17β-雌二醇诱导黄颡鱼雌性化的研究

王成龙; 关文志; 李永强; 刘峰

doi:10.12131/20200001

17β-雌二醇诱导黄颡鱼雌性化的研究

上海市水产研究所/上海市水产技术推广站，上海 200433

基金项目: 2018年度上海市市级农口系统青年人才成长计划项目〔沪农青字 (2018) 第3—4号〕

详细信息

作者简介:
王成龙 (1989—)，男，硕士，助理工程师，从事水产动物遗传育种研究。E-mail: 836597116@qq.com

通讯作者:
刘　峰 (1975—)，男，副研究员，从事水产动物遗传育种研究。E-mail: lf6475@sina.com

中图分类号: S 917.4
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出版历程
- 收稿日期: 2020-01-05
- 修回日期: 2020-02-17
- 录用日期: 2020-02-26
- 网络出版日期: 2020-03-16
- 刊出日期: 2020-06-04

Study on 17β-estradiol induced feminization of Pelteobagrus fulvidraco

Shanghai Fisheries Research Institute/Shanghai Aquatic Technology Promotion Station, Shanghai 200433, China

摘要

摘要:
该研究通过对17β-雌二醇 (E₂) 的投喂方式和投喂时间进行比较，探索了XY全雄黄颡鱼 (Pelteobagrus fulvidraco) 的雌性化方法，进而建立3个家系 (XY♀×XY♂)，结合性别分子标记对黄颡鱼雌性化诱导的成活率和性逆转率进行了对比研究。结果显示，卤虫 (Artemia sp.) 组从开口第1天进行诱导的性逆转率为75.20%，而从开口第5天进行诱导得不到发育好的雌性；从开口第1天投喂激素，饲料组的成活率与卤虫组无显著差异 (P>0.05)，而性逆转率显著高于卤虫组 (P<0.05)；分子标记Y1和Y2相结合能够准确鉴定黄颡鱼的遗传性别；对照组中3个家系的成活率和各个基因型性别比例均无显著差异(P>0.05)，成活率为51.00%~56.67%，XX雌性占比为90.91%~97.44%，XY雄性占比为94.56%~95.96%，而YY则为雄性；诱导组中3个家系的成活率和性逆转率均无显著差异(P>0.05)。结果表明，采用含50 mg·kg⁻¹ E₂的微颗粒饲料从开口第1天开始诱导30 d，并运用遗传性别与表型性别鉴定相结合的方法能够有效筛选获得发育良好的XY/YY雌性黄颡鱼。
- 黄颡鱼 /
- 性逆转 /
- 17β-雌二醇 /
- 性别分子标记 /
- YY型雌鱼
Abstract:
In this study, we compared the feeding method and feeding time of 17β-estradiol to explore the feminization method of XY Pelteobagrus fulvidraco, and then established three families (XY♀×XY♂) to compare the survival rate and sex reversal rate with sex molecular. The results show that the females in Artemia sp. group could not be induced to develop well from the 5^th day of opening, but the induced reversal rate was 75.20% on the 1^st day of opening, the survival rate induced from the 1^st day of opening was not significantly different from that of Artemia sp. group, while the sex reversal rate was significantly higher than that of Artemia group; the combination of molecular markers Y1 and Y2 could identify the genetic sex of P. fulvidraco accurately; there was no significant difference in the survival rate and sex ratio of each genotype among the three families in the control group, and the survival rate was 51.00%−56.67%. The proportion of XX female and XY male individuals were 90.91%−97.44% and 94.56%−95.96%, respectively. There was no significant difference in the survival rate and sex reversal rate among the three families in the induction group. The result shows that using 50 mg·kg⁻¹ E₂ mixed with micro pellet feed to induce 30 d from the 1^st day of opening can screen out well-developed female XY/YY P. fulvidraco effectively by combination of genetic and phenotypic sex identification.
- Pelteobagrus fulvidraco /
- Sex reversal /
- 17β-estradiol /
- Sex molecular marker /
- YY type female fish

HTML全文

海陵湾位于粤西阳江海区，为半封闭港湾，内湾风浪平缓，是重要的贝类养殖和网箱养殖基地，也是广东省重要的增殖放流水域；外湾海岸线狭长，海域开阔，拥有国家海滨AAAAA级旅游风景区。不少学者已对海陵湾浮游植物^[1]、沉积物^[2-4]、水环境^[5-6]、抗生素和雄激素来源^[7-10]等方面做过相关研究，但关于海陵湾浮游动物的研究极少见报道。浮游动物作为海洋生态系统中重要的中间环节，其下行控制着浮游植物群落的数量，上行则可影响鱼类等的资源量，在海洋生态系统结构和功能中起重要的调控作用^[11-12]。此外，浮游动物的生存状况与水环境密切相关，浮游动物群落结构的变化可反映水环境质量状况，因此，研究浮游动物群落结构变化对评价海域水质污染状况也具有重要意义。

近年来，随着海陵湾养殖业和旅游业的发展，养殖废水、生活污水及船坞废水的大量排放，逐渐改变了海陵湾的生态环境，因此有必要定期监测海湾生态环境，以期为海湾的进一步开发利用提供依据。本研究对2015—2016年海陵湾的浮游动物种类组成、优势种、丰度和生物量、生物多样性等群落结构特征及其与主要环境因子的关系进行了分析，以期为保护海陵湾生态环境及维持海洋生物资源的可持续利用提供基础资料。

1. 材料与方法

1.1 样品采集与分析

于2015年2月(冬季)、7月(夏季)、11月(秋季)及2016年4月(春季)分别对阳江海陵湾(111°42.53'E、21°27.95'N—111°57.36'E、21°38.29'N)进行渔业生态资源综合调查(图1)，共设置9个调查站位。浮游动物样品使用浅水Ⅰ型浮游生物网自底至表垂直拖网采集并用福尔马林溶液固定保存，再在室内用显微计数和湿质量生物量法分析。

图 1 海陵湾采样站位示意图

Figure 1. Distribution of sampling stations in Hailing Bay

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1.2 统计方法

优势度^[13]

$$ Y = \left( {{n_i}/N} \right) \times {f_i} $$

Shannon-Wiener多样性指数^[14]

$$ H' = - \sum\limits_{i = 1}^S {{P_i}{{\log }_2}{P_i}} $$

均匀度^[15]

$$ J' = H'/\left( {{{\log }_2}S} \right) $$

其中n_i为第i种的总个体数，N为海陵湾所有物种的总个体数，f_i为第i种在海陵湾采样点出现的频率，以Y>0.02作为优势种；S为样品中的总种类数，P_i为第i种在全部样品中的比例(P_i=n_i/N)。

2. 结果

2.1 种类组成

阳江海陵湾4个季节共发现132种浮游动物及14类浮游幼虫，以桡足类种类数最多 (54种)，占总种数的40.91%，其次是水螅水母类 (18种)，占总种数的13.64%；端足类和毛颚类各10种，分别占总种数的7.58%；管水母8种，占总种数的6.06%；其余类群种类数均低于6种(表1)。

表 1 浮游动物种类组成

Table 1. Species composition of zooplankton

类群 group	冬季 winter		夏季 summer		秋季 autumn		春季 spring		全年 whole year
类群 group	种数 species number	占比/% percentage	种数 species number	占比/% percentage	种数 species number	占比/% percentage	种数 species number	占比/% percentage	种数 species number	占比/% percentage
原生动物 Protozoa	1	3.33	2	8.00	2	2.70	3	3.26	3	2.27
水螅水母类 Hydromedusae	8	26.67	2	8.00	9	12.16	10	10.87	18	13.64
管水母类 Siphonophorae	1	3.33	1	4.00	1	1.35	8	8.70	8	6.06
栉水母类 Ctenophora	2	6.67	1	4.00	1	1.35	1	1.09	2	1.52
异足类 Heteropoda	−	−	−	−	1	1.35	2	2.17	2	1.52
翼足类 Pteropoda	−	−	−	−	3	4.05	3	3.26	3	2.27
枝角类 Cladocera	2	6.67	2	8.00	2	2.70	2	2.17	2	1.52
桡足类 Copepoda	9	30.00	10	40.00	32	43.24	29	31.52	54	40.91
介形类 Ostracoda	1	3.33	−	−	−	−	3	3.26	3	2.27
糠虾类 Mysidacea	−	−	−	−	2	2.70	2	2.17	2	1.52
端足类 Amphipoda	2	6.67	−	−	2	2.70	8	8.70	10	7.58
磷虾类 Euphausiacea	−	−	1	4.00	3	4.05	2	2.17	3	2.27
十足类 Decapoda	−	−	1	4.00	3	4.05	3	3.26	5	3.79
毛颚类 Chaetognatha	2	6.67	2	8.00	9	12.16	9	9.78	10	7.58
海樽类 Thaliacea	1	3.33	1	4.00	2	2.70	4	4.35	4	3.03
有尾类 Appendiculata	1	3.33	2	8.00	2	2.70	3	3.26	3	2.27
合计 total	30	100.00	25	100.00	74	100.00	92	100.00	132	100.00
浮游幼体类 pelagic larva	8		9		11		11		14

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浮游动物群落种类组成存在季节变化，冬季共发现30种，处于次低水平；夏季种类数最少(25种)，占全年出现浮游动物种类数的18.94%；随后，秋季浮游动物种类数增至74种，占全年出现浮游动物种类数的56.06%；次年春季浮游动物种类数继续增多(92种)，占全年出现浮游动物种类数的69.70%。

2.2 优势种

调查期间，该海域共出现11种优势种(不包括幼虫)，两相邻调查季节间没有出现共同优势种，浮游动物群落存在明显的季节变化。

冬季夜光虫 (Nocitiluca scintillans) 大量繁殖形成该海域唯一优势种，优势度高达0.96，平均丰度为5.40×10³ 个·m⁻³；夏季夜光虫消失，取而代之的是桡足类的红纺锤水蚤 (Acartia erythraea) 和瘦尾胸刺水蚤 (Centropages tenuiremis)，以及有尾类的长尾住囊虫 (Oikopleura longicauda) 和红住囊虫 (O. rufescens)；秋季毛颚类的肥胖软箭虫 (Flaccisagitta enflata)显著增多，桡足类优势种也发生了变化。到次年春季，夜光虫再次出现形成优势，平均丰度为227.12 个·m⁻³ (表2)。

表 2 浮游动物优势种

Table 2. Dominant species of zooplankton

季节 season	优势种 (优势度Y) dominant species (dominance Y)
冬季 winter	夜光虫 (0.96)
夏季 summer	红纺锤水蚤 (0.03)、瘦尾胸刺水蚤 (0.03)、长尾住囊虫 (0.07)、红住囊虫 (0.05)
秋季 autumn	锥形宽水蚤 Temora turbinate (0.17)、叉胸刺水蚤 Centropages furcatus (0.10)、肥胖软箭虫 (0.18)
春季 spring	夜光虫 (0.25)、鸟喙尖头溞 Penilia avirostris (0.15)、肥胖三角溞 Pseudevadne tergestina (0.33)、软拟海樽 Dolioletta gegenbauri (0.11)

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2.3 丰度和生物量的平面分布和季节变化

海陵湾浮游动物年均丰度为1 737.41 个·m⁻³，冬季 (5 652.85 个·m⁻³)最高，主要由夜光虫 (5 399.56 个·m⁻³)的大量增殖引起，丰度呈现湾内高于湾外；春季次之 (平均为814.41 个·m⁻³)，湾外丰度高于湾内；秋季丰度比春季低 (平均469.51 个·m⁻³)，丰度低值区也位于湾内；夏季浮游动物丰度最低 (仅12.88 个·m⁻³，图2)。除夜光虫外，海陵湾浮游动物丰度以春季最高(587.29 个·m⁻³)，秋季次之(469.51 个·m⁻³)，冬季为253.29 个·m⁻³，夏季最低(12.88 个·m⁻³)。

图 2 浮游动物丰度的平面分布

Figure 2. Horizontal distributions of zooplankton abundance

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原生动物是冬季浮游动物群落的第一大类群，仅夜光虫丰度就达到5 399.56 个·m⁻³，主要分布在湾内，在春季也形成优势，丰度平均为227.14 个·m⁻³，主要密集分布在湾外。桡足类种类最多，但仅在秋季丰度相对较高。枝角类在春季丰度最高，但其他季节均较低(图3)。

图 3 浮游动物主要类群的季节变化

Figure 3. Seasonal variation of main groups of zooplankton

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浮游动物年均生物量为115.52 mg·m⁻³，冬季最高(291.88 mg·m⁻³)，夏季最低 (0.81 mg·m⁻³)，秋季(87.28 mg·m⁻³)略高于春季(82.11 mg·m⁻³)。生物量各季节的平面分布与丰度相似(图4)。

图 4 浮游动物生物量的平面分布

Figure 4. Horizontal distributions of zooplankton biomass

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浮游动物多样性指数(H′)以秋季最高(4.21)，冬季最低(0.86)且站位间变化最大，年平均为2.83；均匀度(J′)以夏季最高(0.93)，冬季最低(0.21)，年平均为0.60 (表3)。

表 3 浮游动物生物多样性

Table 3. Biodiversity index of zooplankton

季节 season	多样性指数 (H′)		均匀度 (J′)
季节 season	范围 range	均值 average	范围 range	均值 average
冬季 winter	0.11~2.32	0.86	0.03~0.58	0.21
夏季 summer	2.98~4.03	3.55	0.84~0.97	0.93
秋季 autumn	3.55~4.58	4.21	0.60~0.94	0.77
春季 spring	2.00~3.58	2.70	0.32~0.88	0.50

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2.4 浮游动物与环境因子关系

原生动物与水温呈显著负相关；枝角类与盐度呈极显著负相关，与叶绿素a浓度呈显著负相关，与溶解无机氮呈极显著正相关；浮游动物总丰度与水温呈显著负相关；浮游动物生物量与水温呈极显著负相关，与溶解氧呈显著正相关。

3. 讨论

3.1 群落结构

调查期间，海陵湾共发现浮游动物132种，以桡足类最为丰富，是海湾浮游动物群落中最重要的类群，是中国海湾的一个普遍现象^[16-19]。原生动物是海陵湾浮游动物在冬季的唯一优势类群，在浮游动物群落中占有重要的数量地位，而原生动物中又以夜光虫为主，主要分布在湾内海域。夜光虫是偏冷水性的广温广盐性赤潮种，在广东沿岸的低温季节多次形成赤潮^[20]。海陵湾夜光虫也仅出现在温度较低的冬春季节。

海陵湾北面为入海河流，南面为高盐南海水，宽阔的湾口使咸淡水交换充分，并主要存在河口低盐类群、广温广盐类群、暖水沿岸类群和暖水外海类群等4种浮游动物生态类群。海陵湾浮游动物群落在冬季以夜光虫占有绝对优势，但夏季消失。夏季，海陵湾处于丰水期，充沛的河水与南海高盐水高度混合，使该季节浮游动物优势种同时存在4种生态类群，显示了海陵湾夏季浮游动物群落的复杂性。秋季，暖水沿岸种、外海暖水种和广温广盐种依然为该季节的优势种，但优势种类发生了变化。春季，夜光虫再次出现，与鸟喙尖头溞 (Penilia avirostris)、肥胖三角溞 (Pseudevadne tergestina)和软拟海樽 (Dolioletta gegenbauri)共同形成优势。显然，除夜光虫在冬春季成为优势种外，其他种类仅在一个季节形成优势，说明海陵湾浮游动物优势种的季节变化明显，群落结构变化大。然而本研究的冬夏季间和秋春季间均跨越了一个季节，这也有可能导致该调查海域浮游动物群落季节变化明显，因此，在以后的研究中应尽量研究邻近季节的浮游动物变化以避免产生误差。

3.2 环境因子的影响

温度是影响浮游动物生长繁殖的重要环境因子^[11,21-22]。除夜光虫外，海陵湾浮游动物丰度春季最高，其后依次为秋季和冬季，夏季最低。金琼贝等^[22]发现桡足类等某些浮游动物适宜在20~30 ℃水温之间生长，而超过该上限后出现了负增长现象。海陵湾夏季水温平均为29.64 ℃，未超过最适温度上限，说明夏季水温不是导致浮游动物数量减少的主要因素，而海陵湾冬季水温平均为17.73 ℃，低于最适水温下限，也说明在冬季水温是限制浮游动物生长的因素之一。盐度是影响浮游动物生长繁殖的另一重要环境因子^{[11,21,23-24]}。黄加祺和郑重^[24]发现沿岸浮游动物可在盐度介于0~31.7的水环境生长，但超过该上限后出现了负增长现象。海陵湾夏季盐度平均为32.53，高于沿岸类群的最适盐度上限，有可能抑制浮游动物的生长。此外，海陵湾夏季雨水充沛，雨水的冲刷和海水的涌入导致该海域水体波动较大，也可能不利于浮游动物的大量繁殖。海陵湾浮游动物种类数的季节变化也与除夜光虫外的浮游动物丰度的季节变化相似，表现为春秋季高于冬夏季，说明海陵湾浮游动物更适合在春秋季生长，冬季主要受温度影响，而夏季则受多种因素共同制约。

海陵湾浮游动物丰度和生物量均在冬季最高，夏季最低。相关分析表明，浮游动物丰度和生物量均与水温呈现显著和极显著的负相关关系，但这种关系在极大程度上受夜光虫影响。已有研究表明，夜光虫生长的最适温度在17～22 ℃^[20,25]，水温高于25 ℃时夜光虫会大量死亡^[26]，而室内实验结果也表明夜光虫的生存上限水温约为26 ℃^[27]。海陵湾冬、夏、秋、春季的水温分别为17.73 ℃、29.64 ℃、26.06 ℃和23.93 ℃，只有冬季水温在最适温度范围内，适合夜光虫大量繁殖，春季水温略高于最适水温，夜光虫可以生长但丰度不高，夏、秋季节水温均高于26 ℃，在调查中均未发现夜光虫。夜光虫在海陵湾的出现及其丰度与温度密切相关，主要表现为低温季节丰度高，高温季节丰度低，与南海北部海域的报道^[28-29]相似。从表4浮游动物与环境因子的相关性也可看出，水温与以夜光虫为主的原生动物类群丰度呈显著的负相关，而与其他类群丰度则不存在显著的相关关系，说明以夜光虫为主的原生动物类群对浮游动物丰度和生物量与水温均呈显著负相关关系的贡献很大，而除夜光虫外，浮游动物可能不与水温呈显著负相关关系，因为除夜光虫外的浮游动物丰度表现为春秋季高于冬夏季，与水温不呈明显的趋势性变化。除温度外，夜光虫的分布还受营养盐的影响。许多研究表明，夜光虫与营养盐呈正相关关系^[30-31]。但在本研究中，以夜光虫为主的原生动物与磷酸盐及溶解无机氮均呈不显著的负相关关系。营养盐和夜光虫主要通过浮游植物形成间接关系，可以认为营养盐是夜光虫的“初级养分”^[29]，但有时浮游植物丰度与营养盐并不成正比关系^[32]，夜光虫与浮游植物丰度亦如此。冬季S1的夜光虫丰度最高(35 400个·m⁻³)，而叶绿素a仅3.47 mg·m⁻³，说明在采样前较长一段时间内叶绿素a浓度可能远高于采样时的浓度，随着夜光虫的大量摄食浮游植物急剧减少。此外，Uhlig和Sahling^[33]、Umani等^[34]发现水体的富营养化并不一定引起夜光虫繁殖，在水体保持稳定富营养化较长的一段时间内往往没有夜光虫出现。因此，夜光虫的大量繁殖并不直接依赖于水体的高营养盐环境，而是多个因素综合作用的结果。

表 4 浮游动物与环境因子的相关关系

Table 4. Pearson correlation between zooplankton and environmental factors

环境因子 environmental factor	原生动物 Protozoa	枝角类 Cladocera	桡足类 Copepoda	毛颚类 Chaetognatha	海樽类 Thaliacea	幼体类 larva	ZA/ (个·m⁻³)	ZB/ (mg·m⁻³)
水温/℃ temperature	0.351^*	−0.067	−0.148	0.040	−0.076	0.057	−0.354^*	−0.526^**
盐度 salinity	0.047	−0.488^**	−0.004	−0.025	−0.227	−0.174	0.021	−0.006
ρ(叶绿素 a )/(mg·L⁻¹) Chl a concentration	0.064	−0.354^*	0.142	0.045	−0.218	−0.070	0.054	0.256
ρ(溶解氧)/(mg·L⁻¹) DO	0.319	0.003	0.235	0.063	0.175	0.054	0.329	0.558^*
ρ(磷酸盐)/(mg·L⁻¹) PO₄ ^3－-P	−0.128	−0.320	−0.052	−0.002	−0.165	−0.063	−0.143	0.080
ρ(溶解无机氮)/(mg·L⁻¹) DIN	−0.061	0.513^**	−0.107	−0.080	0.299	0.091	−0.041	−0.050
注：ZA. 浮游动物丰度；ZB. 浮游动物生物量；. P<0.05; *. P<0.01Note: ZA. zooplankton abundance; ZB. zooplankton biomass

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夜光虫是一种常见的赤潮生物，赤潮爆发时可引起大量海洋生物死亡，如果赤潮发生在养殖区，则会对养殖业造成巨大损失。海陵湾在冬季出现了大量夜光虫，虽丰度暂时还未达到赤潮阈值，但其丰度之高很有可能随时形成赤潮，需时刻监测其发展动态，以及时应对并减少因赤潮带来的损失。

图 1 分子标记Y1和Y2在正常黄颡鱼 (XX，XY) 中PCR扩增条带电泳图

M. 标准物质2 000；后图同此

Figure 1. Electrophoresis of PCR amplified bands of molecular markers Y1 and Y2 in P. fulvidraco (XX, XY)

M. Marker 2 000; the same below

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图 2 分子标记Y1和Y2在黄颡鱼家系 (XY♀×XY♂) 部分个体PCR扩增条带电泳图

Figure 2. Electrophoresis of PCR amplified bands of molecular markers Y1 and Y2 in some individuals of P. fulvidraco family (XY♀×XY♂)

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表 1 17β-雌二醇处理的两种饵料对黄颡鱼雄鱼 (XY) 成活率和性逆转率的影响

Table 1 Effects of two kinds of bait treated by E₂ on survival rate and sex reversal rate of male P. fulvidraco (XY)

指标 Index	卤虫组 Artemia sp. group		饲料组 Feed group	对照组 Control group
开口第几天投喂 Feeding on n^th day of opening	1	5	1	1
发育好 Well developed/尾	27.33±6.57^a	0.00±0.00^b	39.33±5.70^a	0.00±0.00^b
发育差 Poorly developed/尾	7.33±1.33a	38.67±2.40^b	0.00±0.00^c	0.00±0.00^c
雄性 Male/尾	1.33±1.33^a	8.00±1.15^b	0.00±0.00^a	79.67±3.18^c
成活率 Survivall rate/%	36.00±7.57^a	46.67±2.40^a	39.33±5.70^a	79.67±3.18^b
性逆转率 Sex reversal rate/%	75.20±2.72^a	0.00±0.00^b	100.00±0.00^c	0.00±0.00^b
注：同一行数字上的不同字母表示差异显著 (P<0.05) Note: The values with different letters within the same row indicate significant difference (P<0.05).

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表 2 3个家系正常组的成活率及各个基因型性别比例统计

Table 2 Statistics of survival rate and sex ratio of each genotype in three normal families

基因型及指标 Genotype and index		家系1 Family 1	家系2 Family 2	家系3 Family 3
XX/尾	雌性 Female	12.00±2.52^a	9.33±2.91^a	14.67±1.45^a
	雄性 Male	1.00±0.58^a	0.67±0.33^a	0.33±0.33^a
XY/尾	雌性 Female	1.33±0.33^a	1.33±0.33^a	2.00±1.00^a
	雄性 Male	29.33±2.33^a	33.33±3.18^a	33.33±5.70^a
YY/尾	雌性 Female	0.00±0.00^a	0.00±0.00^a	0.00±0.00^a
	雄性 Male	7.67±0.67^a	6.33±0.67^a	6.33±0.67^a
成活率 Survival rate/%		51.33±5.04^a	51.00±5.51^a	56.67±8.09^a
XX雌性率 XX Female rate/%		90.91±5.25^a	94.75±2.72^a	97.44±2.56^a
XY雄性率 XY Male rate/%		95.74±0.75^a	95.96±1.32^a	94.56±0.79^a
YY雄性率 YY Male rate/%		100.00±0.00^a	100.00±0.00^a	100.00±0.00^a

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表 3 3个家系诱导组的成活率及性逆转率统计

Table 3 Statistics of survival rate and sex reversal rate of three induced families

基因型及指标 Genotype and index	家系1 Family 1	家系2 Family 2	家系3 Family 3
雌性 Female/尾	29.50±7.50^a	51.00±2.00^a	38.50±7.50^a
雄性 Male/尾	1.00±1.00^a	2.50±0.50^a	1.50±0.50^a
XX/尾	6.50±0.50^a	12.50±0.50^b	8.00±0.00^a
XY/尾	17.00±5.00 ^a	27.50±1.50 ^a	28.50±5.50 ^a
YY/尾	7.00±3.00^a	13.50±0.50^a	3.50±2.50^a
成活率 Survival rate/%	20.34±5.67^a	35.67±1.00^a	26.67±5.34^a
性逆转率 Sex reversal rate/%	97.00±3.00^a	94.00±1.00^a	95.55±0.50^a

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参考文献(31)

[1]	代云云, 袁永明, 袁媛, 等. 我国黄颡鱼产业生产现状与发展趋势分析[J]. 现代商贸工业, 2019, 23(9): 22-24.
[2]	刘汉勤, 崔书勤, 侯昌春, 等. 从XY雌鱼雌核发育产生YY超雄黄颡鱼[J]. 水生生物学报, 2007, 31(5): 718-725. doi: 10.3321/j.issn:1000-3207.2007.05.018
[3]	杨天毅, 熊阳, 丹成, 等. 利用鱼类性逆转技术创制黄颡鱼XX雄鱼的方法[J]. 水生生物学报, 2018, 42(5): 871-878. doi: 10.7541/2018.107
[4]	WANG D, MAO H L, CHEN H X, et al. Isolation of Y- and X-linked SCAR markers in yellow catfish and application in the production of all-male populations[J]. Anim Genet, 2009, 40(6): 978-981. doi: 10.1111/j.1365-2052.2009.01941.x
[5]	DAN C, MEI J, WANG D, et al. Genetic differentiation and efficient sex-specific marker development of a pair of Y and X-linked markers in yellow catfish[J]. Int J Biol Sci, 2013, 9(10): 1043-1049. doi: 10.7150/ijbs.7203
[6]	孙源. 黄颡鱼 (Pelteobagrus fulvidraco) 群体遗传结构分析及性别特异性分子标记的筛选[D]. 哈尔滨: 东北林业大学, 2011: 38-40.
[7]	NAKADA N, NYUNOYA H, NAKAMURA M, et al. Identification of estrogenic compounds in wastewater effluent[J]. Environ Toxicol Chem, 2004, 23(12): 2807-2815. doi: 10.1897/03-699.1
[8]	姚道霞. 黄颡鱼性分化及激素诱导性转化研究[D]. 哈尔滨: 东北林业大学, 2007: 34-35.
[9]	HENDRY C I, MARTIN-ROBICHAUD D J, BENFEY T J. Hormonal sex reversal of Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus L.)[J]. Aquaculture, 2003, 219(1/2/3/4): 769-781.
[10]	PARK I S, KIM J H, CHO S H, et al. Sex differentiation and hormonal sex reversal in the bagrid catfish Pseudobagrus fulvidraco (Richardson)[J]. Aquaculture, 2004, 232(1/2/3/4): 183-193.
[11]	刘少军, 刘筠. 雌二醇诱导革胡子鲇性转化及性腺观察[J]. 湖南师范大学自然科学学报, 1994, 17(1): 75-79.
[12]	游鑫, 邓闵, 刘全圣, 等. 黄颡鱼性腺分化及温度对性别分化的影响[J]. 华中农业大学学报, 2016, 35(1): 106-113.
[13]	FUZZEN M L M, BERNIER N J, van der KRAAK G. Differential effects of 17β-estradiol and 11-ketotestosterone on the endocrine stress response in zebrafish (Danio rerio)[J]. Gen Comp Endocrinol, 2001, 170(2): 365-373.
[14]	JIN Y X, SHU L J, HUANG F Y. et al. Environmental cues influence EDC-mediated endocrine disruption effects in different developmental stages of Japanese medaka (Oryzias latipes)[J]. Aquat Toxicol, 2011, 101(1): 254-260. doi: 10.1016/j.aquatox.2010.10.005
[15]	李国超. 17β-雌二醇对斑马鱼的毒性研究[D]. 北京: 中国农业科学院, 2015: 6-13
[16]	周锋祺, 谢庆平, 楼宝, 等. 17β-雌二醇浸浴对小黄鱼早期生长及性腺发育的影响[J]. 浙江海洋大学学报, 2018, 37(4): 302-307.
[17]	CARVALHO C V A, PASSINI G, COSTA W M, et al. Effect of estradiol-17β on the sex ratio, growth and survival of juvenile common snook (Centropomus undecimalis)[J]. Acta Sci Anim Sci, 2014, 36(3): 239-245. doi: 10.4025/actascianimsci.v36i3.22839
[18]	BLAZQUEZ M, ZANUY S, CARRILLO M, et al. Structural and functional effects of early exposure to estradiol-17β and 17α-ethynylestradiol on the gonads of the gonochoristic teleost Dicentrarchus labrax[J]. Fish Physiol Biochem, 1998, 18(1): 37-47. doi: 10.1023/A:1007736110663
[19]	MALISON J A, KAYES T B, WENTWORTH B C, et al. Growth and feeding responses of male versus female yellow perch (Perca flavescens) treated with estradiol-17β[J]. Can J Fish Aquat Sci, 1988, 45(11): 1942-1948. doi: 10.1139/f88-226
[20]	张晓彦, 刘海金. 17β-雌二醇对半滑舌鳎性分化和生长的影响[J]. 东北农业大学学报, 2009, 40(6): 67-72. doi: 10.3969/j.issn.1005-9369.2009.06.014
[21]	PIFERRER F, RIBAS L, DIAZ N. Genomic approaches to study genetic and environmental influences on fish sex determination and differentiation[J]. Mar Biotechnol (NY), 2012, 14: 591-604. doi: 10.1007/s10126-012-9445-4
[22]	BROWN E E, BAUMANN H, CONOVER D O. Temperature and photoperiod effects on sex determination in a fish[J]. J Exp Mar Biol Ecol, 2014, 461: 39-43. doi: 10.1016/j.jembe.2014.07.009
[23]	HAYASHI Y, KOBIRA H, YAMAGUCHI T, et al. High temperature causes ma sculinization of genetically female medaka by elevation of cortisol[J]. Mol Reprod Dev, 2010, 77(8): 679-686. doi: 10.1002/mrd.21203
[24]	RUBIN D A. Effect of pH on sex ratio in cichlids and a poecillid[J]. Copeia, 1985(1): 233-235.
[25]	FRANCIS R C, BARLOW G W. Social control of primary sex differentiation in the Midsa cichlid[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1993, 90(22): 10673-10675. doi: 10.1073/pnas.90.22.10673
[26]	OSPINA-ALVAREZ N, PIFERRER F. Temperature-dependent sex determination in fish revisited: prevalence, a single sex ratio response pattern, and possible effects of climate change[J]. PLoS One, 2008, 3: e2837. doi: 10.1371/journal.pone.0002837
[27]	PAVLIDIS M, KOUMOUNDOUROS G, STERIOTI A, et al. Evidence of temperature-dependent sex determination in the European sea bass (Dicentrarchus labrax L.)[J]. J Exp Zool, 2000, 287: 225-232. doi: 10.1002/1097-010X(20000801)287:3<225::AID-JEZ4>3.0.CO;2-D
[28]	MATSUDA M, NAGAHAMA Y, SHINOMIYA A, et al. DMY is a Y-specific DM-domain gene required for male development in the medaka fish[J]. Nature, 2002, 417: 559-563. doi: 10.1038/nature751
[29]	MASUYAMA H, YAMADA M, KAMEI Y, et al. Dmrt1 mutation causes a male-to-female sex reversal after the sex determination by Dmy in the medaka[J]. Chromosome Res, 2012, 20: 163-176. doi: 10.1007/s10577-011-9264-x
[30]	TAKEHANA Y, MATSUDA M, MYOSHO T, et al. Co-option of Sox3 as the male-determining factor on the Y chromosome in the fish Oryzias dancena[J]. Nat Commun, 2014, 5: 1-10.
[31]	谢彬月, 熊舒婷, 梅杰. 黄颡鱼性别决定和分化相关基因的鉴定及其在性腺中的表达分析[J]. 湖北农业科学, 2017, 56(12): 2362-2367.

施引文献(13)

期刊类型引用(7)

1.	孙伟恒，孙志宾，王新安，马爱军，李迎娣，苟冬惠，于宏，李昊喆，Vorathep Muthuwan，曲江波，洪宜展. 眼斑双锯鱼(Amphiprion ocellaris)发育中体色花纹时序发生的色素细胞变化和控制基因表达的分析 Ⅰ.胚胎时期. 海洋与湖沼. 2024(02): 489-498 . 百度学术
2.	孙志宾，孙伟恒，王新安，马爱军，黄智慧，李迎娣，苟冬惠，于宏，闫鹏飞，田蜜，Vorathep Muthuwan，曲江波，洪宜展. 眼斑双锯鱼(Amphiprion ocellaris)发育中体色花纹时序发生的色素细胞变化和控制基因表达的分析Ⅱ.仔稚幼鱼时期. 海洋与湖沼. 2024(03): 756-764 . 百度学术
3.	郭珺，陈小玉，史秀兰，罗明坤，林凯，董在杰. 不同体色锦鲤自交及红白♀×福瑞鲤2号♂杂交子代的生长与形态分析. 水产养殖. 2024(08): 1-6 . 百度学术
4.	李潇轩，郑端端，罗明坤，杨志强，郭珺，王兰梅，董在杰. 不同体色锦鲤和“福瑞鲤2号”mtDNA D-loop序列遗传变异分析. 上海海洋大学学报. 2023(02): 266-274 . 百度学术
5.	刘明哲，姚金明，赵静，夏长革，牛小天，王桂芹. 虾青素对大鳞副泥鳅生长、饲料利用、体色及相关基因表达的影响. 吉林农业大学学报. 2022(02): 228-235 . 百度学术
6.	傅建军，朱文彬，罗文韬，王兰梅，罗明坤，董在杰. 不同体色鲤的生长、酪氨酸酶活性、黑色素含量及基因表达比较. 中国水产科学. 2021(08): 939-947 . 百度学术
7.	孟超，徐皓，黄超，李明明，宫晓婷，田光辉，孙钰，李宇飞，李慧，苏延友. 鱼类体色相关功能基因的研究进展. 湖南文理学院学报(自然科学版). 2020(03): 30-35 . 百度学术

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1. 材料与方法
1.1 样品采集与分析
1.2 统计方法
2. 结果
2.1 种类组成
2.2 优势种
2.3 丰度和生物量的平面分布和季节变化
2.4 浮游动物与环境因子关系
3. 讨论
3.1 群落结构
3.2 环境因子的影响

17β-雌二醇诱导黄颡鱼雌性化的研究

作者简介: 王成龙 (1989—)，男，硕士，助理工程师，从事水产动物遗传育种研究。E-mail: 836597116@qq.com

通讯作者: 刘 峰 (1975—)，男，副研究员，从事水产动物遗传育种研究。E-mail: lf6475@sina.com

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