44-50. DOI: 10.12131/20200005
Citation: HE Yang, DAI Xuping, FAN Wei, WANG Jun, QIN Chuanjie, CHEN Jie, CAO Xinyu. Location of blood-spleen barrier of Pelteobagrus vachelli by Trypan blue staining[J]. South China Fisheries Science, 2021, 17(2): 44-50. DOI: 10.12131/20200005

台盼蓝活体染色法观察瓦氏黄颡鱼血脾屏障研究

基金项目: 四川省科技计划应用基础研究项目 (2018JY0286);肉类加工四川省重点实验室开放基金 (18-R-25)
详细信息
    作者简介:

    贺 扬 (1987—),女,博士,副教授,从事水生生物疾病与病理研究。E-mail: he_yang_yang@126.com

    通讯作者:

    王 均 (1986—),男,博士,副教授,从事水生生物疾病与免疫研究。E-mail: wangjunzl@126.com

  • 中图分类号: S 942.2

Location of blood-spleen barrier of Pelteobagrus vachelli by Trypan blue staining

  • 摘要: 为探讨瓦氏黄颡鱼 (Pelteobagrus vachelli) 脾脏组织结构和血脾屏障位置,该研究对其脾脏进行了形态大小、组织学和活体染色观察。结果显示,瓦氏黄颡鱼的脾脏位于腹腔中部,呈暗红色,脾体指数为0.120%~0.273%;对健康脾脏制备石蜡切片,分别进行HE染色和改良James染色,显微镜观察发现其脾组织主要由不发达的被膜系统、分界不清的红髓和白髓及由网状纤维和胶原纤维组成的纤维支架构成。其中网状纤维主要位于脾索和椭球体周围,胶原纤维主要位于脾索;使用台盼蓝活体染色法对健康瓦氏黄颡鱼的血脾屏障部位和功能探索发现,台盼蓝主要位于脾脏的椭球体内皮细胞中,最早出现在注射后的第4小时,随时间推移在椭球体内逐渐累积,24 h后数量显著增加,并持续增加至第72小时。结果表明椭球体内皮细胞是血脾屏障的重要组成成分。
    Abstract: To explore the structure of the spleen of Pelteobagruvs vachelli and the location of its blood-spleen barrier, we observed its spleen in morphology, size, histology and in vivo staining. The results show that the spleen of P. vachelli was located in the middle of the abdominal cavity with dark red colour, and the spleen body index was 0.120%–0.273%. Paraffin sections of healthy spleen were prepared and stained with HE and modified James, and the microscopic observation reveals that the spleen tissue was mainly composed of underdeveloped capsule system, unclear boundary between red and white pulp, and fibers that were composed of reticular fibers and collagen fibers. Reticular fibers were mainly located around the splenic cord and ellipsoid; collagen fibers were mainly located in the splenic cord. We applied Trypan blue in vivo staining method to explore the position and function of the blood-spleen barrier, and found that Trypan blue was mainly located in the ellipsoid endothelial cells of the spleen, and first appeared at 4th hour after injection. It accumulated in the ellipsoid gradually along with time, and the number increased significantly after 24 h, and continued to increase until 72nd hour. It is shown that the ellipsoid endothelial cells are an important component of the blood-spleen barrier.
  • 小新月菱形藻(Nitzschia closterium f. minutissima)属于硅藻门、羽纹纲、双菱形目、菱形藻科、菱形藻属,其体积小、繁殖速度快,对环境有较强的适应力,细胞内富含多不饱和脂肪酸,是水产经济动物良好的生物饵料,拥有庞大的市场需求[1]

    小新月菱形藻的规模化培养是其开发和应用的关键,常见的微藻培养系统可分为开放式和封闭式。传统饵料微藻培养主要采用开放式培养,这种培养方式构建简单、成本低廉且操作简便,但存在易受污染、培养条件不稳定、水分蒸发较快等缺点。封闭式培养具有条件容易控制、不易污染、光能和二氧化碳(CO2)利用率较高等突出优点,利于进行微藻高密度培养,主要可分为管道式、平板式、柱式、搅拌式及浮式薄膜袋等[2-4]。微藻大规模培养的藻种都是采用一级或二级培养的藻液,在微藻培养环境中会有大量细菌存在,这些细菌参与藻际环境中的物质循环,促进有机物质转化,改善藻类培养水环境[5-6],同时细菌也会对藻类生长及物质积累产生影响,进而影响藻类培养效果[7-10]

    管式光反应器培养系统具有光照表面积大,结构可调节性强以及CO2吸收路径长等特点,广泛应用于微藻产率和光合效率的提高,以及生物活性物质的积累等方面[11-15],但在微藻培养过程中对藻际菌落的变化关注较少。因此,本研究通过比较小新月菱形藻在新型负压光反应器及传统开放式培养环境中微藻生长及pH、溶解氧的变化情况,同时利用16S rDNA高通量测序技术,分析在培养过程中藻际菌群的结构变化,旨在从藻密度、菌落结构及水质环境的角度综合评价2种方式培养小新月菱形藻的效果,为负压光生物反应器在微藻培养与应用方面提供科学依据。

    400 L负压光生物反应器为Φ 6 cm×200 cm管式光生物反应器(温州光语生物科技有限公司定制生产),包括盘旋式主体管道(通过支架固定在地面上,主体管道的两端为具有垂直高度差的较低端和较高端),以及驱动管道内部液体流动的气体动力循环装置,该装置通过管道高度差及气体动力循环装置驱动液体流动,气体管道上设置串联定时控制的电磁阀和气泵(结构见图1)。负压光生物反应器内部参数见表1

    图  1  负压光生物反应器示意图
    Figure  1.  Sketch of negative pressure photobioreactor
    表  1  负压反应器内部参数
    Table  1.  Internal parameters of negative pressure photobioreactor
    直流电压/V
    DC voltage
    负载电流/A
    load current
    功率/W
    power
    流量/L·min−1 flow 相对真空度/kPa
    relative vacuum
    峰值流量 平均流量
    24 <0.8 <19.2 20 13 ≈ −60
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    小新月菱形藻藻种由上海光语生物科技有限公司提供,采用改良的f/2培养基 {硝酸钾(KNO3) 100 g·L–1,乙二胺四乙酸(Na2EDTA) 20 g·L–1,磷酸二氢钾(KH2PO4) 10 g·L–1,柠檬酸铁(FeC6H5O7) 3 g·L–1,硫酸锰(MnSO4) 0.2 g·L–1,尿素[CO(NH2)2] 10 g·L–1,硅酸钠(NaSiO3) 20 g·L–1,维生素B1与B12每支10 L各1支}。

    反应器真空抽气与停顿时间(min)比设置为3∶1,双侧光照,光照强度为(3 000±200) lx,光暗周期比为12 h∶12 h,培养温度为(15±1) ℃。传统开放式培养采用100 L塑料桶持续曝气培养。2种培养模式都采用处于指数增长期的同一来源藻种进行室内培养,每种培养模式设置3个平行组,初始接种密度为(23.6±0.1)×104个·mL–1,培养周期为14 d,培养方式为一次性培养。

    每天取藻液,用血球计数板法进行计数,并使用水质监测仪AZ86031对藻液溶解氧及pH进行监测。

    根据公式μ=ln(N2/N1)/(t2t1)计算细胞比生长率,公式中N2N1分别为t2t1时的细胞密度。

    在培养第1、第7、第10和第14天,将藻液通过0.22 μm滤膜抽滤得到的细菌样品于–80 ℃ 保存,使用AT、BT、CT、DT代表开放式培养第1、第7、第10、第14天藻液菌落样品;AC、BC、CC、DC代表反应器培养第1、第7、第10和第14天藻液菌落样品,AT1、AT2、AT3代表3组平行。采用Bacterial DNA Extraction Mini Kit试剂盒提取样品的总基因组DNA,针对16S rRNA基因V3~V4区域构建文库,通过Illumina MiSeq (Illumina,PE300,San Diego,CA,USA)进行双端测序(广州吉瑞基因有限公司)。

    使用R语言及QIIME(1.9.1)分别对α多样性指数与花瓣图等进行分析,并作出稀释曲线;基于Brary-Curtis样本间距离矩阵用于PCoA (principal coordinates analysis)可视化图展示β多样性;其他数据使用Excel 2007和SigmaPlot 12.5软件进行分析作图,使用SPSS 17.0软件中Duncan多重比较法进行单因素方差分析,以“平均值±标准差$\left( {\overline X\pm{\rm{SD}}} \right)$”表示,P<0.05表示差异性显著。

    2种不同培养方式藻密度变化曲线见图2-a。在负压式光生物反应器和开放式培养模式下,藻密度均呈上升趋势,并在培养第14天分别达到藻密度最大值1.33×107个·mL–1和8.36×106个·mL–1,负压式光生物反应器培养藻密度明显高于开放式培养,且提前达到平台期。在反应器和开放式培养下藻细胞比生长率均呈现出短暂下降后上升的趋势,分别在第8和第6天达到最大比生长率0.41和0.35,然后缓慢下降至0.3,整个培养过程中反应器内藻细胞比生长率一直高于开放式培养(图2-b)。

    图  2  小新月菱形藻密度与比生长率变化
    Figure  2.  Variation of density and specific growth rate of Nitzschia closterium f. minutissima

    不同培养方式下pH变化见图3-a。在培养第1~第6天,2种培养方式pH均呈缓慢增加的趋势,维持在8~8.5;第7~第9天,反应器中pH迅速升高到10.0,最后稳定在10.3;而开放式培养中pH则缓慢上升至9.0,2种培养系统中pH变化都与藻密度呈显著正相关(P<0.01,R 2=0.967 4,R 2=0.970 4)。溶解氧与pH变化趋势相反(图3-b),两者呈显著负相关(P<0.01,R 2=0.991 3,R 2=0.741 2),培养第1~第8天溶解氧都维持在8.5~9.0 mg·L–1,但反应器中溶解氧在第9天迅速下降至7.0 mg·L–1,然后缓慢下降至6.5 mg·L–1,而开放式培养下溶解氧没有明显变化。

    图  3  不同培养环境pH与溶解氧变化
    Figure  3.  Change of pH and dissolved oxygen in different culture environments

    通过Illumina MiSeq测序得到875 782条有效序列,平均每个样品有36 490条有效序列,每个样品平均GC (%)为52%。以97%相似性水平为标准划分可操作分类单元(operational taxonomic unit, OTU),对样品进行随机抽样,以抽取的测序数据量与对应的物种数构建稀释曲线(图4)。当每个样品测序数量都达到5 000条序列时,曲线增长缓慢,说明测序深度完全满足统计分析要求,能够准确反映样品序列。

    图  4  藻液菌群可操作分类单元数稀释曲线
    Figure  4.  OTUs dilution curve of microflora in algae solution

    藻液中的优势种为蓝藻细菌门、变形菌门和拟杆菌门。藻接种初期,拟杆菌(50.65%)和变形杆菌(43.99%)为主要优势菌,随着培养时间增加,变形杆菌和蓝细菌所占比例增大,2种培养方式菌落变化趋势相同,但在培养第14天,反应器中蓝细菌所占比例(43.74%)明显高于开放式培养(12.85%),变形杆菌(29.24%)所占比例明显降低(图5)。

    图  5  藻液菌群门水平优势细菌
    Figure  5.  Dominant bacteria in algae solution at phylum level

    根据所有样品在属水平的物种丰度信息,选取相对丰度排名前9的属,在菌属水平上对第1、第7、第10和第14天藻液的菌群结构及分布进行统计分析(图6)。结果显示,培养第1天,反应器与开放式培养的优势菌属均为LeadbetterellaPhaeodactylibacterSulfitobacter,相对丰度分别为16.82%和16.3%、6.08%和7.67%、5.09%和4.04%;培养第7天,反应器与开放式培养分别为Hoeflea (11.36%)、Sulfitobacter (6.89%)、Leadbetterella (4.21%)和Hoeflea (12.89%)、Leadbetterella (7.67%)、Sulfitobacter (3.57%);培养第10天,反应器与开放式培养优势菌属分别为Leadbetterella (5.94%)、Sulfitobacter (3.77%)、Hoeflea (2.52%)和Hoeflea (7.19%)、Leadbetterella (6.81%)、Sulfitobacter (2.92%);培养第14天,反应器与开放式培养则分别以Roseibaca (8.66%)、Phaeodactylibacter (3.55%)、Roseibacillus (1.54%)和Hoeflea (8.83%)、Leadbetterella (2.35%)、Marivita (2.05%)为优势菌属。

    图  6  藻液菌群属水平优势细菌
    Figure  6.  Dominant bacteria in algae solution at genera level

    基于所有样品OTU数绘制成的花瓣图显示(图7),8组样品共有OTU 67个,其中BT组特有OTU 2个,表明从花瓣图中看出各组间差异不明显。通过Chao1、ACE、Shannon和Simpson指数对各个样品的细菌丰度和多样性进行评估(表2),发现2种培养方式在培养不同时期Chao1与ACE指数没有显著性差异,但Shannon和Simpson指数显著下降(P<0.05),提示在小新月菱形藻培养过程中,菌群多样性呈下降趋势。

    图  7  藻液菌群花瓣图
    Figure  7.  Petal diagram of microflora in algae solution
    表  2  不同培养环境藻液菌群α多样性指数比较
    Table  2.  α diversity index of microflora in algae solution in different breeding environments
    组别
    treatment
    多度涵盖估计量
    Ace
    丰富度
    Chao1
    香农指数
    Shannon
    辛普森指数
    Simpson
    开放式培养
    open culture
    第1天 AT 71.9±2.21 71.6±1.18 4.23±0.08a 0.91±0.01a
    第7天 BT 75.5±3.57 76.1±5.44 3.59±0.23ab 0.82±0.03ab
    第10天 CT 73.1±5.78 75.2±8.50 3.03±0.04b 0.71±0.02b
    第14天 DT 75.9±4.05 74.7±3.62 3.30±1.02ab 0.75±0.17ab
    反应器培养
    reactor culture
    第1天 AC 77.6±2.60 80.9±10.5 4.25±0.22a 0.91±0.01a
    第7天 BC 73.4±1.96 72.8±2.00 3.87±0.20a 0.86±0.02a
    第10天 CC 77.2±2.94 81.0±3.46 2.98±0.02b 0.69±0.01b
    第14天 DC 71.1±4.36 73.2±5.01 2.78±0.29b 0.74±0.07b
    注:同列数据上标不同字母表示平均值差异显著 (P<0.05)
    Note: The data in the same column with different superscripts are significantly different (P<0.05).
    下载: 导出CSV 
    | 显示表格

    采用PCoA进行主坐标分析,对组间差异进行比较,其中PC1贡献值为41.92%,PC2贡献值为38.1%,贡献值总计为80.02%,可以用来解释大部分变量信息。图8显示在藻类接种初始阶段,2种培养系统中菌落结构相近但与其他时期样品的菌落结构差异较大,在培养的第7、第10天以及开放式培养的第14天样品中菌落结构较为相似,但在反应器培养的第14天菌落结构与其他样品组出现明显差异。

    图  8  藻液菌群PCoA分析
    Figure  8.  Principal coordinates analysis of microflora in algae solution

    微藻培养效果主要受藻种、外界环境因素和培养方式等因素影响[16],光生物反应器中影响微藻生长的因素主要有光照、温度、pH、CO2、溶解氧及水动力学等,其中光照是最主要的影响因子[17]。石娟和潘克厚[18]使用三角瓶在日光灯下培养小新月菱形藻,发现其生长的最适光照强度为5 000~10 000 lx,在光照强度约为5 000 lx时达到最大生长率0.392;梁英等[19]在光照强度为5 000 lx、温度为15 ℃条件下培养小新月菱形藻最大藻密度可达到1.0×107个·mL–1。本实验接种藻种为同一来源,采用自然光照及白炽灯共同光源,光照强度在3 000 lx,室内温度为(15±1)℃条件下,负压反应器中培养最大藻密度和比生长率为1.33×107个·mL–1和0.41,明显优于开放式培养与其他研究成果,很可能由于负压光生物反应器采用双侧光照,管径小,玻璃材质的管壁透光性好,光照均一性好,光照效率显著提高,而且该反应器使用气体动力驱动藻液混合和循环,负压压力小,对藻细胞的剪切力小,减小了对藻体细胞的损伤[20-21],因而促进了微藻的快速生长,提高了培养密度,缩短了培养周期。

    水体中pH变化可以反映藻类生长状态。游亮等[22]研究发现藻类培养过程中,藻类生长与水环境中pH相关。pH升高意味着植物光合作用增强,CO2利用率增加,水体中CO2减少[23],不同藻种对pH耐受性不同,已有研究人员发现一种可以在高pH (>10)下生长的微藻(Chlorella sorokiniana),这种微藻在不补充外源CO2情况下,仍能保持较高的生物量与脂含量[24]。在本实验中,pH随藻密度增加而上升,在反应器中pH最终上升至10.3,较开放式培养明显升高,进一步表明在负压光生物反应器培养环境下,小新月菱形藻光合作用得到加强,光合效率提高。此外,小新月菱形藻在pH大于10的环境中仍能持续生长,说明其对高pH的耐受性较强。

    在海洋微藻的藻际环境中,变形杆菌与拟杆菌是较为常见的优势细菌,与赤潮的发生息息相关[25-27]。本实验环境中,优势细菌主要有拟杆菌门、蓝细菌门及变形杆菌门,且变形杆菌门与蓝细菌门所占比例随培养时间逐渐增大,蓝细菌是微藻主要的黏附细菌,在藻类生长的不同时期差异性较大[28-29],在负压光反应器培养的最后阶段,蓝细菌突然增加,推测其骤增的原因是蓝细菌在高pH环境中处于竞争优势[30]。在属水平上,培养前期出现的优势细菌主要有LeadbetterellaSulfitobacterHoeflea,关于Leadbetterella的报道较少,但有报道表明使用反应器培养好氧活性污泥时,当直接减少曝气时Leadbetterella占主要优势,不利于形成稳定的菌落结构,认为与Leadbetterella吸收细菌胞外蛋白有关[31]Sulfitobacter的成员在海洋中普遍存在,可以与很多海洋生物共生,参与亚硫酸(H2SO3)的氧化及硝酸盐(NO3 )还原等过程[32-34]。本实验条件下,LeadbetterellaSulfitobacter菌属所占比例随培养时间逐渐减小,很可能是由于细菌在有机物及营养盐竞争过程中细菌受到了微藻的抑制。Hoeflea菌属常存在于海洋沉积物中或与甲藻共生,适合生存的pH为6~9[35-37]。而在负压反应器内Hoeflea所占比例明显低于开放式培养,很可能是由于过高的pH抑制了Hoeflea生长。

    玫瑰杆菌(Roseobacter)是一类典型的好氧不产氧的光合细菌,广泛分布于海洋中,可以在有氧条件下以有机物、硫化物或氨(NH3)等作为供氢体,通过细菌叶绿素捕获光能进行光合作用但并不释放氧气(O2),这种代谢类型使其在碳限制情况下也能进行生长[38]。本实验后期,负压反应器中玫瑰杆菌属所占比例明显增加,溶解氧含量明显下降,这可能与光生物反应器具有更好的光照效率有关,有利于玫瑰杆菌属细菌的生长,而玫瑰杆菌在生长和代谢过程中又消耗了大量的溶解氧,导致负压光生物反应器中藻液的溶解氧下降。很多玫瑰杆菌类群中的细菌与藻类建立了互惠互利的共生关系,附着在浮游植物细胞上的玫瑰杆菌可直接接触溶解有机物(DOM)和二甲基巯基丙酸(DMSP),这些物质可以用来合成一种或多种生物活性分子,以加强玫瑰杆菌的结合。此外,玫瑰杆菌对藻类生长也是必不可少的,其可以产生维生素B12、铁结合物等藻类生长所必需的物质[39-40],因此,在负压反应器内藻细胞维持较高的密度,很可能与玫瑰杆菌为优势细菌有关。

    本实验显示细菌多样性呈显著性下降,这与杨小茹等[41]的研究结果相似,塔玛亚历山大藻(Alexandrium tamarense)在指数末期细菌多样性低于延滞期和稳定期。在藻类培养的不同阶段,细菌群落差异性较大,王剑等[42]在研究条纹环沟藻(Gyrodinium instriatum)菌落结构时,发现在藻类衰亡期菌落结构与其他时期差异较大,这是由于产生了大量有溶藻功能的不动杆菌属(Acinetobacter)。在负压反应器培养的第14天菌落结构与其他样品组出现明显差异,玫瑰杆菌成为优势菌,玫瑰杆菌的出现预示着藻类迅速增长,关于菌群结构变化对微藻生长的调控作用值得进一步探讨。

    1)负压光生物反应器可以提高光照效率,有利于小新月菱形藻生长,缩短其培养时间,适用于微藻高密度培养。藻液的pH随藻密度而升高,两者呈显著正相关(P<0.05),且在负压光生物反应器中pH明显高于开放式培养。负压光生物反应器内培养藻液的溶解氧随培养时间而明显下降,而开放式桶培养藻液的溶解氧较为稳定,略有下降。

    2)在微藻培养过程中菌落的多样性下降,在负压光生物反应器内,培养后期菌落结构与其他样品组出现明显差异,蓝细菌与玫瑰杆菌成为优势细菌。玫瑰杆菌成为优势种预示着藻际菌群的稳定或藻类的增长,且很可能是导致负压光生物反应器内培养藻液的溶解氧下降的主要原因。

  • 图  1   脾脏切片HE染色观察

    a. 脾被膜 (→) 和脾小梁 (→);b. 聚集成团的淋巴细胞 (○) 和散在淋巴细胞 (→);c. 黑色素巨噬细胞中心 (★)由单层扁平细胞包裹(→);d. 白髓中椭球体 (→)

    Figure  1.   Pathological of spleen stained by HE

    a. Splenic capsule (→) and trabeculae (→); b. Clustered (○) and scattered (→) lymphocytes; c. MMCs surrounded (★) by flat cells (→); d. Ellipsoids in white pulps (→)

    图  2   正常脾脏组织切片改良James染色观察

    a. 网状纤维与胶原纤维相互缠绕形成被膜 (→);b. 红髓内网状纤维 (→),白髓内网状纤维 (→);c. 椭球体周围网状纤维 (→);d. 血管周围放射状网状纤维 (→);e. 血管周围胶原纤维 (★);f. 白髓中胶原纤维

    Figure  2.   Normal spleen stained by James

    a. Reticular fibers and collagen fibers twine to surround capsule (→); b. Reticular fibers satiated in red pulps (→) and white pulps (→); c. Reticular fibers in ellipsoids (→); d. Reticular fibers satiated in white pulps (→); e. Collagen fibers surrounding the vascular (★); f. Collagen fibers satiated in white pulps

    图  3   瓦氏黄颡鱼脾脏中不同时间点台盼蓝面积比的变化趋势

    a. 台盼蓝分布于内皮细胞中(→),HE;b. 台盼蓝定量分析;*. 0.01<P<0.05; **. P<0.01;c. 注射前脾脏组织切片,未染色;d. 注射第4小时,脾脏组织切片,未染色;e. 注射第8小时,脾脏组织切片,未染色;f. 注射第24小时,脾脏组织切片,未染色;g. 注射第48小时,脾脏组织切片,未染色;h. 注射第72小时,脾脏组织切片,未染色

    Figure  3.   Dynamic changes of area rate of Trypan blue in spleen of P. vachelli

    a. Trpan blue satiated in endotheliocytes (→), HE staining; b. Quantity analysis of Trypan blue; c. Pathology of spleen before injection, unstained; d. Pathology of spleen at 4th hour post injection, unstained; e. Pathology of spleen at 8th hour post injection, unstained; f. Pathology of spleen at 24th hour post injection, unstained; g. Pathology of spleen at 48th hour post injection, unstained; h. Pathology of spleen at 72nd hour post injection, unstained

    表  1   瓦氏黄颡鱼脾体指数

    Table  1   Splenic somatic index of P. vachelli

    编号
    No.
    体质量
    Body mass/g
    脾脏质量
    Spleen mass/g
    脾体指数
    Spleen index/%
    147.2060.0570.120
    241.4540.1130.273
    349.4290.0680.138
    461.0830.1190.195
    552.4440.0890.170
    643.6840.0630.144
    下载: 导出CSV
  • [1] 万松良, 黄永涛, 刘敏, 等. 瓦氏黄颡鱼的含肉率及营养成分分析[J]. 水利渔业, 2008(3): 59-61. doi: 10.3969/j.issn.1003-1278.2008.03.022
    [2] 甘炼, 马旭洲, 张文博, 等. 瓦氏黄颡鱼和黄颡鱼仔、稚、幼鱼生长的比较[J]. 华南农业大学学报, 2008, 29(3): 71-74. doi: 10.3969/j.issn.1001-411X.2008.03.017
    [3] 赵静, 王利. 瓦氏黄颡鱼嗜水气单胞菌感染的诊断及治疗[J]. 科学养鱼, 2014(3): 60.
    [4]

    CHEN H, YUAN G, SU J, et al. Hematological and immune genes responses in yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco) with septicemia induced by Edwardsiella ictaluri[J]. Fish Shellfish Immunol, 2020, 97: 531-539. doi: 10.1016/j.fsi.2019.11.071

    [5] 朱龙, 任胜杰, 李玲雅, 等. 黄颡鱼小瓜虫病的防治一例[J]. 水产养殖, 2016(2): 53-54.
    [6]

    CESTA M F. Normal structure, function, and histology of the spleen[J]. Toxicol Pathol, 2006, 34(5): 455-465. doi: 10.1080/01926230600867743

    [7]

    WEISS L, GEDULDIG U, WEIDANZ W. Mechanisms of splenic control of murine malaria: reticular cell activation and the development of a blood-spleen barrier[J]. Am J Anat, 1986, 176(3): 251-285. doi: 10.1002/aja.1001760303

    [8] 黄长文, 傅华群. 血脾屏障结构和功能的研究进展[J]. 国际外科学杂志, 2008, 35(12): 829-832. doi: 10.3760/cma.j.issn.1673-4203.2008.12.015
    [9]

    PRESS C M, EVENSEN Ø. The morphology of the immune system in teleost fishes[J]. Fish Shellfish Immunol, 1999, 9(4): 309-318. doi: 10.1006/fsim.1998.0181

    [10] 王德田, 董建强. 实用现代病理学技术[M]. 北京: 中国协和医科大学出版社, 2012: 63-79.
    [11] 林鸿翔, 朱建善. 改良James染色法的应用及效果观察[J]. 上海交通大学学报 (医学版), 2009, 29(3): 359-360.
    [12]

    CUI D, ZHANG P, LI H, et al. Biotransformation of dietary inorganic arsenic in a freshwater fish Carassius auratus and the unique association between arsenic dimethylation and oxidative damage[J]. J Hazard Mater, 2020, 391: 22153.

    [13] 贺扬. 感染无乳链球菌尼罗罗非鱼脾脏的病理学研究[D]. 温江: 四川农业大学, 2017: 19-47.
    [14]

    TISCHENDORF F. On the evolution of the spleen[J]. Experientia, 1985, 41: 145-152. doi: 10.1007/BF02002606

    [15] 胡成钰, 洪一江, 王军花, 等. 植物血凝素对兴国红鲤头肾和脾脏的比较组织学研究[J]. 水生生物学报, 2002, 26(5): 489-493. doi: 10.3321/j.issn:1000-3207.2002.05.011
    [16] 区又君, 刘江华, 李加儿, 等. 驼背鲈头肾和脾脏的形态组织学观察[J]. 南方农业学报, 2015, 46(11): 2034-2039. doi: 10.3969/j:issn.2095-1191.2015.11.2034
    [17] 雷雪彬. 草鱼免疫器官个体发育的组织结构和免疫细胞变化[D]. 上海: 上海海洋大学, 2013: 18-28.
    [18] 史则超. 南方鲇主要免疫器官发育的研究[D]. 武汉: 华中农业大学, 2007: 19-20.
    [19]

    FÄNGE R, NILSSON S. The fish spleen: structure and function[J]. Experientia, 1985: 152-158.

    [20]

    HADIDI S, GLENNEY G W, WELCH T J, et al. Spleen size predicts resistance of rainbow trout to Flavobacterium psychrophilum challenge[J]. J Immunol, 2008, 180(6): 4156-4165. doi: 10.4049/jimmunol.180.6.4156

    [21]

    HARUN N O, WANG T, SECOMBES C J. Gene expression profiling in naïve and vaccinated rainbow trout after Yersinia ruckeri infection: insights into the mechanisms of protection seen in vaccinated fish[J]. Vaccine, 2011, 29(26): 4388-4399.

    [22]

    WIENS G D, MARANCIK D P, WOLLO P Z, et al. Reduction of rainbow trout spleen size by splenectomy does not alter resistance against bacterial cold water disease[J]. Dev Comp Immunol, 2015, 49(1): 31-37. doi: 10.1016/j.dci.2014.11.003

    [23] 郭琼林, 卢全章. 鳗鲡肝脏、脾脏显微与超微结构[J]. 动物学报, 1994, 40(2): 125-130.
    [24] 谢碧文, 张未丽, 张耀光. 瓦氏黄颡鱼和岩原鲤脾脏的组织学观察[J]. 四川动物, 2010, 29(2): 212-214.
    [25] 秦国强, 王浩, 黄金生, 等. 鲤鱼和鲫鱼脾脏显微结构和亚显微结构的研究[J]. 水生生物学集刊, 1983, 8(1): 63-68.
    [26] 祁保霞. 黄颡鱼脾脏和头肾的显微结构观察[J]. 内蒙古民族大学学报 (自然科学版), 2010, 25(3): 304-306.
    [27] 黄长文, 傅华群. 血脾屏障的功能及其调节[J]. 中华普通外科学文献 (电子版), 2008, 2(6): 53-55.
    [28]

    WEISS L. Barrier cells in the spleen[J]. Immunol Today, 1991, 12(1): 24-29. doi: 10.1016/0167-5699(91)90108-6

    [29]

    SUN X, LIU E, WANG T, et al. The novel histological evidence of the blood-spleen barrier in duck (Anas platyrhynchos)[J]. Histol Histopathol, 2019, 34(1): 33-45.

    [30]

    ZHANG Q, CHEN B, YANG P, et al. Identification and structural composition of the blood-spleen barrier in chickens[J]. Veter J, 2015, 204(1): 110-116.

    [31]

    BAO H J, LI M Y, WANG J, et al. Architecture of the blood-spleen barrier in the soft-shelled turtle, Pelodiseus sinensis[J]. Anat Rec, 2009, 292(8): 1079-1087. doi: 10.1002/ar.20917

    [32] 蒋登金, 郭金光, 张天飞, 等. 血脾屏障的天然免疫作用的初步观察[J]. 第三军医大学学报, 2001, 23(12): 1442-1443. doi: 10.3321/j.issn:1000-5404.2001.12.019
  • 期刊类型引用(1)

    1. 吕布,陈煜,李曦,李娇妮,臧战,石耀华,VASQUEZ Hebert Ely,郑兴,顾志峰. 室内袋式和管道式光生物反应器对湛江等鞭金藻生长及生化组分的比较分析. 水产科技情报. 2022(03): 121-126 . 百度学术

    其他类型引用(4)

图(3)  /  表(1)
计量
  • 文章访问数:  1841
  • HTML全文浏览量:  432
  • PDF下载量:  88
  • 被引次数: 5
出版历程
  • 收稿日期:  2020-01-10
  • 修回日期:  2020-12-02
  • 网络出版日期:  2021-01-03
  • 刊出日期:  2021-04-04

目录

/

返回文章
返回