Calcium ion binding ability of tilapia skin hydrolysate and its antioxidant activity
-
摘要:
该研究利用中性蛋白酶、Protamex1.5L和碱性蛋白酶酶解罗非鱼 (Oreochromis mossambicus) 鱼皮，研究了各种酶解产物对钙离子 (Ca2+) 的结合能力，比较了酶解物结合Ca2+后的抗氧化能力，并分析了结合物的傅里叶红外光谱 (FT-IR)。结果显示，Protamex1.5L水解罗非鱼皮2 h的酶解产物具有最高的Ca2+结合率 (87.79%)；3种罗非鱼皮酶解产物均存在抗氧化性，其中Protamex1.5L酶解罗非鱼皮产物的1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)自由基清除率、·OH自由基清除率和还原力最高分别为51.46%、17.26%和0.09；罗非鱼皮酶解物 (TSH) 结合Ca2+后，钙离子结合物 (TSH-Ca) 的DPPH自由基清除率和羟基自由基清除率减弱，还原力增强；FT-IR分析结果表明了Ca2+与TSH中氨基氮原子和羰基氧原子发生了结合。
Abstract:By digesting tilapia (Oreochromis mossambicus) skin with neutral protease, Protamex1.5L and alkaline protease, we studied the binding ability of different enzymatic products to calcium ions (Ca2+), compared the antioxidant capacity of enzymatic hydrolysates and their combinations, and analyzed the Fourier infrared spectrum of the conjugate. The results show that the enzymatic hydrolysate of Protamex1.5L hydrolyzed tilapia skin had the highest calcium ion binding rate of 87.79%. All the three tilapia skins hydrolysates had antibacterial properties, and the DPPH free radical scavenging rate, OH radical scavenging rate and reducing power of the products of Protamex1.5L enzymatically tilapia skin were 51.46%, 17.26% and 0.09, respectively. After the tilapia skin hydrolysate (TSH) was combined with calcium ions, the DPPH free radical scavenging rate and hydroxyl radical scavenging rate of calcium ion chelate (TSH-Ca) decreased, but the reducing power was enhanced. Fourier transform infrared spectroscopy reveals that calcium ion had combined with amino nitrogen atom and carbonyl oxygen atom in TSH.
-
Keywords:
- tilapia skin /
- enzymatic hydrolysis /
- calcium ion combination /
- antioxidant activity
-
斑节对虾 (Penaeus monodon) 俗称草虾、虎虾，是我国海水养殖的重要经济品种[1]。目前，斑节对虾亲虾的全人工养殖技术已取得突破和巨大进展，但在繁育过程中，传统剪眼柄的促熟方式常造成一定的死亡。因此，寻找诱导性腺成熟的新方法、研究性腺发育相关调控激素至关重要[2]。甲壳动物的性腺发育和成熟不仅受到激素的调节，还受多种神经递质的影响和调控[3]。然而目前关于与哺乳动物类似的、直接作用于性腺器官的性激素研究较少。最近，在甲壳动物中发现了一种与哺乳动物卵泡刺激激素 (Follicle-stimulating homne, FSH) 类似的激素，命名为甲壳动物雌性激素 (Crustacean female sex hormone, CFSH)，并被认为与甲壳动物卵巢发育调控相关[4-5]。
CFSH最初由Zmora和Chung[4]于2014年在蓝蟹 (Callinectes sapidus) 中发现，随后被鉴定为在雌虾生殖过程中起重要作用的眼柄神经节激素。目前在拟穴青蟹 (Scylla paramamosain)[6]、克氏原螯虾 (Procambarus clarkii) 及凡纳滨对虾 (Litopenaeus vannamei)[7]等甲壳动物中检测到2~4种CFSH同种型或不同亚型。大多数研究都集中于CFSH在雌性中发挥的作用，但最新研究可以看出，部分甲壳动物CFSH的表达不仅仅局限于在雌性的眼柄神经和卵巢中。在罗氏沼虾(Macrobrachium rosenbergii)中，CFSH基因在各个组织均有表达，且雌雄个体中均可检测到[8]。对拟穴青蟹的研究也发现类似的结论[6]。可见该基因可能并非是雌性特有。关于拟穴青蟹的研究发现，CFSH可以通过影响促雄性腺 (Androgenic gland, AG) 的表达而影响雄性性腺的分化[4]。通过RNA干扰CFSH基因的表达会造成蓝蟹生殖孔的缩小，还会导致其刚毛变短，影响生长状况和护幼行为[4]。已知的大多数甲壳类动物，如罗氏沼虾[8]和拟穴青蟹[6]等的CFSH均包含有白介素17 (IL-17)结构域。而IL-17是在免疫过程中非常重要的促炎因子[10]，因此推测CFSH基因并不仅在生殖中起作用，而且是与甲壳动物高血糖激素 (Crustacean hyperglycemic hormone, CHH) 家族基因一样存在多功能性现象，除与性腺发育有关外，还能参与机体生长、免疫调节等多种生理过程[11-12]。目前，已有关于蓝蟹[4]、罗氏沼虾[8]和日本囊对虾(Marsupenaeus japonicus)[9]等多种甲壳动物CFSH基因克隆和功能性的相关研究，但未见有关斑节对虾的报道。
在笔者实验室的高通量转录组测序结果基础上，本研究克隆获得了斑节对虾CFSH基因的开放阅读框(ORF)及3'非编码区(UTR)，解析了该序列的基本特征，评估其在不同组织和发育阶段的表达差异，探索其在卵巢不同时期以及细菌刺激条件下的表达规律，以期为探究甲壳类动物CFSH的多功能性提供参考。
1. 材料与方法
1.1 实验材料
实验用斑节对虾由中国水产科学研究院南海水产研究所深圳试验基地提供。在循环水池中暂养3 d后使用。选取健康的斑节对虾雌、雄各3尾进行解剖，分别取眼柄神经、脑神经、胸神经、肝胰腺、鳃、肌肉、肠、胃、淋巴和卵巢等组织，用于组织cDNA模板的制备。
RNA提取试剂盒购自Magen公司；逆转录试剂盒 (PeimeScript II 1st Strand cDNA Synthesis Kit) 和荧光定量试剂盒 (TB Green) 均购自TaKaRa公司。
1.2 总RNA的提取与cDNA的合成
使用Magen RNA提取试剂盒提取得到斑节对虾各组织的总RNA，经超微分光光度计NanoDrop 2000测定浓度与纯度，经1.2%琼脂糖凝胶电泳检测条带的完整性。之后用于制作RACE模板的样品按照PrimeScript II 1st Strand cDNA Synthesis Kit (TaKaRa) 试剂盒合成cDNA第一条链。各组织分别取1 μg总RNA用做荧光定量PCR的样品，按照PrimeScript RT reagent Kit With gDNA Eraser试剂盒进行反转录。所得cDNA经EF-1α引物 (表1) 检测后于–20 ℃保存备用。
表 1 实验所用引物及其序列Table 1. Primers and sequences used in this study引物名称
Primer's name引物序列
Primer's sequencePmCFSH 3'RACE1 5'CGCTGACCGCTGCTGTGAAATC3' PmCFSH 3'RACE2 5'CGGGCTGTGGCGAGTCCATTTA3' PmCFSH 5'RACE1 5'CCGACAAGTGCGAAGCCTCAGC3' PmCFSH 5'RACE2 5'AGTGTGAGCCGCCGCATACACAC3' CFSH-qF 5'CGATCTTGACGCTGAAGGAAAA3' CFSH-qR 5'TCGTGCCGACTAAACCAATAAA3' EF-1α-F 5'AAGCCAGGTATGGTTGTCAACTTT3' EF-1α-R 5'CGTGGTGCATCTCCACAGACT3' 1.3 PmCFSH基因的克隆
根据笔者实验室构建的斑节对虾性腺转录组文库 (未发表) 筛选获得EST序列 (序列编号Cluster-24692.0_1)，经BLAST显示为CFSH相似片段，使用Primer 5.0软件设计验证该片段的引物，通过RACE (Rapid-amplification of cDNA ends) 技术用3'与5'RACE引物 (表1) 扩增获得斑节对虾CFSH基因的ORF及3'UTR。
1.4 PmCFSH基因的序列分析
生物信息学分析序列同源性比对用BLAST软件 (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi) 进行；用NCBI中的ORF finder (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html) 进行开放阅读框 (Open reading frame, ORF) 确定及序列翻译；使用Compute pI/Mw tool (http://www.expasy.org/tools/pi_tool.html) 推测蛋白的等电点和分子质量；利用NetNGlyc1.0 Server (http://www.cbs.dtu.dk/services/NetNGlyc/) 查找糖基化位点，NetPhos3.1 Server (http://www.cbs.dtu.dk/services/NetPhos/) 查找磷酸化位点；采用SignalP 5.0 Server (http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/) 寻找信号肽；采用WoLF PSORT (https://wolfpsort.hgc.jp/) 进行细胞内定位预测；用MEGA 7.0软件中的Neighbor-Joining (NJ) 法构建系统进化树。使用pfam进行蛋白质结构域预测 (http://pfam.xfam.org/)。使用SOPMA (https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.html) 进行蛋白质二级结构预测。采用SWISS-MODEL (https://swissmodel.expasy.org/) 进行三维结构构建。
1.5 PmCFSH基因在不同组织中的表达
以PmCFSH的全长为基础，设计荧光定量的特异性引物 (表1)，以EF-1α为内参基因，以双蒸水代替模板作阴性对照，选取健康的斑节对虾雌、雄各3尾进行解剖取样，提取不同组织的总RNA，以不同组织cDNA作为模板，按照TB Green说明书进行荧光定量PCR检测，每个样品和内参均设置3个重复。荧光定量PCR条件采用相对ΔCT法 (2–ΔΔCT法) 分析CFSH基因在各组织中的相对表达量。
1.6 PmCFSH基因在不同发育期的表达
根据江世贵[3]的描述，采集斑节对虾早期不同发育阶段的样品，包括受精卵期，无节幼体期，溞状幼体Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期，糠虾Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ期及幼虾期。其中无节幼体发育期需11 h，溞状幼体发育期需5 d、糠虾期需4 d，幼虾期则需4个月[3]。每个取样点取整虾 (取3 组平行样品) 保存在RNA later中以供制作模板使用。
1.7 PmCFSH基因在卵巢不同发育阶段的表达
根据黄建华等[13]的描述，采集斑节对虾卵巢发育3个不同时期的样品，包括核染色质期 (Ⅱ期)、周边核仁期 (Ⅲ期) 和卵黄囊期 (Ⅳ期)，取3组平行样品保存于RNA later中以供制作模板使用。
1.8 PmCFSH基因在不同细菌刺激下的表达
实验中所用的鳗弧菌 (Vibrio anguillarum)、哈维氏弧菌 (V. harveyi) 和金黄葡萄球菌 (Staphylococcus aureus) 均由中国水产科学研究院南海水产研究所渔业生物病害防治研究室惠赠。3种细菌分别从复苏平板上挑取单克隆置于LB液体培养基中，30 ℃、220 r·min−1培养12 h，次日取1/10菌液进行扩大培养3 h，6 000 ×g离心5 min，再用PBS重悬洗涤3次，最后用PBS重悬浓度至1×108 CFU·mL−1备用。
参考Qin等[14]、丁阳阳等[15]的细菌刺激实验，对实验组分别注射已稀释备用浓度为1×108 CFU∙mL−1的金黄葡萄球菌液100 μL、哈维氏弧菌液和鳗弧菌液，对照组注射100 μL PBS。对每只实验虾的第二腹节肌肉处注射菌液，分别在注射第0、第3、第6、第12、第24、第48 小时采集肝胰腺和鳃组织，保存于RNA later中，用于后期提取RNA制备cDNA模板，测定CFSH的相对表达量。
1.9 统计学分析
使用SPSS 23.0软件对定量结果进行单因素方差分析 (One-Way ANOVA)，结果以“平均值±标准差 (
$\overline X \pm {\rm{SD}} $ )”表示。分析差异显著性 (Turkey)，P<0.05为差异显著，P<0.01为差异极显著。若组间存在差异，则用Turkey方法进行多重比较分析。2. 结果
2.1 PmCFSH基因的cDNA序列特征
在笔者实验室获得的斑节对虾性腺转录组文库中获得CFSH的同源序列Cluster-24692.0，通过5'RACE得到该基因的cDNA。PmCFSH (GenBank 登录号 MT219891) 含有包括645 bp的ORF和 531 bp的3'UTR，共1 176 bp，存在典型的加尾信号序列AATAAA，推测编码1个214 氨基酸(aa)的蛋白，分子质量为23.9 kD，理论等电点为7.68。不稳定系数为46.91，分类为不稳定蛋白。溶脂数为88.04。总平均疏水指数为−0.155。不含糖基化位点，含有5个磷酸化位点，分别为T35、S45、S87、S159、S201。Signa1IP 显示斑节对虾CFSH基因含有29 aa的信号肽序列 (1 aa—29 aa)，WoLF PSORT分析其为分泌型蛋白 (图1)。
![]()
图 1 PmCFSH cDNA序列及其氨基酸序列黑色划线部分为转录组测序序列，其他部分为RACE扩增得到的序列；起始密码子 (ATG)、终止密码子 (TAA) 和加尾信号(AATAAA)用红色下划线标注，磷酸化位点用黑色方框标注；黄色阴影部分为信号肽位置，PolyA尾用灰色背景表示Figure 1. Nucleotide and deduced amino acid sequences of PmCFSHThe black underlined part is the transcriptome sequencing sequence, and the other parts are the sequences obtained by RACE amplification. The start codon (ATG), termination codon (TAA) and the end of the signal (AATAAA) are shown with the red lines; phosphorylation sites are shown in black frame. Signal peptide is highlighted in yellow, and the sequence of poly A is highlighted in gray.2.2 同源性和系统进化树分析
多重序列比对显示，PmCFSH的蛋白质序列与日本囊对虾CFSH蛋白和凡纳滨对虾uncharacterized protein LOC113812164同源性较强，其中与日本囊对虾的相似度为58.11%，而与凡纳滨对虾的相似度高达93.33% (图2)。
![]()
图 2 PmCFSH和凡纳滨对虾uncharacterized protein LOC113812164、日本囊对虾CFSH氨基酸序列多重比对黑色划线部分为斑节对虾CFSH蛋白的IL-17结构域Figure 2. Multiple sequence alignment on PmCFSH amino acid sequences with uncharacterized protein LOC113812164 of L. vannamei and CHSH amino acid of M. japonicusThe black lined part is the IL-17 domain of PmCFSH.搜集了甲壳动物13条CFSH氨基酸序列构建了系统进化树 (图3)。进化树整体分为CFSH1和CFSH2两大分支。PmCFSH与日本囊对虾MjaCFSH1，罗氏沼虾MroCFSH1a、MroCFSH1b，凡纳滨对虾LvaCFSH1a、LvaCFSH1b，克氏原螯虾PclCFSH1，蓝蟹CsaCFSH1聚为一支，PmCFSH与该分支亲缘关系最近，而与MroCFSH2b、CmaCFSH2b、MroCFSH2a、PclCFSH2b、PclCFSH2a、CmaCFSH2a分为两大支，因此笔者分析认为PmCFSH为CFSH1型。
2.3 PmCFSH的结构域和蛋白质三维结构分析
通过SOPMA软件对PmCFSH的氨基酸序列的二级结构进行预测，结果显示其有98个α-螺旋，占45.79 %；11个β-转角，占5.14 %；79个无规则卷曲，占36.92 %；26个延伸链，占12.15 % (图4)。Pfam在线预测表明PmCFSH具有IL-17结构域，位于127 aa—197 aa (图5-a)。三维结构分析表明，PmCFSH与日本囊对虾MjaCFSH1的三维结构较为接近 (图5-b和图5-c)，但PmCFSH的C端较长，并伴随少量α-螺旋。两者与人FSH的三维结构类同 (图5-d)，即可能存在非典型的2个亚基。
![]()
图 4 SOPMA软件对PmCFSH蛋白质二级结构的分析结果蓝色表示α-螺旋；绿色表示β-转角；紫色表示无规则卷曲；红色表示延伸链Figure 4. Secondary structure of PmCFSH protein analyzed by SOPMABlue. α-helix; Green. β-turn; Purple. Random coil; Red. Extended strand![]()
图 5 CFSH结构域分布以及三维结构预测图a. PmCFSH的结构域示图；b、c、d分别为斑节对虾CFSH、日本囊对虾CFSH1、人FSH的三维预测结构Figure 5. PmCFSH domain distribution and three-dimensional structure prediction diagramsa. Domain of PmCFSH; b. Three-dimensional structure of PmCFSH; c. Three-dimensional structure of MjaCFSH1; d. Three-dimensional structure of Homo FSH2.4 PmCFSH基因在不同组织中的表达情况
以EF-1α为内参基因，通过qPCR检测PmCFSH 在各组织中的表达状况 (图6)。PmCFSH在胸神经和淋巴组织中表达量最高，在肌肉、鳃、脑、胃组织中表达量中等，在心脏、眼柄神经、精巢、肝胰腺、卵巢中表达量低。其中在胸神经中表达量分别是卵巢的41.84倍和肝胰腺的44.32倍。
![]()
图 6 PmCFSH在各组织中的表达图中值为“平均值±标准差” (n=3)，不同小写字母表示组间差异显著 (P<0.05)；后图同此Figure 6. Expression of PmCFSH in different tissuesThe values are $ \overline X \pm {\rm{SD}} $ (n=3). Bars with different lowercase letters indicate significant differences (P<0.05). The same case in the following figure.2.5 PmCFSH在不同发育阶段的表达分析
检测了包括受精卵、无节幼体期、溞状幼体期、糠虾期和幼虾期在内的不同幼体发育过程中PmCFSH的表达规律 (图7)。结果显示，PmCFSH在受精卵期表达量较低，但在无节幼体期显著升高11.24倍，随即下降，但溞状幼体期、糠虾期Ⅰ到Ⅲ期的表达量均有显著上升趋势，其中溞状幼体Ⅰ、Ⅱ期表达量较低，与受精卵期相近。随着发育进程的推进，PmCFSH的表达量在溞状幼体Ⅲ、糠虾Ⅰ期逐渐升高，至糠虾Ⅱ、Ⅲ期时显著升高，约为受精卵时期的8.77~10.55倍，最后在仔虾期达到高峰，为受精卵期的24.04倍。
![]()
图 7 PmCFSH在发育各期的表达情况O. 受精卵；N. 无节幼体；Z Ⅰ—Z Ⅲ. 溞状幼体Ⅰ—Ⅲ期；M Ⅰ—M Ⅲ. 糠虾Ⅰ—Ⅲ期；PL. 幼虾期Figure 7. Expression of PmCFSH during embryonic developmentO. Oosperm; N. Nauplius; Z I−Z III. Zoea I−III; M I−M III. Mysis I−III; PL. Past larvae2.6 PmCFSH在卵巢不同发育阶段的表达分析
以卵巢发育Ⅱ期、Ⅲ期、Ⅳ期的组织为模板，检测PmCFSH在卵巢发育早期和后期的表达情况 (图8)。该基因在核染色质期 (Ⅱ期) 表达量最低，在周边核仁期 (Ⅲ期) 和卵黄囊期 (Ⅳ期) 表达量均比Ⅱ期高，且呈逐渐升高的趋势，分别为Ⅱ期的1.31和2.83倍。
![]()
图 8 PmCFSH 基因在卵巢不同时期中的表达情况Figure 8. Expression of PmCFSH at different ovarian developmental stages2.7 PmCFSH在不同细菌刺激下的表达
为探究PmCFSH是否在免疫中发挥功能，研究了3种病原菌刺激作用下CFSH的表达模式。结果显示，在肝胰腺中，PmCFSH的表达量变化与鳃组织相比较为平缓，其中受金黄色葡萄球菌刺激下，第48小时的表达量最高，为第0小时的2.22倍 (图9-a)。而在鳃组织中，PmCFSH受哈维氏弧菌和金黄色葡萄球菌刺激后均出现表达量上调的现象。其中哈维氏弧菌刺激后，在第3小时表达量最高，为第0小时的8.56倍 (图9-b)。随后降低。受金黄色葡萄球菌刺激后在第12小时表达量最高，为第0小时的14.16倍 (图9-b)。
![]()
图 9 肝胰腺 (a) 与鳃组织 (b) 中PmCFSH基因受革兰氏菌刺激后的表达情况*. 组间差异显著 (P<0.05)Figure 9. mRNA expression levels of PmCFSH in hepatopancreas (a) and gill (b) after being challenged with different kinds of Gram bacteria*. Significant difference between groups (P<0.05)3. 讨论
3.1 PmCFSH序列分析
PmCFSH基因符合内分泌激素的特征。Zmora和Chung[4]发现蓝蟹、拟穴青蟹的CFSH在合成后并不会长时间在窦腺中储存，而是分泌在轴突道中，这表明CFSH有分泌型激素的特质。生物信息学分析也表明，PmCFSH属于分泌型蛋白，含有1~29 aa的信号肽序列。在序列特征上，斑节对虾CFSH与凡纳滨对虾uncharacterized protein LOC113812164、日本囊对虾CFSH相似，均含有高度保守的IL-17结构域；在糖基化位点数量上，斑节对虾不含有N-糖基化位点，但部分甲壳动物如日本囊对虾CFSH1，罗氏沼虾CFSH1a有1个糖基化位点，青蟹CFSH1有2个N-糖基化位点。N-糖基化位点对于FSH和促黄体生成素 (Luteinizing hormone, LH) 异源二聚体的形成、蛋白质折叠和特异性受体结合等功能上有着重要的意义[16]，因此提示PmCFSH在功能上可能有异于其他甲壳类动物的种属特异性；在进化上，显示PmCFSH的氨基酸序列与罗氏沼虾MroCFSH 1a、1b及日本囊对虾CFSH1均具有较近的亲缘关系，因此它们在功能上具有一定相似性。三维结构分析显示斑节对虾CFSH与FSH结构上有所类似，可能存在类似于α、β亚基的2个非典型亚基，α、β亚基在立体结构变化并结合在一起时具有激素生物学活性和免疫活性[16]，提示PmCFSH的2个非典型亚基可能具有相似的机制。
3.2 PmCFSH的组织表达和应激应答
在不同的甲壳动物中，CFSH在不同组织中的表达具有一定的种间差异。PmCFSH 在各组织中均显示出一定的表达量，其中在胸神经中表达量最高，在脑神经和眼柄神经中也具有较高的表达量，表明PmCFSH可能主要通过神经系统进行合成和分泌。在蓝蟹中，发现CFSH仅存在于眼柄神经节的细胞中，并在雌性生殖中起重要作用[4]；此外，CFSH还在克氏原螯虾[7]、红鳌螯虾 (Cherax quadricarinatus)[17]的眼柄、中枢神经系统和触角腺等组织中被检测到。除在神经组织中表达外，PmCFSH 在卵巢和精巢中均有微量表达，这与日本囊对虾CFSH在组织中的表达情况类似[9]。而在罗氏沼虾中，CFSH基因不仅存在于眼柄神经和卵巢中，在其他组织中也有表达[8]。由此可见，神经系统很可能是合成和分泌CFSH激素的主要器官。斑节对虾甲壳动物雌性激素可能与促性腺激素释放激素 (Gonadotropin-releasing hormone, GnRH) 等内分泌激素一样存在自分泌和旁分泌途径[18]。即斑节对虾可通过神经系统合成和分泌CFSH，作用于其他靶器官和性腺，实现对个体生长、发育及免疫功能的的调控。
此外，斑节对虾在淋巴组织和鳃中的表达量较高。淋巴组织是斑节对虾重要的免疫器官，肝胰腺和鳃已被证实也是斑节对虾合成免疫防御分子的主要场所和免疫应答的主要组织[19-20]。而3种病原菌刺激后的结果也显示，肝胰腺和鳃组织的PmCFSH在病原菌感染或刺激后呈上调表达的趋势。因此推测PmCFSH可能具有多功能性，不仅具有生殖调控的功能，在斑节对虾先天免疫中也起到一定作用，其含有的IL-17E结构域可能是在先天免疫过程中发挥作用的主要结构。在脊椎动物中，IL-17家族因子由活化的记忆T细胞产生，可介导过敏性炎症和寄生虫感染[21-23]。在合浦珠母贝 (Pinctada fucata)[24]、罗氏沼虾[8]等动物中均发现有IL-17的存在。在无脊椎动物中，Toll样受体 (TLR) / NF-κB信号通路在先天免疫系统中可对不同病原体的入侵起到关键作用[25]。研究表明，合浦珠母贝PfIL-17含有的IL-17结构域，可参与对细菌成分LPS和病毒成分poly (I:C) 的应答，并激活NF-κB信号通路发挥作用[26]。本研究中，在受到革兰氏阳性菌金黄色葡萄球菌刺激后，PmCFSH在肝胰腺、鳃组织中均被激活。斑节对虾在受到革兰氏阴性菌和阳性菌刺激后，鳃组织中PmCFSH分别在第3和第12小时达到峰值，随后显著降低。而在肝胰腺中的表达量则呈现波动趋势。因此推测PmCFSH可能受到IL-17结构域的调节，参与斑节对虾先天免疫过程，但其是否通过NF-κB类似转导机制发挥作用有待后续进一步的研究。
3.3 PmCFSH在不同胚胎发育时期及卵巢发育时期的表达
对中国明对虾 (Fenneropenaeus chinensis) 脑神经细胞组织观察发现，脑神经节从无节幼体期开始发育，在糠虾期形成神经体细胞群，到仔虾期时初步形成脑部结构[27]。在罗氏沼虾中，用处于4个性腺发育期的中枢神经系统组织和卵巢组织做定量分析，结果显示罗氏沼虾4个CFSH基因在中枢神经系统中的表达量要远高于卵巢组织[8]。本研究中，PmCFSH在不同发育阶段均有表达，且显示溞状幼体期以后，CFSH基因随着发育过程的推进表达量呈上升趋势，并在仔虾期达到高峰。结合组织分布结果来看，PmCFSH在胸神经和脑神经中均有很高的表达量，提示其可能参与神经系统的某些调控功能。
卵巢发育时期的结果显示，PmCFSH在卵巢发育Ⅱ到Ⅳ期，随卵巢的发育成熟表达量逐渐上调。在前期表达量较低，进入卵黄囊期Ⅳ后，表达显著上调。卵黄蛋白原 (Vitellogenin, Vg) 对于对虾的生长和抗菌免疫过程有着重要的作用[28]。在卵巢发育周期中，斑节对虾Vg随着卵巢发育的成熟，表达量呈现逐渐上升的趋势[29]。在日本囊对虾中，CFSH和Vg在卵黄性卵巢中的表达量均高于卵原性卵巢，且具有相似的表达水平。原位杂交和免疫组化实验显示，CFSH随着卵黄的积累水平增加[30]。因此笔者推测PmCFSH作用可能与其他甲壳动物的CFSH类似，即可以促进卵黄的形成和积累，调控卵母细胞的发育和成熟，但与Vg的关系还需进一步研究。
综上所述，本研究获得了斑节对虾CFSH基因的全长序列，对其基因结构进行了生物信息学分析，探讨了PmCFSH在斑节对虾不同组织、胚胎发育时期、卵巢发育时期以及细菌刺激过程的表达模式。结果表明PmCFSH在斑节对虾细菌刺激后有免疫响应，且在胚胎发育时期和卵巢发育时期发挥重要功能。研究结果为进一步探究PmCFSH在斑节对虾性腺调控中的作用机制，以及内分泌激素的多功能性相关研究提供了参考资料。
-
![]()
图 1 不同酶解时间水解度和钙离子结合能力的比较
Figure 1. Comparison of degree of hydrolysate and calcium ion binding ability of hydrolysates at different hydrolysis time
![]()
图 2 不同罗非鱼皮酶解物的1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基清除率的比较
Figure 2. Comparison of DPPH free radical scavenging rate of different TSH
![]()
图 3 Protamex1.5L不同时间的罗非鱼鱼皮酶解物和钙离子结合物的1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基清除率、·OH自由基清除率和还原力的比较
Figure 3. Comparison of DPPH· scavenging activity, ·OH scavenging rates and reducing power activity between TSH and TSH-Ca at different time in Protamex1.5L
表 1 最优的酶解条件
Table 1 Optimal enzymatic conditions
种类
type酶活力
enzyme activitypH 温度/℃
temperature加酶量/(U·g−1)
enzyme amount中性蛋白酶
neutral protease1×105 U·g−1 7.0 50 4 000 Protamex 1.5L 1.5 AU·g−1 7.0 50 4 000 碱性蛋白酶
alkaline protease2×105 U·g−1 8.5 50 4 000 
下载: 导出CSV
-
[1] 吴燕燕, 赵志霞, 李来好, 等. 添加外源酶类对腌制罗非鱼品质的影响[J]. 南方水产科学, 2018, 14(4): 104-113. [2] 农业部渔业局. 中国渔业统计年鉴[M]. 北京: 中国农业出版社, 2018. [3] OLSEN R L, TOPPE J, KARUNASAGAR I. Challenges and realistic opportunities in the use of by-products from processing of fish and shellfish[J]. Trends Food Sci Technol, 2014, 36(2): 144-151. doi: 10.1016/j.jpgs.2014.01.007
[4] HU F, CI A T, WANG H, et al. Identification and hydrolysis kinetic of a novel antioxidant peptide from pecan meal using Alcalase[J]. Food Chem, 2018, 261: 301-310. doi: 10.1016/j.foodchem.2018.04.025
[5] 陈美珍, 余杰, 郭慧敏. 大豆分离蛋白酶解物清除羟自由基作用的研究[J]. 食品科学, 2002, 23(1): 43-47. doi: 10.3321/j.issn:1002-6630.2002.01.007 [6] 马军, 侯萍, 陈燕, 等. 几种海藻多糖抗氧化活性及体外抗脂质过氧化作用的研究[J]. 南方水产科学, 2017, 13(6): 99-106. [7] 王小慧, 戚勃, 杨贤庆, 等. 响应面法优化末水坛紫菜蛋白酶解工艺及其酶解液抗氧化活性研究[J]. 南方水产科学, 2019, 15(2): 93-101. doi: 10.12131/20180099 [8] JIN J E, AHN C B, JE J Y. Purification and characterization of antioxidant peptides from enzymatically hydrolyzed ark shell (Scapharca subcrenata)[J]. Process Biochem, 2018, 72: 170-176. doi: 10.1016/j.procbio.2018.06.001
[9] 彭喆, 侯虎, 张凯, 等. 鳕鱼骨胶原肽及其钙肽螯合物的营养吸收特性[J]. 中国食品学报, 2018, 18(3): 23-29. [10] 姜丹丹, 侯虎, 杜芬, 等. 鳕鱼皮源锌肽螯合物结构表征及基于Caco-2细胞模型评价其促锌吸收特性[J]. 中国食品学报, 2018, 18(9): 265-272. [11] 李敏, 梁大连, 邵珠德, 等. 阿胶肽-铁螯合物对缺铁性贫血小鼠的初步药效学研究[J]. 时珍国医国药, 2019, 30(4): 852-854. [12] 卢英广, 胡书新. 钙元素的缺乏与补充[J]. 中国中医药现代远程教育, 2007, 5(4): 34-35. doi: 10.3969/j.issn.1672-2779.2007.04.015 [13] 葛可佑, 翟凤英, 何宇纳, 等. 中国居民膳食钙摄入量普遍低下[C]. 中国营养学会钙与妇女和儿童健康研讨会. 北京, 2001: 1. [14] PENG Z, HOU H, ZHANG K, et al. Effect of calcium-binding peptide from Pacific cod (Gadus macrocephalus) bone on calcium bioavailability in rats[J]. Food Chem, 2017, 221: 373-378. doi: 10.1016/j.foodchem.2016.10.078
[15] COSENTINO S, GRAVAGHI C, DONETTI E, et al. Caseinphosphopeptide-induced calcium uptake in human intestinal cell lines HT-29 and Caco2 is correlated to cellular differentiation[J]. J Nutr Biochem, 2010, 21(3): 247-254. doi: 10.1016/j.jnutbio.2008.12.016
[16] 夏光华, 申铉日, 酒志强. 罗非鱼皮胶原蛋白小肽螯合钙的制备, 鉴定及抗氧化研究[J]. 食品科技, 2013, 38(6): 242-246. [17] 范鸿冰, 汪之颖, 刘鹏, 等. 鲢鱼骨胶原多肽螯合钙的制备研究[J]. 南方水产科学, 2014, 10(2): 72-79. doi: 10.3969/j.issn.2095-0780.2014.02.011 [18] 张金杨, 胡晓, 李来好, 等. 罗非鱼酶解物矿物离子结合能力及其结合物抗氧化活性[J]. 食品与发酵工业, 2018, 44(5): 76-81. [19] CHI C F, HU F Y, WANG B, et al. Antioxidant and anticancer peptides from the protein hydrolysate of blood clam (Tegillarca granosa) muscle[J]. J Funct Foods, 2015, 15: 301-313. doi: 10.1016/j.jff.2015.03.045
[20] 胡晓, 吴静, 王子怀, 等. 响应面法优化酶解罗非鱼皮制备抗氧化肽的工艺研究[J]. 食品工业科技, 2016, 37(21): 195-200, 204. [21] MORALES-MEDINA R, TAMM F, GUADIX A M, et al. Functional and antioxidant properties of hydrolysates of sardine (S. pilchardus) and horse mackerel (T. mediterraneus) for the microencapsulation of fish oil by spray-drying[J]. Food Chem, 2016, 194(1): 1208-1216.
[22] WU H C, CHEN H M, SHIAU C Y. Free amino acids and peptides as related to antioxidant properties in protein hydrolysates of mackerel (Scomber austriasicus)[J]. Food Res Int, 2003, 36(9/10): 949-957.
[23] 郭芮, 王小瑞, 苏红, 等. 红鳍东方鲀鱼肉, 肝脏, 鱼皮中营养物质的比较与分析[J]. 河北农业大学学报, 2017, 40(6): 77-82. [24] 邵宏宏, 周秀锦, 相兴伟, 等. 鮟鱇皮胶原蛋白肽最佳制备工艺及自由基清除活性研究[J]. 食品工业, 2016, 37(5): 119-124. [25] HOU H, WANG S, ZHU X, et al. A novel calcium-binding peptide from Antarctic krill protein hydrolysates and identification of binding sites of calcium-peptide complex[J]. Food Chem, 2018, 243: 389-395. doi: 10.1016/j.foodchem.2017.09.152
[26] 杨伊然, 胡晓, 杨贤庆, 等. 蓝圆鲹蛋白酶解物的螯合矿物离子活性研究[J]. 食品科学, 2017, 38(3): 88-93. [27] WU W M, HE L C, LIANG Y H, et al. Preparation process optimization of pig bone collagen peptide-calcium chelate using response surface methodology and its structural characterization and stability analysis[J]. Food Chem, 2019, 284: 80-89. doi: 10.1016/j.foodchem.2019.01.103
[28] JUNG M. Y. K S K, KIM S. Y. Piboflavin-sensitized photooxidation of ascorbic acid: Kinetics and amino acid effects[J]. J Agric Food Chem, 1995, 53: 397-403.
[29] CHEN H M, MURAMOTOK K, YAMAUCHI F. Antioxidatant activity of designed peptides based on the antioxdative peptide from digests of a soybean protein[J]. J Agric Food Chem, 1996, 44(9): 2619-2623. doi: 10.1021/jf950833m
[30] 杨亚云, 蔡春尔, 赵明林, 等. 坛紫菜多糖提取工艺优化及抗氧化活性研究[C]. 全国第二届海洋与陆地多糖多肽及天然创新药物研发学术会议论文集. 漠河: 中国生物化学与分子生物学会, 2015: 108. [31] REDDY P R, RADHIKA M, MANJULA P. Synthesis and characterization of mixed ligand complexes of Zn (II) and Co (II) with amino acids: relevance to zinc binding sites in zinc fingers[J]. J Chem Sci, 2005, 117(3): 239-246. doi: 10.1007/BF02709293
[32] 高菲, 王维有, 鲁军, 等. 海洋鱼骨胶原肽钙螯合物的制备及红外光谱表征[J]. 中国海洋大学学报(自然科学版), 2015, 45(1): 47-54. [33] 侯小琴, 张宁, 孙力军, 等. 基于高水解度的罗非鱼下脚料产脂肽基质的酶解条件优化[J]. 食品工业科技, 2017, 38(24): 126-132. [34] VÁSQUEZ-VILLANUEVA R, MARINA M L, GARCÍA M C. Identification by hydrophilic interaction and reversed-phase liquid chromatography-tandem mass spectrometry of peptides with antioxidant capacity in food residues[J]. J Chromatogr A, 2016, 1428: 185-192. doi: 10.1016/j.chroma.2015.07.032
[35] GUO L, O'KEEFFE M B, ZHANG L, et al. Fractionation and identification of Alaska pollock skin collagen-derived mineral chelating peptides[J]. Food Chem, 2015, 173: 536-542. doi: 10.1016/j.foodchem.2014.10.055
[36] 杨伊然. 蓝圆鲹矿物元素结合肽的制备分离及其抗氧化活性研究[D]. 大连: 大连海洋大学, 2017: 8-19. -
期刊类型引用(13)
1. 鲁晨，胡晓，陈胜军，吴燕燕，黄卉，相欢，戚勃，邓建朝. 罗非鱼皮胶原酶抑制肽的制备、体外活性及其理化特性研究. 南方水产科学. 2024(02): 150-159 . 
本站查看
2. 吴雨柔，王成维，李金虎，冉东，吴纯洁. 响应面法优化羚羊角多肽提取工艺研究. 中药与临床. 2024(02): 33-37 . 百度学术
3. 韩昕彤，赵景瑶，王晓梅，张忠山. 藻蓝蛋白面霜的制备与性能研究. 湖州师范学院学报. 2024(08): 29-35 . 百度学术
4. 钟婉滢，苗建银，叶灏铎，马凤，胡一晨. 藜麦蛋白肽的酶解制备及体外降血脂与降尿酸活性研究. 食品工业科技. 2023(23): 156-166 . 百度学术
5. 邢贵鹏，孙申宇，黄卉，魏涯，李来好，杨贤庆，郝淑贤，岑剑伟，赵永强，陈胜军，林织. 美拉德反应改良罗非鱼加工副产物熬煮液风味. 食品与发酵工业. 2022(05): 165-172 . 百度学术
6. 刘晶，胡晓，杨贤庆，陈胜军，吴燕燕，李来好，戚勃，邓建朝. 龙须菜蛋白质的提取及其酶解产物的抗氧化特性. 浙江农业学报. 2022(05): 1061-1072 . 百度学术
7. 韩梦瑶，李新月，王晓梅，王国治，叶金云，张忠山. 大口黑鲈鱼皮胶原蛋白肽的制备及抗氧化活性研究. 食品与机械. 2022(04): 175-182+194 . 百度学术
8. 郭洪辉，张怡评，洪专，俞云. 河豚鱼皮胶原寡肽螯合锌的体内体外抗氧化活性研究. 食品工业科技. 2021(05): 66-71 . 百度学术
9. 周雅，胡晓，李来好，杨贤庆，陈胜军，吴燕燕，杨少玲. 蓝圆鲹黄嘌呤氧化酶抑制肽的制备及其活性分析. 食品与发酵工业. 2021(13): 146-153 . 百度学术
10. 胡晓，刘晶，高颖，李瑞杰，李来好，杨贤庆，陈胜军，吴燕燕，戚勃，荣辉. 裂壶藻蛋白肽美拉德反应产物的制备及其抗氧化特性. 南方水产科学. 2021(04): 58-65 . 本站查看
11. 黄海潮，王锦旭，潘创，杨贤庆，戚勃，李来好，赵永强. 超声波辅助过氧化氢法降解坛紫菜多糖及其抗氧化活性的研究. 南方水产科学. 2020(01): 110-119 . 本站查看
12. 唐顺博，涂宗财，沙小梅，张耀，张露. 罗非鱼鳞胶原肽亚铁螯合物制备工艺优化及结构表征. 食品与机械. 2020(07): 155-160 . 百度学术
13. 林善婷，胡晓，李来好，杨贤庆，吴燕燕，陈胜军，赵永强，李春生，潘创. 水产蛋白源生物活性肽研究进展. 大连海洋大学学报. 2020(05): 775-785 . 百度学术
其他类型引用(3)
计量
- 文章访问数: 5370
- HTML全文浏览量: 2407
- PDF下载量: 38
- 被引次数: 16
粤公网安备 44010502001741号
